Архитектура Аудит Военная наука Иностранные языки Медицина Металлургия Метрология Образование Политология Производство Психология Стандартизация Технологии |
Балантидиоз свиней. Морфология возбудителя. Биологический цикл развития. Эпизоотология. Патогенез и симптомы. Патологоанатомические изменения. Диагностики. Лечение и профилактика ⇐ ПредыдущаяСтр 5 из 5
Протозойная болезнь свиней, вызываемая патогенными инфузориями из семейства Balantidiidae, характеризуется поражением толстого отдела кишечника и сопровождается изнуряющим поносом, истощением и падежом животных. Кроме свиней отмечены случаи заболевания балантидиозом человека, крупного и мелкого рогатого скота, кроликов. Возбудители. Balantidium suis и В. coli, относящиеся к отряду Spirotricha. Оба вида морфологически сходны. Балантидии могут находиться в виде трофозоитов и цист. Трофозоиты имеют овальную или яйцевидную форму, длину 40—150 мкм и ширину 20—70 мкм; внутри располагаются два ядра — макронуклеус и микронуклеус. Тело покрыто ресничками, вследствие чего балантидии могут проникать в слизистую оболочку и даже в подслизистый слой (рис. 131). Цисты имеют округлую форму, покрыты двухконтурной оболочкой, неподвижны. Чаще всего цист выделяют из фекалий взрослых клинически здоровых животных. У молодых животных во внешнюю среду выделяются трофозоиты (вегетативные формы). Биология развития. Находясь в благоприятных условиях, балантидии размножаются, половым путем (конъюгация) и прямым делением (бесполое размножение). При неблагоприятных условиях размножение прекращается и балантидии покрываются защитной оболочкой, превращаясь в цисты. При этом они теряют реснитчатый покров и становятся более круглыми. Балантидии паразитируют в просвете толстого отдела кишечника, однако в определенные периоды болезни они могут проникать в ткани хозяина — в толщу кишечной стенки, кровеносные и лимфатические сосуды. Эпизоотологические данные. К балантидиозу восприимчивы молодые животные, в основном поросята-отъемыши, но могут болеть и поросята в конце подсосного периода, и взрослые свиньи. Источником заражения являются больные и переболевшие животные. Патогенез и иммунитет. При нарушении санитарно-гигиенических условий содержания свиней, скармливании недоброкачественных кормов, резкой смене рациона, раннем отъеме поросят балан- тидии из просвета кишечника внедряются в слизистую оболочку и переходят к питанию эпителием. При этом они поражают главным образом слизистую оболочку кишечника, вызывая в ней некроз клеток эпителия, подслизистого и даже мышечного слоев. В стенке кишечника паразиты размножаются, образуя отдельные колонии. Диагностика. При постановке диагноза учитывают эпизоотологические данные, клиническую картину, патогистологические изменения, а также результаты исследования фекалий, содержимого толстого отдела кишечника. Лечение. Для лечения балантидиоза рекомендованы следующие препараты. Профилактика и меры борьбы. В целях предотвращения заболеваний свиней балантидиозом необходимо строго соблюдать санитарно-гигиенический режим, следить за чистотой в помещениях, не допускать резкой смены рационов кормления, соблюдать нормы размещения поголовья в станках, обеспечивать комплектование ферм здоровыми животными из благополучных хозяйств. Вновь поступающих в хозяйство животных следует содержать изолированно в течение 30 дней. В технологии противопаразитарных мероприятий нужно предусматривать исследование животных на наличие балантидий в следующие сроки: подсосных поросят — перед отъемом, поросят-отъемышей — 1 раз в 3—4 нед, свиней ремонтного стада — 1 раз в 5—6 нед, свиноматок — за 2—3 нед до опороса, хряков — не менее двух раз в год. При выявлении балантидионосителей животным назначают один из вышеуказанных препаратов с профилактической целью. Диагностика кокцидиозов Эймериоз Диагностика. Диагноз ставят комплексно, с учетом эпизоотологических данных, клинических признаков, патологоанатомических изменений и результатов лабораторных исследований. Из клинических признаков наибольшее значение имеют фекалии с примесью крови, а при вскрытии трупов – обнаружение У больных животных берут фекалии и исследуют гельминтоовоскопическими методами нативного мазка, Фюллеборна или Дарлинга на наличие ооцист кокцидий. Однако при постановке диагноза необходимо отличать субклиническое проявление болезни от острого течения. В первом случае в поле зрения микроскопа видны единичные ооцисты, во втором можно обнаружить сотни и даже тысячи ооцист. При дифференциальной диагностике исключают эшерехиоз, сальмонеллез, отравления и энтериты неинфекционной этиологии. Эшерехиоз наблюдается у телят в первые дни их жизни, а эймериоз -у более взрослых телят. На вскрытии при эшерехиозе характерно увеличение селезенки, чего не отмечается при эймериозе. Токсоплазмоз Диагноз ставят комплексно, анализируя эпизоотические, клинические данные, подтвержденные лабораторными исследованиями. Обращают внимание на наличие абортов в ранний период беременности, рождение мертвых и уродливых плодов. Родившиеся телята и ягнята отстают в росте и Для лабораторных исследований направляют кусочки головного и спинного мозга, сердца, легкого, печени, селезенки и глазного яблока. При абортах на анализ посылают целиком плод и плаценту. Материал необходимо исследовать свежим. Из кусочков паренхиматозных органов делают мазки-отпечатки, околоплодную жидкость центрифугируют и из осадка делают мазки, фиксируют и красят поРомановскому –Гимзе. В окрашенных препаратах обнаруживают эндозоиты, псевдоцисты или цисты. Разработана внутрикожная аллергическая реакция. При наличии антигена ставят РСК, РДСК и РИФ с антигеном токсоплазм. Наиболее точные результаты получают при помощи биопробы на белых мышах, заражая их внутрибрюшинно суспензией из патматериала. Саркоцистоз Диагноз на саркоцистоз животных ставят комплексно, на основании эпизоотологических данных, клинических признаков, патологоанатомических изменений и лабораторных исследований. Учитывая, что у крупного, так и у мелкого рогатого скота болезнь распространена повсеместно и в ее течении нет каких-либо характерных только для нее признаков, клинически поставить диагноз очень трудно. Для прижизненной диагностики саркоцистоза используют аллергические и серологические методы. В качестве аллергена применяют препарат из цистозоитов. Диагностикум вводят подкожно в область верхнего века. При положительной реакции через 2–4 ч образуется припухлость диаметром 10–20 мм и Решающее значение имеет выявление макроцист в мышцах. При ветеринарно-санитарном исследовании туш овец находят саркоцисты величиной от 0, 5 до 10 мм белого или слегка желтоватого цвета, особенно в мышцах пищевода, языка, брюшных, диафрагме, а также в сердечнойи скелетных. При осмотре говяжьей туши цисты встречаются чаще в мышцах пищевода, сердца, языка, диафрагмы и в скелетной мускулатуре. Чтобы удостовериться в том, что эти образования являются саркоцистами, их кладут на предметное стекло, разрушают при помощи препаровальных игл или скальпелем. Содержимое цисты смешивают с каплей воды, и небольшое количество смеси исследуют под микроскопом при среднем увеличении в слегка затемненном поле. При саркоцистозе в содержимом видны мерозоиты Для выявления микроцист делают срезы мышечных волокон величиной с рисовое зерно, окрашивают краской Гимза, метиленового синего или генцианвиолета и исследуют их компрессорным методом, рассматривая под малым увеличением микроскопа. Саркоцисты окрашиваются в темно-синий цвет, мышцы – в голубой. Различают степени зараженности: сильное –в 24 срезах мышц, исследуемых в компрессориуме, находят 41 и более цист; среднее –от 40 до 10 цист; У дефинитивных хозяев диагноз можно поставить только гельминтоовоскопическими методами Фюллеборна или Дарлинга. У инвазированных собак и кошек обнаруживают спорулированные ооцисты или спороцисты саркоцистоза. Безноитиоз Диагноз устанавливают комплексно на основании эпизоотологических данных, клинических признаков, патологоанатомических изменений и результатов паразитологических исследований. Болезнь имеет преимущественно сезонный характер, поскольку в ее распространении главную роль играет активность кровососущих насекомых. Клинически безноитиоз легко диагностировать при наличии цист паразита на склере или слизистых оболочках верхних дыхательных путей. Цисты –четко очерченные, сферической формы, имеют вид узелков, подобных по цвету и размеру В период острого течения болезни для обнаружения трофозоиты безноитий делают биопсию кожи и подкожной клетчатки пораженных участков. Из полученного материала готовят мазки, окрашивают их по Романовскому и просматривают под иммерсионной системой микроскопа. При микроскопии мазков обнаруживают цисты, трофозоиты, цистозоиты. При исследовании нативных препаратов несколько цист помещают на предметное стекло, добавляют каплю физиологического раствора и накрывают тонким покровным стеклом. При просмотре под иммерсионной системой видны подвижные трофозоиты банановидной или полулунной формы. Применяют также серологические методы диагностики – РСК и РДСК. Специфические антитела при безноитиозе обнаруживаются на 15–18-е сут болезни. Криптоспородиоз Диагноз на криптоспоридиоз ставится комплексно, на основании эпизоотологических данных, клинической картины заболевания, патологоанатомических изменений и лабораторных исследований. При жизни у животных исследуют фекальные массы, посмертно –содержимое и соскобы со слизистой оболочки тонкого отдела кишечника с целью Наиболее интенсивно ооцисты выделяются в течение первых 4–5 дней болезни, через 2–3 дня после прекращения диареи выделение прекращается. Фекалии собирают в сухую чистую хорошо укупоренную тару и доставляют в лабораторию. Ооцистысохраняются в кале сравнительно долго. Если предполагается длительное хранение материала, то используют консерванты (10%-ный формалин, жидкость Барбагалло, 2, 5%-ный раствор бихромата калия). Консервант смешивают с фекалиями в соотношении 2: 1 и хорошоперемешивают. Хранят в холодильнике при +4°С. Ооцисты в 2, 5%-ном растворе бихромата калия сохраняют жизнеспособность в течение года. Для увеличения в исследуемом материале концентрации ооцист используют флотационные методы Дарлинга или Фюллеборна. В качестве растворов применяют насыщенные растворы поваренной соли или сахарозы. Из материала, взятого паразитологической петлей с пленки поверхностного Для микроскопического обнаружения ооцист криптоспоридий в фекалиях телят и ягнят применяют метод нативного мазка. Для приготовления мазков используют хорошо обезжиренные предметные стекла, 1/4 часть которых зашлифована и предназначена для маркировки препарата простым карандашом. Фиксацию мазков проводят метанолом, этанолом или жидкостью Никифорова – 8-10 мин. Мазок высушивают при комнатной температуре. Окрашивание мазков проводят по методу Циль Нильсена. При этом на синем фоне четко выделяются округлые яркокрасные с различным оттенком ооцисты криптоспоридий. Внутри них видны 4 спорозоита. Сопутствующая микрофлора окрашивается в зеленый цвет. Вместо синьки Лефлера можно использовать 0, 5%ный раствор малахитового зеленого или 1%ный раствор бриллиантового зеленого, приготовленный на воде или 10оном спирте. В первом варианте докрашивание проводят в течение 3 мин, а во втором – до 30 с. Учет результатов: на зеленом фоне четко выделяются красные ооцисты. В красный цвет окрашиваются некоторые микробы, споры грибов и жироподобные вещества, но они отличаются от ооцист криптоспоридий размерами, формой и отсутствием внутри структурных образований. |
Последнее изменение этой страницы: 2020-02-16; Просмотров: 414; Нарушение авторского права страницы