|
Архитектура Аудит Военная наука Иностранные языки Медицина Металлургия Метрология Образование Политология Производство Психология Стандартизация Технологии |
|
|
Архитектура Аудит Военная наука Иностранные языки Медицина Металлургия Метрология Образование Политология Производство Психология Стандартизация Технологии |
Определение спектра антимикробного действия ⇐ ПредыдущаяСтр 3 из 3
При изучении спектра биологического действия в качестве тест-культур использовали: - грамположительные бактерии: Staphylococcus aureus 52, Micrococcus flavus NCTC 8340, - грамотрицательные бактерии: Escherichia coli ATCC 25922, Protus vulgaris-28 - микроскопические грибы и дрожжи: Aspergillus niger INA 00760, Candida albicans INA 00763 Бактерии выращивали на МПА Грибы Aspergillus niger и дрожжи Candida albicans выращивали на среде Сабуро (г/л): глюкоза- 40, 0 пептон- 10, 0 агар-агар -20, 0 Бактерии культивировали при 37°С, микроскопические грибы - при 28°С. Использовали суточные культуры бактерий и двухсуточные культуры грибов. В качестве стандарта антибиотика на грамположительной бактерии использовали коммерческий препарат низина «Nisaplin» (фирма “Aplin& Barrett, Ltd”, Великобритания) с активностью 1х106 МЕ/г., на грамотрицательной бактерии – растворы левомицетина в буфере с рН 5, 5 (препарат в виде таблеток (0, 5 мг) ОАО «Татхимфармпрепараты», г. Казань) 100, 50 и 25 ед/мл, на микромицеты использовали растворы 100, 50, 40 ед/мл коммерческого препарата “Nistatin” (фирмы Sigma) с активностью 4670 единиц/мг. Для приготовления раствора антибиотика левомицетина вносили 400 мкг навески препарата в стерильную мерную колбу вместимостью 100 мл. Добавляли 10 мл стерильного буфера с рН 5, 5, перемешивая до полного растворения. Определяли уровень антибиотической активности в культуральной жидкости лактобацилл и экстрактах. Фосфатный буфер с рН 5, 5 для титрования антибиотика готовили на дистиллированной воде, в 1 л которой растворяли: 6, 64 г KH2PO4 и 0, 142 г K2 HPO4. Буфер стерилизовали при 1 ати в течение 20 мин. Дискодиффузионный метод определение спектра антимикробного действия В качестве контроля использовали диски, пропитанных стандартными антибиотиками в концентрациях 10 - 30 мкг в диске и хранившихся во флаконах с влагоудерживателем (силикагелем). Метод основан на диффузии препаратов антибиотиков из диска в среду, предварительно засеянную исследуемым индикаторным штаммом. Суспезии тест-культур в физрастворе с оптической плотность 0.6 нм засевали среду (состав указан выше) в количестве 20 мл в каждую чашку Петри для получения газона. Для засева чашек Петри тестами использовали суточные культуры бактерий и дрожжей, дву-трехсуточные культуры грибов в виде суспензии клеток в физиологическом растворе в количестве 1 млрд/мл (по бактериальному стандарту мутности), исходя из расчета 0, 1 мл суспензии в одну чашку Петри при глубинном культивировании. На газон помещали диски, пропитанные опытными растворами, и стандартизированные диски. Чашки Петри инкубировали при оптимальном для каждого индикаторном штамме температуре в течение 24 ч для бактерий и 48 ч для микроскопических грибов. По истечении времени инкубации измеряли зону подавления роста опытных растворов и индикаторного диска (в мм). Использовали следующие диски с антибиотиками, ингибирующими грамположительные бактерии: рифампицин (5 мкг), ампициллин (10 мкг), эритромицин (15 мкг); грамотрицательные бактерии-левомицетин (30 мкг); микроскопические грибы и дрожжи – нистатин (15 мкг). Величина зоны отсутствия роста указывает на степень активности данного антибиотика по отношению исследуемой тест-культуры и зависит от его концентрации и химической природы (Егоров, 2004). Глава Ш. Результаты исследований и их обсуждение. По морфологии колонииL. delbrueckii ssp. bulgaricus на агаровой среде МРС были округлые, блестящие, гладкие с ровными краями, выпуклые (1-2 мм), прозрачная с непрозрачным центром, консистенция мягкая, однородная. L.acidophilus образовывали крупные колонии (2, 5 – 4, 5 мм) белого цвета, матовые с неровными краями. Ш.1. Изучение динамики роста лактобацилл Изучение динамики роста лактобацилл в жидкой среде МРС в течение 48 часов показало, что L. delbrueckii ssp. bulgaricus (штаммы № 1, 8, 12) отличались замедленным ростом. Только к 48 часам инкубирования при 37о С рН снизился до 4, 2-4, 5», уровень накопления биомассы достиг максимумального значения (ОП540 = 1, 0 - 1, 3), что соотвествовало при высеве на агаровую среду 1, 22х109- 3, 27х109 КОЕ/мл. Штаммы L. acidophilus (№ 13 -21) быстрее включиличь в рост, что проявилось в быстром снижении кислотности (рН до 3.4) и наращивании биомассы уже к 17 часам инкубирования. К 48 ч инкубирования наблюдали повышене рН и снижение П540 суспезии лактобацилл. Результаты представлены в табл. 6. Табл.6. Динамика роста штаммов лактобацилл Lactobacillus acidophilus и L. delbrueckii ssp. bulgaricus в жидкой среде МРС в течение 48 часов(p≤ 0, 05)
Ш.2. Спектр антимикробного действия
Брожение, сопровождающееся понижением pH, в связи с выделением молочной и других органических кислот, является важным фактором для подавления роста нежелательных микроорганизмов. Низкий pH делает органические кислоты растворимыми, что позволяет им проникать через клеточную мембрану, поражая, таким образом, цитоплазму патогенного микроорганизма (Haller et al., 2001). Антибиотическая активность молочнокислых бактерий складывается из действия продуцируемых бактериоцинов, а также кислот, спиртов, перекисей, и других метаболитов. Бактериоцины накапливаются, в основном, в культуральной жидкости, но часть их связана с клеточной стенкой продуцента (Стоянова и др. 2012). Одним из важнейших условий эффективного извлечения бактериоцина из культуральной жидкости является правильный выбор экстрактанта – органического растворителя, который бы избирательно и полно извлекал его как из культуральной жидкости, так и из клеточной стенки. метаболитов, накапливаемых в процессе их роста и развития (Устюгова и др., 2011). Существуют различные способы выявления антибиотических свойств микроорганизмов. Многие из них основаны, на способности антибиотических веществ диффундировать в плотные агаризованные среды и образовывать зоны подавления роста тест-организма. Важным критерием оценки эффективности синтезируемого бактериоцина является спектр его антимикробного действия, т.е. активность по отношению к разным группам микроорганизмов. Micrococcus flavus- представитель грамположительных бактерий, тестовая культура, используемая в научных исследованях для количественного определения бактериоцинпродуцирующей активности продуцентов низина (Riley et al., 2002; de Vos, 2005) В наших исследованиях наибольшей активностью на Micrococcus flavus обладал штамм №14 Lactobacillus acidophilus – 17 часовая культура. Причем, активность проявлялась как в культуральной жидкости с сильны м подкисление м среды (рН 3, 4), так и в экстрактах. Из семи штаммов L. delbrueckii ssp. bulgaricus наиболее активен штамм № 8, но активность была выявлена и у других штаммов этого вида, но, в основном, только в экстрактах (табл.7). Можно предположить, что антибактериальный метаболит связан с клеточной стенкой продуцента и является бактериоцином. Staphylococcus aureus -также грамположительная бактерия. Этот патоген способен вызывать широкий диапазон заболеваний человека, начиная с лёгких кожных инфекций: угри, фурункулы—до смертельно опасных заболеваний: пневмония, менингит, остеомиелит, эндокардит, инфекционно-токсический шок и сепсис. Наибольшую активность на этот патоген из семи штаммов L. delbrueckii ssp. bulgaricus проявляли экстракты штаммов 8, 11 и 12 (два последних имели активность и в культуральной жидкости), из штаммов Lactobacillus acidophilus. наиболее активен штамм №14. Максимальный уровень активности составил 2000 МЕ/мл (по низину) в 17 часовй культуре, активность проявлялась как в культуральной жидкости, так и в экстрактах; штаммы №17 и №19 также были активны (табл.8, рис.1, 2, 3).
Таблица 7. Ингибиторная активность культуральной жидкости и экстрактов разного возраста культур лактобацилл на Micrococcus flavus(p≤ 0, 05)
Таблица 8 Ингибиторная активность культуральной жидкости и экстрактов разного возраста культур лактобацилл на Staphylococcus aureus (p≤ 0, 05)
Рис.1. Ингибиторная активность культуральной жидкости и экстрактов разного возраста культур лактобацилл на Staphylococcus aureus
На рисунках 1-3 видны зона ингибирования роста тест - культуры.Видны зоны полного подавления роста индикаторнрй культуры. Морфология зон подавления роста чувствительных бактерий, образуемых под воздействием антимикробных метаболитов, бактериоцинов быают разные. Зоны торможения, формирующиеся под влиянием разных бактериоцинов на газоне индикаторной культуры, имеют характерные особенности. Так, для одних бактериоцинов типично полное отсутствие роста чувствительной культуры вокруг колонии продуцента, для других - равномерно разреженный, резко ослабленный рост мелких изолированных колоний, для некоторых характерно формирование нормально развитых отдельных колоний, резистентных к действию бактериоцина. Для штаммов № 9-12 L. delbrueckii ssp. bulgaricus наглядно показано, что активность проявлялась после 48 часов инкубирования этих бактерий в жидкой МРС среже, а ждя штамма 21 Lactobacillus acidophilus достаточно 17 часов культивирования.
Рис. 2.Ингибиторная активность экстрактов культуральной жидкости штаммов№ 9 и № 12Lactobacillus delbrueckii ssp. bulgaricus разного возраста на Staphylococcus aureus
Рис.3. Ингибиторная активность экстрактов культуральной жидкости штамма №21 Lactobacillus acidiphillus 17 и 48 часов культивирования на Staphylococcus aureus Таблица 9. Ингибиторная активность культуральной жидкости и экстрактов разного возраста культур лактобацилл на Escherichia coli (p≤ 0, 05)
Для определения спектра жействия отобранных штаммов лактобацилл среди грамотрицательных бактерий были выбраны условный патоген E.coli. и Proteus vulgaris.Вирулентные штаммы E.coli (например, серотипO157: H7) могут вызывать гастроэнтериты, воспаления мочеполовой системы, а также менингит у новорождённых. Все исследуемые штаммы обладали антибиотической активностью по отношению к этим бактерия ( табл. 9 и рис. 4, 5). Причем активность была выявлена в культурвльной жидкости все штаммов. Воможно ингибиторное действие проявляется за счет молочной кислоты. Известно, что МКБ производят большое количество кислотных метаболитов, которые в различной степени ингибируют рост плесневых грибков и бактерий. Согласно классической теории «слабых кислот» антибактериальное действие органических кислот является рН-зависимым с максимумом активности при низких значениях рН, что соответствует недиссоциированному состоянию молекул кислоты (Gerez et al., 2010). В этом состоянии плазматическая мембрана становится проницаема для липофильных молекул кислоты, которые способны проникнуть в клетку. Увеличение рН цитозоля клетки способствует быстрой диссоциации молекул кислоты в заряженные протоны и анионы, которые не могут затем вернуться во внешнюю среду. Закисление цитоплазмы в результате накопления протонов ингибирует некоторые метаболические процессы такие, например, как синтез АТФ, что приводит к смерти микроорганизма (Cortez-Zavaleta et al., 2014). Несколько исследований показали, что секреция органических кислот МКБ усиливается при низких значениях рН, так как в этом состоянии кислоты находятся в недиссоциированной форме, что согласуется с теорией «слабой кислоты».
Но имеются литературные данные, что действие обусловлено активность гиролаз. Необычный факт, что несколько видов рода Lactobacillus имеют поверхностный полимерный белковый слой, который называется S-слой (surface-layer).. В частности, у штамма Lactobacillus acidophilus ATCC 4356 этот S-слой состоит из одиночного полимерного S-белка, молекулярная масса которого около 45 кДа. Было обнаружено, что очищенный полимерный S-слой, выделенный из клеток L. acidophilus, обладает гидролазной активностью (Prado-Acosta et al., 2008). Положительные результаты этой гидролазной активности наблюдали относительно пептидогликана клеточной стенки двух видов грамотрицательных бактерий: Salmonella enterica и E. coli, которые являются патогенным и условно патогенным видами, соответственно. Гидролазную активность S-слоя Lactobacillus acidophilus ATCC 4356 в ходе эксперимента не наблюдали относительно: Bacillus cereus, Lactobaciluus casei. Таким образом, сделан вывод, что муреин-гидролазная активность S-слоя Lactobacillus acidophilus ATCC 4356, которая ведет в дальнейшем к лизису клетки-мишени, действует лишь на Salmonella enterica и Escherichia coli.
Рис.4. Ингибиторная активность культуральной жидкости и экстрактов разного возраста культур лактобацилл на Proteus vulgaris
Противогрибковая активность МКБ традиционно связана с закислением среды, в которой они находятся, что связано с производством короткочепочечных жирных кислот, таких как молочная, пропионовая и особенно уксусная кислоты (Lavermicoccaetal., 2000; Kwak et al., 2014), но существуют также дополнительные специфические низкомолекулярные метаболиты МКБ (белковые соединения, фенилмолочная кислота, циклические дипептиды, капроновая кислота, реутерин), которые обладают фунгицидной активностью. Многие исследования подтверждают способность некоторых МКБ синтезировать фенилмолочную кислоту: Leuconostoc mesenteroides, виды Lactobacillus: L. plantarum, L.rhamnosus, L. sanfranciscensis, L.acidophilus, L. alimentarius, L.amylovorus, L. casei, L.lactis, L.paracasei, L.reuteri и Pediococcus acidilactici, хотя этот процесс, конечно, является штаммо- и видоспецифичным (Cortez-Zavaleta et al., 2014 Дикетопиперазины долгое время считались продуктами деградации белков. Механизм их образования до сих пор точно не изучен, однако обнаружено, что они образуются в результате нерибосомального синтеза с привлечением мультифункционального фермента. Эти вещества могут также формироваться из пептидов в щелочных или кислотных условиях (Yang et al., 2010
Рис.5. Ингибиторная активность культуральной жидкости и экстрактов разного возраста культур лактобацилл на Aspergillus niger Результаты исследований показали, что фунгицидной активностью на микроскопические грибы Aspergillus niger обладала культуральная жидкость L.acidophilus. Наиболее активны штаммы № 14 и 17). Проявляется действие антимикробных метаболитов, экскретируемых в среду культивирования. Э кстраты всех штаммов лактобацилл не показали активности. По- видимому, требуется выбор экстрагирующей смеси. Изучении фунгицидной активности на дрожжи Candida albicans показало, что дрожжи чувчтвительны к экзометаболитам практически всех гтаммов, причем, активность выявлена только в культуральной жидкости ( рис. 6 А. в эстрактах активность не обнаружена ( рис.6 Б).
Рис.6. Ингибиторная активность культуральной жидкости и экстрактов разного возраста культур лактобацилл на Candida. albicans Вещества с активностью против таких патогенов как C. albicans были определены как 1, 4-диаза-2, 5 диоксоциклические дипептиды, т. е. так называемые модифицированные 2, 5-диоксопиперазины, 2, 5-дикетопиперазины или цис-циклодипептиды. Из штамма L.plantarum AF1 было выделено новое вещество с фунгицидным эффектом, идентифицированное как 3, 6-бис-(2-метилпропил) -2, 5-пиперазиндион, которое представляет собой циклическое соединение (Leu-Leu), принадлежащих к классу 2, 5-дикетопиперазина (Yang et al., 2010). Предполагается, что органические кислоты, синтезируемые МКБ, могут также активировать и другие противогрибковые вещества, например, пептиды, с помощью низких значений рН. Эти соединения, следовательно, также устраняются путем нейтрализации. Предположения подтверждаются исследованиями: противогрибковое соединение, описанное Magnusson и Schnü rer (2001), является активируемым низкими значениями рН. Активность этого пептида остается стабильной при значениях рН 3, 0 – 4, 5, но быстро снижается при рН 4, 5 – 6, 0 (Magnusson, Schnü rer, 2001).
ВЫВОДЫ. 1. Определено время культивирования штаммов Lactobacillus acidophilus и L. delbrueckii subsp. bulgaricus, выделенных из молочнокислых продуктов функционального назначения, для максималного накопления биомассы и антимикробных метаболитов: для Lactobacillus acidophilus- 17 часов, а для L. delbrueckii subsp. bulgaricus- 48 часов. Штаммы обладают широким спектром антимикробного действия: подавляют рост грамм положительных бактерий (Staphylococcus aureus, Micrococcus flavu), грамотрицательных бактерий (Escherichia coli , Proteus vulgaris) микроскопических грибов Aspergillus niger и Candida. Albicans.Наиболее активен штамм № 14 и № 19 Lactobacillus acidophilus, обладающие широким спектром антимикробного действия. 2. 3.Активность штаммов на Lactobacillus acidophilus на грамотрицательной бактерии проявляется как в культуральной жидкости за счет накопления экзометаболитов, не связанных с клеточной стенкой, так и в экстрагирующей смеси с рН 5, 5. 3. 3.Фунгицидная активность штаммов появляется, в основном, в культуральной жидкости у обоих видов лактобацилл.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Артюхова С.И., Гаврилова Ю.А. Использование пробиотиков и пребиотиков в биотехнологии производства продуктов.– Омск: ОмГТУ, 2010. – 112 с. 2. Артюхова С.И. Использование пробиотиков в биотехнологии домашнего сыра для функционального питания: Монография / С.И. Артюхова, Н.В. Лашина.– Омск: Изд-во ОмГТУ, 2005.– 82 с. 3. Артюхова С.И. Жидкова О.Н. Изучение природной устойчивости микроорганизмов поликомпонентной закваски для сметанного продукта к антибиотикам / // Молочная промышленность. 2004.– № 8. –С. 24. 4. Волгарев М.Н., 2000;, .Волгарев М.Н. О нормах физиологических потребностей человека в пищевых веществах и энергии: рет- роспективный анализ и перспективы развития // Вопр. питания. - 2000. - №. 4. - С. 3-7. 5. Доронин А.Ф., Шендеров Б.А. 2002.Функциональное питание. М.: Грантъ, 296 с. 6. Егоров Н.С., 2004. Основы учения об антибиотиках. М.: Издательство МГУ, 167 с. 7. Жарикова Г.Г., 2005. Микробиология продовольственных товаров. Санитария и гигиена. М.: Издательский центр «Академия», 182-196. 8. Квасников Е.И., Нестеренко О.А., 1975. Молочнокислые бактерии и их использование. М.: Наука, 290- 359. 9. Мечников И.И. Молочные микробы и их польза для здоровья. СПТ: Зворыкин. 1911. 30c. 10. Похиленко В.Д., Перелыгин В.В, 2011. Бактериоцины: их биологическая роль и тенденции применения. Электр. науч. журнал «Исследовано в России», 16, 164-198. 11. Спиричев В.Б. Научные принципы обогащения пищевых продуктов микронутриентами // Ваше питание. - 2000. - № 4. - С. 13-19.и др., 2005 12. Стоянова Л.Г., 2005. Молочнокислые бактерии. В кн.: Практикум по микробиологии (Нетрусов А.И., Егорова М.А., Захарчук Л.М. и др). М.: Издательский центр «Академия», 467-478. 13. Стоянова Л. Г., Устюгова Е. А., Нетрусов А. И. 2012. Антимикробные метаболиты молочнокислых бактерий: разнообразие и свойства (обзор). Прикл. Биохим. Микробиол. Т. 48. №3, 259-275. 14. Стоянова Л.Г., Сультимова Т.Д., Строева А.Р., Нетрусов А.И., 2008. Микробиологическая характеристика нового штамма Lactococcus lactis subsp. lactis K – 205. Журн. микробиол., 1, 60 – 63. 15. Устюгова Е. А., Тимофеева А.В., Стоянова Л.Г., Нетрусов А.И., Катруха Г.С., 2012. Характеристика и идентификация бактериоцинов, образуемых Lactococcus lactis subsp. lactis 194-K. Прикл. Биохим. Микробиол., 6, 618-625. 16. Шендеров Б.А., 2001. Пробиотики и функциональное питание. В кн.: Медицинская микробная экология и функциональное питание. М.: Грантъ, Т. 3, 287 – 288с. 17. Червинец Ю.В., идр. 2013 Беляева Е.А., Червинец В.М. и др. Нарушения микробиоты желудочно-кишечного тракта здоровых людей // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. - 2013. - Т. 2013, № 3. - С. 55-58. 18. . Чичерин И.Ю., Погорельский И.П., Дармов И.В. и др. Пробиотики: вектор развития // Практическая медицина. - 2012. - № 3(58). - С. 180-188. 19. Atanassova M., Choiset Y., Dalgalarrondo M., Chobertb J.-M., DoussetcX., Ivanova I., HaertleґT., 2003. Isolation and partial biochemical characterization of aproteinaceous anti-bacteria and anti-yeast compound producedby Lactobacillus paracasei subsp. paracasei strain M3. Int. J. Food Microb., 87, 63-73. 20. Avall-Jооskelдinen S., Palva A., 2005. Lactobacillus surface layers and their applications. FEMS Microbiology Reviews, 29, 511-529. 21. Azcarate-Peril M.A., Altermann E., Hoover-Fitzula R.L., Cano R.J., Klaenhammer T.R., 2004. Identification and inactivation of genetic loci involved with Lactobacillus acidophilus acidtolerance. Appl.Environ.Microbiol., 70, 5315–5322. 22. Bodaszewska-Lubas M., Brzychczy-Wloch M., Gosiewski T., Heczko P., 2012. Antibacterial activity of selected standard strains of lactic acid bacteria producing bacteriocins – pilot study. Postepy Hig Med Dosw., 66, 787-794. 23. Cao Z, Klebba PE. Mechanisms of colicin binding and transport through outer membrane porins. Biochimie 2002; 84: 399–412. 24. Caplice E. and Fitzgerald G.F., 1999. Food fermentation: role of microorganisms in food production and preservation. Int. J. Food Microbiol., 50, 131-149. 25. Chan W.C., Dood H.M., Horn N., et al. Structure-activity relationships in the peptide antibiotic nisin: role of dehydroalanine. Appl.Environ.Microbiol.1996; 62(8): 2966–2969. 26. Chung T. C., Axelsson L., Lindgren S. E., Dobrogosz W. J., 1989. In vitro studies on reuterin synthesis by Lactobacillus reuteri. Microbial Ecology in Health and Disease, 2, 137–144. 27. Clydesdale F., 1997. A proposal for the establishment of scientific criteria for health claims for functional foods. Nutr. Rev, 55, 413-422. 28. Collado M., Isolauri E., Salminen S., Sanz Y., 2009. The impact of probiotic on gut health. Curr Drug Metab., 10, 68–78. 29. Corté s-Zavaleta O., Ló pez-Malo A., Herná ndez-Mendoza A., Garcí a H.S, 2014. Antifungal activity of lactobacilli and its relationship with 3-phenyllactic acid production. Intern. J. of Food Microbiol., 173, 30-35. 30. De Almada C., de Almada C., Martinez R., de Sousa Sant`Ana A., 2015. Characterization of the intestinal microbiota and its interaction with probiotics and health impacts. Appl Microbiol. Biotechnol., published online: 21 April 2015. 31. de Vos, W.M. Simons, GFM. Genetics and Biotechnology of Lactic Acid Bacteria. eds. Gasson, M.J. de Vos, W.M. Gene Cloning and Expression Systems in Lactococci. Blackie Academic & Professional, 1994. pg. 52 – 53. 32. Gareau M. G., Sherman P. M., Walker W.A., 2010. Probiotics and the Gut Microbiota in Intestinal Health and Disease. Nature Reviews Gastroenterology and Hepatology, 7, 503-514. 33. Fisher J.F., Meroueh S. and Mobashery S., 2005. Bacterial resistance to beta-lactam antibiotics: compelling opportunism, compelling opportunity. Chem. Rev., 105, 395-424. 34. Gerez C.L., Torres M.J., Font de Valdez G., Rollá n G., 2013. Control of spoilage fungi by lactic acid bacteria. Biol. Control. 64, 231–237. 35. Hammes and Hertel, 2006). Hammes W.P., Hertel C., 2006. The Genera Lactobacillus and Carnobacterium. In.: Prokaryotes..320-403. 36. Hartke A., Bouche S., Gansel X., Boutibonnesand P., Auffray Y., 1994. Starvation-Induced Stress Resistance in Lactococcus lactis subsp. lactis IL1403. Appl. Microbiol., 9, 3474-3478. 37. Holzapfel W.H., Franz C.M.A.P., Ludwig W., Back W., Dicks L.M.T., 2006. The Genera Pediococcus and Tetragenococcus. In.: Prokaryotes. 229-266. 38. Kunji E.R.S., Mierau I., Hagfing A., Bert Poolman, Konings W.N., 1996. The proteolytic systems of lactic acid bacteria. Antonie van Leeuwenhoek, 70, 187-221. 39. Kwak M.-K., Liu R., Kim M.-K., Moon D., Hyoung A., Kim J., Song S.-H., Kang S.-O., 2014. Cyclic dipeptides from lactic acid bacteria inhibit the proliferation of pathogenic fungi. J. of Microbiol., 52, 64-70. 40. Lavermicocca P., Valerio F., Evidente A., Lazzaroni S., 2000. Purification and characterization of novel antifungal compounds from the sourdough Lactobacillus plantarum strain 21B. Appl. Microbiol., 9, 4084-4090. 41. Magnusson J., Schnü rer J., 2001. Lactobacillus coryniformis subsp. coryniformis strain Si3 produces a broad-spectrum proteinaceous antifungal compound. Appl. and Environ. Microbiol., 67, 1–5. 42. Magnusson J., Schnü rer J., 2005. Antifungal lactic acid bacteria as biopreservatives. Trends in Food Science & Tech., 16, 70-78. 43. Nes IF, Yoon S-S & Diep DB. Ribosomally synthesised antimicrobial peptides (bacteriocins) in lactic acid bacteria. Food Sci Biotechnol 2007; 16: 675–690. 44. Netz, D. J., H. G. Sahl, R. Marcolino. Bacteriocins: safe, natural antimicrobials for food preservation. J.Mol.Biol 2001; 311: 939-949. 45. Oppegard C., Rogne P., Emanuelsen L., Kristiansen P.E., Fimland G., Nissen-Meyer J., 2007. The two-peptide class II bacteriocins: structure, production, and mode of action. J. Mol. Microbiol. Biotechnol., 13, 210–219. 46. Prado-Acosta M., Ruzal S.M., Allievi M.C., Palomino M. M., Rivas S. C., 2008. Murein hydrolase activity in the surface layer of Lactobacillus acidophilus ATCC 4356. Appl. Environ. Microbiol., 74 (№ 24), 7824-7827. 47. Reuter G., Klein G., Goldberg M. Identification of probiotic cultures in food samples. // Food Research International. - 2002. - Vol. 35. - P. 117-124. 48. Riley MA, Wertz JE. Bacteriocins: evolution, ecology, and application. Annu Rev Microbiol 2002; 56: 117–137 49. Riley MA, Wertz JE. Bacteriocins: evolution, ecology, and application. Annu Rev Microbiol 2002; 56: 117–137 50. Senok AC, Ismaeel AY, Botta GA., 2005. Probiotics: facts and myths. Clin. Microbiol. Infect., 11, 958–966. 51. Salminen, S.; von Wright, A; and Ouwehand, AC (eds.). Lactic Acid Bacteria: Microbiological and Functional Aspects. — 3rd ed.. — New York: Marcel Dekker, 2004. — ISBN ISBN 0-8247-5332-1 52. Silva J., Carvalho A.S., Ferreira R., Vitorino R., Amado F., Domingues P., Teixeira P. and Gibbs P.A., 2005. Effect of the pH of growth on the survival of Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus to stress conditions during spray-drying. J. of Appl. Microbiol., 98, 775-782. 53. Sirisansaneeyakul S., Luangpipipat T.,.Vanichsriratana W, Srinophakun T., Henry Ho-Hsien Chen, Chisti Y., 2007. Optimization of lactis acid production by immobilized Lactococcus lactis IO-1. J. Ind. Microbiol. Biotechnol., 34, 381-391. 54. Yang E.J., Chang H.C., 2010. Purification of a new antifungal compound produced by Lactobacillus plantarum AF1 isolated from kimchi. Int. J. of Food Microbiol., 139, 56-63. 55. Yoneyama H. and Katsumata R., 2006. Antibiotic resistance in bacteria and its future for novel antibiotic development. Biosci. Biotechnol. Biochem., 70, 1060-1075.
Популярное:
|
Последнее изменение этой страницы: 2016-05-29; Просмотров: 1410; Нарушение авторского права страницы
