Архитектура Аудит Военная наука Иностранные языки Медицина Металлургия Метрология Образование Политология Производство Психология Стандартизация Технологии |
Основы технологии и гигиены колбасного производства
Колбасное производство является важной частью мясной промышленности. Производство колбасных изделий следует рассматривать как термохимический способ консервирования мяса, проводимый с применением высокой температуры и химических веществ. Колбасные изделия — это готовый высококалорийный мясной продукт, обладающий специфическим вкусом и ароматом. Действие высокой температуры и добавляемых химических веществ в процессе изготовления способствует инактивации микрофлоры и сохранности готового продукта. Продолжительность сроков реализации колбас зависит от ряда технологических приемов при их изготовлении. Колбасное производство предусматривает выпуск следующих групп изделий: вареные, полукопченые, варено-копченые, сырокопченые, фаршированные, ливерные, диетические, кровяные, мясо-растительные, с добавлением сыра, мясные хлеба, зельцы, студни, паштеты. Особую группу составляют колбасные изделия из конины, мяса оленей и верблюдов. Их подразделяют на стойкие и нестойкие. К стойким относят сырокопченые и полукопченые колбасы, они сохраняются длительное время. В последнее время с применением искусственной оболочки и вареные колбасы сохраняются до 30 суток. Для каждого вида колбасных изделий определен процесс изготовления, утверждены технологические инструкции, рецепты. Контроль качества и оценку этих изделий проводят в соответствии с требованиями ГОСТ или ТУ. Соблюдение рецептов, технологических инструкций и санитарного режима по ходу технологического процесса — это необходимые условия для получения высококачественных колбасных изделий.
СЫРЬЕ И МАТЕРИАЛЫ В производстве колбасных изделий решающее значение принадлежит сырью. От качества сырья в прямой зависимости находится качество готового продукта. Основным сырьем является говядина и свинина. Значительно реже используют баранину и мясо других видов животных. Мясо, предназначенное для колбасных изделий, должно быть свежим и доброкачественным. По упитанности используют мясо любой категории, но говядину предпочитают с минимальным количеством жировой ткани. По термическому состоянию для производства колбас пригодно мясо парное (остывшее), охлажденное и размороженное. Замороженное мясо в блоках также пригодно для изготовления колбасы. Парную говядину используют только для изготовления вареных колбас, сосисок, сарделек. Из такого мяса получают более качественную продукцию. Суть в том, что парное мясо лучше поглощает влагу, чем охлажденное или размороженное, что весьма важно при изготовлении указанных изделий. Повышенная влаго-емкость парного мяса способствует получению установленного выхода и влажности готовой продукции, улучшает вкус и нежность. Применение парного мяса удешевляет производственный процесс, поскольку в этом случае нет естественной потери при охлаждении. Животные жиры являются необходимым сырьем для подавляющего большинства колбасных изделий. Жиры добавляют с целью повысить калорийность и придать колбасным изделиям нежный и приятный вкус. При производстве колбасных изделий используют в основном низкоплавкие жиры. Свиной шпик и курдючный жир применяют в виде кусочков различной формы и величины. При изготовлении ливерных колбас, сосисок и сарделек используют внутренний топленый жир. Жиры, используемые в колбасном производстве, должны быть свежими и доброкачественными. В диетические колбасы дополнительно вносят молоко и меланж. При изготовлении низких сортов вареных и полукопченых колбас, зельцев, студней используют дополнительно такое сырье, как субпродукты различных категорий (печень, легкие, мозги, свиную шкуру и др.), кровь, казеин. При изготовлении мясо-растительных колбасных изделий в качестве сырья используют различные крупы, крахмал, соевый концентрат, пшеничную муку. По технологии, кроме основного сырья, для изготовления колбасных изделий требуются компоненты, которые придают колбасным изделиям специфический вкус и аромат. К таким компонентам относятся поваренная соль, нитрит и сахар, а также специи и пряности. К специям и пряностям относят лук, чеснок, черный, белый, красный и душистый перец, мускатный орех, гвоздику, корицу, кардамон, тмин, лавровый лист, вино, коньяк и др. Добавляют их в изделия в количествах, установленных рецептами. Для всех материалов, пряностей и специй установлены стандартные требования по физическим и химическим свойствам, а также степени их бактериальной загрязненности. Предпочтительно использование экстрактов специй, так как они менее обсеменены микроорганизмами. Для улучшения качества продукции находят применение такие материалы, как фосфаты, глютами-нат и аскорбинат натрия. Билет 20 Грыжа живота — смещение органов вместе с париетальным листком брюшины под кожу или в другие ткани и полости. Анатомическими элементами грыжи являются: грыжевое отверстие, грыжевой мешок, грыжевое содержимое. Грыжевым отверстием может служить ненормально широкая естественная щель (пупочное кольцо, паховый канал) или разрыв брюшной стенки. Грыжевое отверстие называют грыжевым кольцом, когда оно узкое и короткое, грыжевыми воротами, например при широком разрыве, грыжевым каналом, когда оно пересекает стенку полости под углом и удлинено. Грыжевое отверстие с течением времени постепенно расширяется. Грыжевой мешо кобразуется париетальной брюшиной, часто с подлежащей фасцией. В нем различают устье (место сообщения с анатомической полостью), шейку (наиболее узкий участок входа в мешок), тело (расширенный отдел вместилища), дно. В большинстве случаев длительного существования грыж мешок местами прорастает рубцовой тканью; при этом возникают перемычки, спайки, формируются сообщающиеся камеры. При разрыве мышечных пластов брюшной стенки часто на одном уровне с разрывом или вблизи него нарушается также целость брюшины. В этом случае содержимое полости смещается под кожу, отслаивающуюся обычно вместе с подкожным мускулом и желтой брюшной фасцией. Патологоанатомически это пролапс — prolapsus, а в практике он рассматривается в группе травматических брюшных грыж. Грыжевое содержимое в составе подвижных органов нередко выступает из полости значительными по объему отделами, деформируя соответствующие участки брюшной стенки. Иногда к основному грыжевому содержимому добавляется транссудат — «грыжевые воды» (см. ниже). Классификацией грыж предусматривается анатомическое их определение: пупочная, паховая, промежностная и т. п. В каждой из этих групп имеются образования с характерными анатомическими особенностями, требующими дополнительной дифференциации при их рассмотрении. В отдельных группах по этиологии различают грыжи врожденные — Н. congenitae, обычно обусловленные ненормальностями формирования естественных щелей, например пахового канала, когда он остается укороченным, излишне широким. К ним относятся не только те грыжи, с которыми рождаются, а вообще грыжи, возникающие в любом возрасте, для образования которых нужны врожденные аномалии развития той области тела, где грыжа появляется (А. П. Крымов). Грыжи приобретенные — Н. acquisitae — образуются в связи с механическим повреждением брюшной стенки, а также при длительном натужи-вании и чрезмерном напряжении (тяжелые роды, заваливание в ямы, тяжелая работа). У новорожденных животных повышение внутрибрюшного давления является важнейшим фактором растяжения слабых мест брюшной стенки (пупочного кольца, пахового канала) и образования грыж. Оперативные вмешательства нередко сопровождаются образованием грыж, когда восстановление брюшной стенки выполняется без должного последовательного смыкания ее тканевых пластов. Среди травматических грыж весьма неблагоприятны рецидивирующие. Они образуются вследствие растяжения рубцовой ткани, замещающей дефекты мускулатуры. К факторам, способствующим образованию грыж, относятся погрешности в кормлении и содержании маток и сосунов. Имеется в виду несбалансированность рационов, недостаточность витаминов, макро- и микроэлементов, содержание животных в затемненных помещениях при отсутствии достаточного моциона. Именно этим предопределено возникновение большого числа грыж, особенно у поросят, рождающихся зимой и в начале весны, когда полноценное кормление животных и благоприятные условия содержания их труднее обеспечиваются. По состоянию содержимого различают вправимую, невправимую и ущемленную крыжи. Грыжа вправимая — Н. reponibilis — характеризуется свободной подвижностью содержимого. Наполнение мешка не сопровождается болезненностью. Ткани его стенки при этом только несколько растягиваются, но остаются такими же эластичными, как и после репозиции содержимого, что легко достигается равномерным надавливанием рукой или изменением положения тела животного. Другие симптомы, определяемые пальпаторно (консистенция содержимого, особенности смещения его в грыжевом кольце), аускультацией (перистальтические шумы, наличие газов) привносят конкретные данные к уточнению диагноза, к определению размеров, формы, плотности грыжевого кольца. Грыжа невправимая — Н. irreponibilis — возникает вследствие срастания содержимого с грыжевым мешком. Причиной этому служит образование спаек из фибрина и последующие хронические воспалительные изменения, сопровождающиеся фиброзом. В невправимых грыжах имеются существенные различия в симптомах, в зависимости от ширины кольца и свойств грыжевого содержимого. Например, в грыжах с широкими воротами содержимое без затруднений репози-цируется при надавливании рукой, но тут же смещается в полость мешка с ослаблением давления. Функциональные нарушения со стороны кишечника при этом слабо выражены лишь в том случае, когда его петли наполняются содержимым и длительно задерживаются в мешке. Преходящие атоничные состояния усугубляются также вследствие переполнения желудка и кишок, скармливания грубых кормов, длительного пребывания животного в стоячем положении, усталости и т. п. Уточненный диагноз анатомических изменений (ширина сращений, плотность спаек, их расположение) устанавливается при операции. Более яркая картина наблюдается в невправимых грыжах с относительно узкими кольцами, Здесь грыжевое содержимое, чаще всего сальник, неизменно фиксировано в грыжевом мешке. С течением времени он склерозируется' и приобретает вид гроздевидных, липоматозных разрастаний, каждая из-долек которых превышает по объему диаметр грыжевого отверстия. Грыжа ущемленная — Н. incarcerate — представляет собой тяжелое заболевание, угрожающее жизни животного, обусловленное сжатием содержимого на уровне грыжевого кольца. По механизму различают эластическое и каловое ущемления. Эластическое ущемление обусловлено сокращением тканей узкого грыжевого отверстия и прилежащих участков брюшной стенки. Когда при сильном повышении внутрибрюшного давления в грыжевое отверстие проникает кишечная петля или другой орган, механизм странгуляции возникает сразу: эластичное кольцо циркулярно сдавливает его. В дальнейшем странгуляция дополняется рефлектор-, иыми спазмами, предопределяемыми болезненностью в зоне ущемления. Так называемое каловое ущемление предопределено сдавливанием отводящего колена кишки при нарастающем наполнении приводящего. В этом случае к странгуляции в последующем также присоединяются рефлекторные спазмы. Следовательно, в патогнезе ущемленных грыж наиболее верным будет учитывать сочетанное действие обоих этих механизмов: в одном случае эластическая странгуляция дополняется наполнением приводящего колена кишки, в другом — к давлению приводящим коленом, наполняющимся кашицеобразным содержимым и газами, присоединяется спастическое сдавливание кольцом. Угроза ущемления в травматических брюшных грыжах с широкими воротами, где выпадает какой-либо из этих факторов, отсутствует. В основе патологоанатомических изменений при ущемлении лежит нарушение крово- и лимфообращения. Первоначально это характеризуется отеком содержимого вследствие сдавливания лимфатических сосудов и век; на нем по уровню грыжевого кольца образуется странгуляционная борозда; в грыжевом мешке скапливается в ограниченном количестве транссудат. С нарастанием венозного застоя и развитием стаза необратимое состояние возникает в кишечной петле в течение 10... 12 ч; слизистая оболочка становится проницаемой для микробов; наступает гангрена грыжевого содержимого, мешка и его покровов. В отдельных случаях, чаще у свиней, с отторжением распадающихся тканей образуется кишечный свищ; обычно же осложнение завершается септическим перитонитом. Заболевание сопровождается неблагоприятными симптомами кишечной непроходимости. Относительно редко наблюдается ретроградное ущемление, когда в грыжевое кольцо вклинивается широкий участок брыжейки, при этом соответствующая кишечная петля, лежащая в брюшной полости, поражается особенно-сильно. Пупочная грыжа (Hernia umbilicalis) Наиболее часто пупочная грыжа наблюдается у многоплодных животных — поросят, щенят. Грыжевым отверстием здесь служит пупочное кольцо, остающееся расширенным после родов; грыжевым мешком — истонченная в вентральном отделе брюшина; содержимым — сальник; при значительном диаметре кольца в грыжевой мешок проникают вместе с сальником петли тонкого кишечника. Рецидивы пупочных грыж сопровождаются формированием отверстия шириной в несколько сантиметров (рис. 31) с опусканием в уплотненный мешок (сращение брюшины с Рубцовыми тяжами и кожей) нескольких кишечных петель. Экономический ущерб, причиняемый грыженосительством в пупочной области у свиней, значителен, учитывая, что эта патология регистрируется у поросят в отдельных хозяйствах до 20 % общей их численности. Поросята-грыже-носители отстают в приросте живой массы от сверстников до 10 кг в течение первых 2, 5...3 мес; значительную их часть подвергают оперированию, большую половину убивают до откорма. Этиология. В этиологии пупочных грыж многие авторы существенное значение отводят врожденным недостаткам развития с внутриутробным формированием широкого пупочного кольца, считая такой порок наследственным. Элементом врожденного предрасположения следует считать замедленное редуцирование пупочной вены и пупочной артерии с урахусом. Из остатков этих тяжей образуются подобия связок — пупочно-печеночная и пупочно-пузырная. Подвешенное на связках пупочное кольцо растягивается в противоположных направлениях, когда.повышается внутриутробное давление. У грыженосителей эти тяжи, действующие как связки, обнаруживаются даже в 5-месячном возрасте (Ф. Л. Задвир-ный). Такой механизм растяжения проявляется в момент родов и в последующем до стабильного уплотнения тканей, участвующих в образований пупочного кольца. Значимы также другие факторы, главные из них следующие. 1. Пуповина у многоплодных животных сравнительно коротка по отношению к длине матки, особенно у тех плодов, которые располагаются в передних отделах рогов. Натяжение ее влечет к расширению пупочного кольца у плода еще до выхода его из родовых путей. 2. У новорожденных пупочное кольцо расширяется в момент борьбы за сосок, когда они опрокидывают друг друга, вытягиваются, прогибая спину. 3. В этом же смысле неблагоприятно сказывается ползание поросят через низкие лазы, в которых они сильно изгибают позвоночник, натягивают вентральную стенку живота, придавливая ее с засыхающей пуповиной к полу. 4. Форсированное расширение пупочного кольца неизбежно при отрывании пуповины у новорожденного, когда эта операция выполняется без должного фиксирования оставляемой культи. 5. С началом применения дополнительной подкормки в 2...3-недельном возрасте у молодых животных часто наблюдаются запоры, поносы, иногда рвота, что сопровождается тенезмами с повышением внутрибрюшного давления. Клинические признаки и диагноз. В области пупка обнаруживают мешковидную припухлость различной величины, при выпадении кишечника прослушивается его перистальтика. При диагностике следует учитывать возможные осложнения грыжи. Из осложнений, связанных с травмированием пупочной области при наличии грыжи, весьма часто наблюдаются у поросят разрыв, иногда со вскрытием грыжевого мешка и эвентерациеи содержимого; изъязвление склерозированнои кожи вследствие повторного повреждения ее при невправимой грыже. Инфицирование тканей грыжевого мешка и его содержимого нередко сопровождается формированием абсцесса. Обычно абсцесс ограничен плотной пиогенной оболочкой, длительное время остается осумкованным, без наклонности к самопроизвольному вскрытию. Диагностируется такой абсцесс без затруднений, когда содержимое грыжи свободно репозицируется. В этом случае четко определяется кольцо, а вблизи него пальпируется округлая, малоболезненная, флюктуирующая припухлость. При необходимости диагноз уточняют пункцией (насасывается сливкообразный гной). Общеорганические нарушения (температура тела, пульс, дыхание, изменения со стороны крови и пр.) слабо выражены. В дифференциально-диагностическом отношении необходимо учитывать формирование абсцесса в пупочной области в отсутствии грыжи. Строго контурированная припухлость в этом случае внешне во многом напоминает грыжу. То, что грыжевое кольцо не обнаруживается и стенка флюктуирующего очага не связана непосредственно с пупком, наконец, пункция его помогают уяснить особенности процесса. В числе хронических воспалительных процессов, усложняющих 'диагностирование грыжи, следует иметь в виду образование неспецифической пупочной гранулемы. Она обычно развивается на почве инфицирования пупочного канатика или же в связи с длительным разрастанием грануляционной ткани при распаде ущемленного сальника. Ее плотный тяж, сужающийся к пупочному кольцу, снаружи покрыт склерозированнои, складчатой кожей; в участках изъязвления в ограниченном количестве отделяется гнойный экссудат. Лечение. Консервативные способы терапии (бандаж, втирания раздражающих мазей, инъекции вокруг грыжевого отверстия спирта, гипертонического раствора натрия хлорида и т. п.), цель которых — добиться закрытия дефекта брюшной стенки пролиферированной соединительной тканью, в далеком прошлом были внедрены в практику, когда избегали кровавых вмешательств. У животных эти способы неэффективны. В современной практике не применяются также способы сближения стенок грыжевого кольца деревянными и металлическими лещетками, накладываемыми на грыжевой мешок вместе с кожей. Единственным рациональным способом в настоящее время является герниотомия, в методике которой важно рассмотреть отдельные приемы. 1. Истонченную, травмированную или изъязвленную кожу, плотно сросшуюся с грыжевым мешком, иссекают овальным разрезом по боковым стенкам грыжевого мешка, где она легче отделяется в направлении к грыжевому кольцу. 2. Узкое грыжевое кольцо во всех случаях наиболее рационально закрывать кисетным швом. 3. Пупочная грыжа с сальником в качестве содержимого с узким грыжевым кольцом после первой неудавшейся попытки репо-зицировать его подлежит оперированию в следующем порядке: отпрепарировав грыжевой мешок, проводят вокруг кольца нитку кисетного шва с первым оборотом узла; ножницами одним приемом отсекают грыжевой мешок и его содержимое; тут же затягивают узел. 4. Массивный толстостенный грыжевой мешок во всех случаях подлежит рассечению; этим обеспечивается контроль глазом состояния содержимого и особенностей сращения его со стенкой мешка. При спайках, трудноразделимых тупым способом, кишку погружают в полость с отсекаемой стенкой грыжевого мешка. 5. В том случае, когда широкий грыжевой мешок отделяется с некоторым трудом, травмируется и загрязняется, рационально удалить его путем последовательного отшивания с наложением узловатых швов. Короткий разрез для последующего шва при подтянутом грыжевом мешке ограничивает выпадение сальника и кишечных петель, когда грыжевой мешок отсекается одним приемом или на большом участке. 6. Как бы ни было закрыто грыжевое отверстие (кисетным швом, малым или большим числом узловатых швов), крайне важно подкрепить фиксацию его стенок валиковым швом, накладываемым на кожу, с захватыванием по обеим сторонам апоневроза у белой линии. С натяжением нитей этого шва закрытая щель грыжевого отверстия вворачивается в брюшную полость. Таким швом с применением прочных ниток надежно закрываются весьма широкие грыжевые ворота. , 7. При оперативных вмешательствах в случае рецидива пупочных грыж, где площадь растянутых рубцов очень широка, используют аллопластику путем подшивания редкопетлистых пластинок лавсана, тефлона, фоторлона или других синтетических тканей. 8. Неизбежность резекции кишки необходимо предвидеть во всех случаях ущемления и при разрывах грыжевого мешка. Получение спермы. При выборе метода получения спермы следует ориентироваться на такой, который отвечает следующим основным требованиям: 1) позволяет получать весь эякулят без всяких потерь; 2) не снижает количества и жизнеспособности спермиев; 3) гарантирует здоровье производителей от травм и особенно от инфекционных заболеваний; 4) прост технически, выполним в производственных условиях без сложного оборудования; 5) обеспечивает стерильность получения спермы. Все существующие методы получения спермы можно разделить на: 1) уретральные, позволяющие получать сперму непосредственно из уретры самца, и 2) влагалищные, заключающиеся в собирании спермы из влагалища самки после ее естественного осеменения. Уретральные методы получения спермы. Русский метод получения спермы изобретен в 1931 г. Н. В. Комиссаровым, В. И. Липатовым, И. М. Родиным. Сущность его заключается в применении искусственной вагины, позволяющей воспроизводить механические и термические раздражения нервных окончаний полового члена производителя и получать от него полноценный эякулят. Искусственная вагина представляет собой прибор, состоящий из цилиндра, изготовленного из жести, резины или эбонита, в просвет которого вставлена эластическая резиновая трубка. Концы резиновой трубки завернуты на конце цилиндра, благодаря чему между внутренней поверхностью цилиндра и наружной поверхностью резиновой трубки образуется замкнутое пространство, сообщающееся с внешней средой через патрубок, предназначенный для вливания воды и надувания воздуха между стенками цилиндра и резиновой трубки. Один конец искусственной вагины остается открытым, а на другой укрепляют спер-моприемник для собирания спермы. Конструкция искусственных вагин имеет значительные вариации в зависимости от вида животных. Получение спермы посредством искусственной вагины. У животных всех видов метод искусственной вагины позволяет получать сперму двумя путями: 1) на живую самку, самца или кастрата и 2) на чучело. Сперму «на самку» получают в обстановке, обычно создаваемой при естественном осеменении. Ко рову и овцу лучше помещать станке. В момент садки техник держит подготовленную вагину справа на уровне таза самки, направляет половой член производителя в отверстие искусственной вагины и удерживает последнюю до конца эякуляции. При получении спермы на искусственную вагину требуется определенный навык. Нельзя подставлять вагину к головке полового члена преждевременно или, наоборот, поздно, так как это обусловливает торможение эякуляции. Вагину следует подставлять в тот момент, когда половой член производителя приближается к крупу самки. При этом у быка и барана левой рукой через препуций слегка отводят половой член в сторону. В момент эякуляции у крупного и мелкого рогатого скота искусственная вагина должна располагаться под углом 35—45° по отношению к горизонтальной плоскости. У животных других видов уклон может быть меньше. Слишком большие уклоны вагины вверх, вниз и в стороны могут травмировать половой член. При получении спермы вместо коров можно использовать волов или быков (менее желательно), а вместо овец — валухов или баранов. Эти животные во избежание торможения половых рефлексов у производителя, профилактики поражений связочного аппарата тазовых конечностей должны быть ниже производителя (для быка примерно на 10 см) и с нешироким крупом. От производителей всех видов сельскохозяйственных животных можно получать сперму в искусственную вагину, пользуясь вместо живой самки или кастрата чучелом. Искусственную вагину располагают сбоку чучела так же, Как и при получении спермы на живую самку, или чаще всего помещают вагину внутри чучела в тазовой полости. Для усиления половых рефлексов, получения большего и лучшего качества спермы от быков-производителей пользуются передвижным чучелом конструкции П. И. Пакепаса. Бык активно идет за чучелом. Когда его останавливают, бык охотно делает садку. По окончании эякуляции искусственную вагину поворачивают спермоприемником вниз, открывают краник, чтобы выпустить воздух и обеспечить стекание спермы в спермоприемник. Затем спермоприемник отделяют от вагины и немедленно передают его в лабораторию, а вагину — в моечную. в Сперму хряков обычно получают на чучело. Предложено много чучел различных конструкций. Удобным оказалось деревянное чучело модели А. В. Квасницкого с откидной спинкой. Внутри чучела размещены электрическая вагина со спермоприемником и две электролампочки, поддерживающие определенную температуру. Чучело укреплено на деревянной площадке. Имеется металлическое чучело конструкции В. Б. Дорошкова. Его достоинством является возможность обогревания задней части и изменения угла наклона искусственной вагины. Поэтому создаются наилучшие условия для процесса эякуляции. Данное чучело легко поддается механической очистке, мойке, сушке и дезинфекции. Проходят производственное испытание два варианта металлических чучел: со съемным и обычным вагинодержателем. При получении спермы у жеребца вагину нужно крепко держать у таза кобылы, чтобы создать нужный упор для полового члена. Вследствие сильного увеличения объема полового члена во время эрекции головки создается опасность разрыва камеры. Поэтому при чрезмерном повышении давления в вагине открывают краник или отвертывают немного винтовую пробку, выпускают часть воздуха и воды и вновь завинчивают пробку. Давление в вагине следует изменять на основе учета индивидуальных реакций жеребца. При получении спермы от кролика искусственную вагину подставляют рукой, подведенной в области промежности, под круп самки или чучела. Получить сперму от птицы несложно. Сначала производителя приучают делать садку на самку, фиксированную руками. Для удобства работы применяют высокий стол. При получении спермы птицу фиксируют левой рукой, а в правой руке держат вагину. В момент проявления обиимательного рефлекса искусственную вагину подносят к клоаке птицы. Половой член у петуха отсутствует. Поэтому совокупительного рефлекса нет и эякуляция заканчивается быстро, характерным толчком. У селезня совокупительный рефлекс и эякуляция продолжаются от 2 до 5 мин. Половой член хорошо развит, его длина 10—12 см и больше. Для облегчения введения полового члена селезня в вагину утку фиксируют на краю стола в распластанном состоянии. Правила получения спермы. Получают сперму от производителей в условиях теплого, светлого, просторного манежа и идеальной чистоты. За 1, 5—2 ч до получения спермы в манеже и лаборатории включают бактерицидные лампы, что уменьшает микробную и грибковую загрязненность спермы. Производителей, чучело или животное, на которое берут сперму, тщательно чистят, используют поролоновые накладки на искусственную вагину, применяют зоогигиенические фартуки. При чистке производителей особое внимание обращают на нижнюю часть живота, область препуциального отверстия, которую обмывают теплым 2%-ным раствором соды, фурацилином 1: 5000. В теплое время года быков, хряков и жеребцов моют под душем. Некоторые специалисты рекомендуют полость препуция у быков промывать различными дезинфицирующими растворами. Однако следует иметь в виду, что дезинфицирующие вещества при длительном их применении уменьшают бактерицидные свойства слизистой оболочки препуция. На станциях искусственного осеменения в ряде стран полость препуция у быков перед получением спермы не промывают. Чтобы не допустить несчастных случаев при получении спермы от производителей, особенно от быков и жеребцов, в манеже устраивают заградительные столбы. Лицам, получающим сперму от производителей, не следует присутствовать при ветеринарно-санитарных обработках, особенно таких, которые причиняют животным- боль. Вообще в станке и манеже, предназначенных для получения спермы, 'запрещается проводить ветеринарные мероприятия (туберкулинизация, взятие крови и др.). так как при этом у производителей возникают условные тормозные рефлексы на станок или манеж. Производителям всех видов животных веред получением спермы следует обязательно предоставлять проводку, что усиливает проявление половых рефлексов. Для улучшения качества эякулята в некоторых странах на станциях искусственного осеменения перед получением спермы быка сильно возбуждают коровой. Особенно хорошие результаты получаются при использовании самки в охоте. Макмилан и Фильден установили, что возбужденне быка в присутствии коровы в охоте увеличивает объем получаемой спермы на 18, 4—18, 9% по сравнению с объемом, получаемым яри использовании для возбуждения той же коровы при • отсутствии охоты. Половое возбуждение быка в течение 6—10 мин является важным средством улучшения качественных показателей спермы (увеличение объема, концентрации, уменьшение микробных тел и др.) и ее оплодотворяющей способности (Т. Стоянов). Искусственную вагину для получения спермы у производителей необходимо правильно собрать и подготовить. Новую камеру тщательно моют горячей водой с содой, чтобы удалить сернистые соединения. После высушивания камеру натягивают на цилиндр так, чтобы гладкая ее поверхность была обращена внутрь, а неровная — к цилиндру. Внутренняя трубка искусственной вагины должна быть равномерно натянута на основной цилиндр. Слабое или слишком сильное натяжение трубки, перекручивания ее могут нарушить коитус. Искусственную вагину надо приготовить так, чтобы воспроизвести естественные условия при коитусе (температуру, давление, скользкость и др.). Каждый раз перед употреблением искусственную вагину обеззараживают в соответствии с действующей инструкцией по проведению искусственного осеменения. Если- после обеззараживания внутренняя поверхность вагины остается влажной, ее досуха протирают стерильной ватой или хорошо проутюженной салфеткой. Очень быстро и надежно стерилизация вагины достигается в паровом стерилизаторе конструкции В. А. Пасечника. В стерилизаторе 50 л воды закипает за 15— 17 мин. Стерилизация паром при температуре 100° 60 вагин и 80 спер-моприемников проводится за 1, 5—2 ч. Разовые спермоприемники из полиэтиленовой пленки вместе с искусственными вагинами стерилизуют автоклавированием. В Чехословакии для стерилизации искусственных вагин используют специальный стерилизатор с ультрафиолетовым излучателем, расположенным внутри трубчатого держателя, на который фиксируют вагину. Патогенные микроорганизмы уничтожаются за 40 с. При этом резиновые стенки искусственной вагины не повреждаются. Для заполнения вагины готовят воду, подогретую до 60—70°. Перед использованием вагины температуру проверяют химическим термометром, вводимым в просвет внутренней трубки. Постоянную температуру в подготовленной искусственной вагине удобно поддерживать помещением ее в шкаф-термостат. При получении спермы температура вагины должна быть в пределах 40—42°. Исследования И. И. Родина показали, что для вагины быка и барана оптимальной температурой является 41—42°. В этом случае температура резиновой камеры у входа в вагину соответствует температуре тела животного, что способствует нормальному коитусу. Понижение температуры нарушает динамику эякуляции. Температура выше 42°, не оказывая отрицательного влияния на течение полового акта, снижает жизнеспособность и переживаемость спермиев. Кроме того, повторные применения вагины с высокой температурой изменяют порог возбудимости, вследствие чего в дальнейшем у производителей эякуляция происходит только при более высокой температуре вагины, лодной вагины обусловливает быстрое развитие у производителя тормозных рефлексов. Для смазывания внутренней стенки вагины используют простери-лизованный на водяной бане чистый белый или желтый вазелин. Однако от вазелина резиновая камера быстро разрушается, ее эластичность уменьшается. Поэтому после получения спермы необходимо как молено быстрее очистить вагину от вазелина. Лучшие результаты для смазывания резиновой камеры получаются от применения специальных растворов, предложенных В. А. Пасечником (рецепт № 1: крахмал—6 г, глицерин—10 г, дистиллированная вода—100 мл; рецепт № 2: крахмал — б г, глицерин —10 г, кипяченое молоко—100 мл; рецепт № 3: крахмал—6 г, глицерин —10 г, лимоннокислый натрий—3 г, вода дистиллированная—100 мл), или глицериновых сред для разбавления спермы. Необходимо тщательно следить за тем, чтобы внутренняя поверхность искусственной вагины была смазана по всей ее длине, за исключением конца, который оставляют на 3—4 см несмазанным, чтобы он лучше зажимал спермоприемник. Особое внимание уделяют чистоте спермоприемиика. Его каждый раз тщательно моют раствором соды и чистой водой. Перед употреблением спермоприемник стерилизуют в автоклаве или кипятят, а затем ополаскивают свежепростерилизованным физиологическим раствором хлористого натрия. Объем эякулята быка и барана очень мал. Поэтому для предотвращения гибели спермиев от температурного шока при получении спермы необходимо иметь теплый, лучше стеклянный двустенный спермоприемник. Межстенное пространство спермоприемника для быка вмещает 100 мл, а для барана —50 мл воды. Вода должна быть подогрета до 30—35°. При накачивании в вагину воздуха надо нагнетать его столько, чтобы выходное отверстие ее было полностью закрыто, а полость окружена упругими, напряженными, ровными (без складок) стенками. При недостаточном давлении эякуляция протекает вяло. Слишком сильное давление, затрудняющее введение полового члена в вагину, может нарушить эякуляцию: она нормально протекает у барана при давлении в вагине 40—60 мм ртутного столба. При получении спермы следует учитывать индивидуальные особенности производителей, их разную степень реактивности. Одних быков сразу подводят к самке или чучелу, других предварительно выдерживают, не допуская к станку в течение 3—5 мин, и т. д. Техник должен учитывать индивидуальные особенности производителей с целью, получения максимального количества и лучшего качества спермы. У хряков эякуляция нарушается или совершенно не происходит, если давление воздуха в искусственной вагине ослабевает. Поэтому после накачивания воздуха в искусственную вагину ее надо проверить; в ней не должно быть утечки воздуха или воды. Каждый раз по окончании работы, и особенно когда при получении спермы произошли соскакивание или разрыв камеры, необходимо проверять наличие всех резиновых деталей вагины. Слетевшие с вагины резиновые кольца или оторвавшиеся части резиновой камеры могут надеться на половой член и пережать его вплоть до некроза. После получения спермы воду из вагины выливают и тщательно отмывают теплым раствором или щелоком ее стенки от остатков спермы и смазки. Обмытую вагину ополаскивают чистой водой и хранят в сухом состоянии. Стерильной салфеткой протирают препуций, на волосках которого в момент коитуса в искусственную вагину может оставаться вазелин. К нему прилипают различные механические примеси, вызывая баланопостит. Часто это бывает у быков, когда в качестве подстилки используют опилки. Поэтому опилки применять нельзя. Метол получения спермы на вагину наиболее распространен в практике искусственного осеменения и считается лучшим нз всех существующих методов как по простоте техники, так и по качеству и количеству получаемой спермы. Фистульный метод получения спермы представляет большой теоретический г практический интерес. При этом методе значительно упрощается вся работа по подготовке и получению спермы, а самое главное, удается получать идеально чистую, стерильную сперму, обладающую высоком переживаемостью. При использовании такой спермы достигается повышенная оплодотворяемость. Производителей с уретральной фистулой можно использовать долгие годы. Для получения спермы через фистулу проводят промежностную уретростомию. Впервые эту операцию предложил в 1923 г. проф. Л. С. Сапожников при заболеваниях полового члена у жеребцов. Позднее И. В. Глумаков начал применять эту операцию для получения ссер-мы у быков, а в 1936—1938 гг. ее широко использовал в коневодческой практике X. И. Животков (рис. VI). Уретростомию необходимо производить с таким расчетом, чтобы нижний конец фистулы располагался на уровне дна таза между седалищными буграми (технику операции см. в учебнике оперативной хирургии). Через несколько дней после операции жеребцы приспосабливаются к новым условиям, для мочеиспускания они принимают позу, характерную для кобылы, и не овлажняют мочой конечности. Через 3— 4 недели после операции производитель может быть использован для получения спермы через фистулу. Перед получением спермы корень хвоста забинтовывают, а края фистулы протирают ватными тампонами, смоченными в растворе борной кислоты, физиологическом растворе натрия хлорида, 50—60%-ном спирте и др. В момент садки жеребца на кобылу в охоте хвост производителя отводят в сторону и под фистулу подставляют сосуд с овальным входом. Через несколько секунд сперма сильной струей заполняет спермоприемник (сосуд). На все это требуется 3—4 мин. Метод заслуживает дальнейшей разработки. Получение спермы посредством спермособирателей.Спермособиратель представляет собой прибор, состоящий из тонкой резиновой трубки, один конец которой наглухо закрыт, а свободный конец растянут на широком резиновом кольце. Посредством спермособирателя сперму получают двумя способами: 1) без введения его во влагалище и 2) с введением во влагалище самки. Обнадеживающие результаты дало применение спермособирателя для быка, сконструированного И. И. Родиным, в котором создаются более естественные условия для эякуляции. Цсикава (Япония) предложил спермособиратель для получения спермы от петухов. В СССР для получения спермы от гусаков используют электрический спермособира-тель. Получение спермы методом мастурбации — путем механического раздражения головки полового члена трением о нее препуциального мешка. Этот метод дает хороший эффект только у собак. Практика показала, что у собак быстро развивается рефлекс на мастурбацию, в силу которого при помещении собаки на стол и уже при подготовке к мастурбации у животного появляется эрекция, а после нескольких соприкосновений препуция с головкой полового члена происходит эякуляция. У копытных животных этим методом получать сперму не удается. Получение спермы методом массажа- У быка перед получением спермы волосы на препуциальном мешке подстригают. Без предвари- тельного контакта производителя с коровой (без возбуждения) сперму получить не удается. Поэтому быка подводят к корове для общего возбуждения, под влиянием которого сперма из придатка семенника перемещается в ампулы спермиопровода. После этого руку, обильно смазанную вазелином, вводят в прямую кишку быка — за ампуловидное ее расширение, а затем отводят назад вместе со свободно перемещающимся участком прямой кишки в тазовую полость, где нащупывают шейку мочевого пузыря и расположенные кпереди ампулы спермиопроводов, выступающие в форме утолщенных шнуров, и пузырьковидные железы. Нежным поглаживанием рукой их содержимое выдавливают и по мере его выделения собирают в стеклянный сосуд или в обычный спермопри-емник. Бюрроу и Куини (1939 г.) предложили получать сперму от петухов путем массажа нижней поверхности живота. Сейчас рекомендуется следующий порядок получения спермы этим методом: техник, сидя на стуле, фиксирует ноги петуха коленями; правой рукой массирует живот и одновременно левой — поясницу. Массаж проводят путем легкого поглаживания спереди назад 3—4 раза в течение нескольких секунд. Когда появляется реакция на массаж, выражающаяся подниманием хвоста, легким поглаживанием задней части живота большим и указательным пальцами левой руки вызывают эрекцию коопуляционного органа и, сжимая пальцами клоаку, получают сперму в спермоприемник, находящийся в правой руке. На получение спермы от одного петуха затрачивается около 20 с. Влагалищные методы получения спермы. Губочный метод получения спермы предложил И. И. Иванов и в первые годы применений искусственного" осеменения был самым распространенным. Его применяли для получения спермы от быков, баранов и жеребцов. Для свиней он оказался совершенно непригодным, так как вследствие узости вульвы и вагины во влагалище свиньи можно ввести только небольшую губку, которая не может впитать в себя весь эякулят. В настоящее время губочный метод в практике искусственного осеменения не применяется. Сущность метода заключается в использовании губки, которую после соответствующей обработки вводят во влагалище самки, находящейся в состоянии половой охоты, а затем допускают коитус с производителем. После эякуляции губку извлекают из влагалища, а эякулят, выделившийся во время полового акта и впитавшийся в губку, отжимают руками или специальным прессом. Практика и специальные наблюдения показали, что губочный метод имеет следующие недостатки: 1) губка, как постороннее тело, может нарушать динамику эякуляции, что обусловливает торможение половых рефлексов и, в частности, уменьшение объема эякулята; 2) техника подготовки губки сложна, и для этого требуется специальная обработка; 3) количество спермиев уменьшается, подвижность и переживаемость its резко снижаются вследствие травмирования во время выжимания из губки; 4) губка, введенная во влагалище в фазу течки, впитывает в себя значительное количество влагалищной слизи, которая отрицательно влияет на спермиев; 5) при губочном методе производитель находится в непосредственном контакте с самкой, вследствие чего могут распространяться инфекционные болезни. Влагалищный (зеркальный) метод заключается в собирании спермы из влагалища влагалищным зеркалом или другими приборами тотчас после коитуса. Этот прием использовали у коров, овец и лошадей; у лошадей сперму удается собрать, только когда шейка матки закрыта. У свиней Е. Ингер и Н. Н. Михайлов предлагают получать сперму после введения стерильного тампона в переднюю часть влагалища. В этом случае во время эякуляции сперма вытекает из вульвы. Влагалищный метод получения спермы предельно прост по технике, но он не применяется ввиду следующих недостатков: 1) сперма теряется в складках слизистой оболочки влагалища; 2) эякулят загрязняется влагалищной слизью, что снижает качество спермиев; 3) так же как и губочный, этот метод не исключает возможности распространения инфекции через сперму. • К, Братанов предложил простой метод получения спермы от петуха, селезня и гусака, не требующий специального оборудования. Самку-птицу выдерживают на голодной диете. Через 36—48 ч с помощью обыкновенного резинового баллончика делают глубокое промывание клоаки физиологическим раствором. Стерильной ватой, намотанной на кончик пинцета, высушивают и очищают клоаку. После этого допускают садку и коитус самца. Затем птице придают вертикальное положение клоакой вниз и стеклянной ложкой в несколько приемов извлекают содержимое клоаки на часовое стекло. Полученная таким путем сперма не-совсем чистая, ношена сохраняет свою активность, что позволяет оценить качество спермы.аботки порочных условных половых Кроме описанных методов, И, И. Иванов разработал метод получения спермы от убиваемых птиц. После вскрытия брюшной полости выжимают сперму из ампуловидных расширений спермиопроводов поглаживанием их по направлению к клоаке, где сперму собирают на часовое стеклышко. У пушных зверей и некоторых диких животных можно проколоть иглой хвост придатка, извлечь спермиев и разбавить разбавителем. У диких животных при неожиданной гибели ценного производителя и других показаниях можно произвести кастрацию, отделить придаток от тестикула, изрезать его на мелкие кусочки, из которых физиологическим раствором или специальным разбавителем вымывают спермин. Полученную таким способом сперму И. И. Иванов называл искусственной. Исследование спермы. Решающим показателем качества производителя служат результаты исследования спермы. Высокие экс-терьерные показатели и кровность теряют всякое значение, если у производителя выявляется аспермия или неполноценная сперма. При получении спермы для оценки производителя пользуются искусственной вагиной. Если сперма недоброкачественная, ее исследуют повторно. Нельзя забывать, что после длительных перерывов в половой нагрузке (у жеребцов весной) производитель при первом коитусе почти всегда выделяет сперму низкого качества. Доброкачественная сперма содержит достаточное количество живых, устойчивых во внешней среде и способных принять участие в оплодотворении спермиев, она свободна от посторонних примесей (кровь, гной, микробы). Сперму исследуют макроскопически и микроскопически. Исследование спермы начинают с определения объема эякулята градуированным цилиндром или стаканом (табл. 4). Цвет нормальной спермы белый или желтый с желтым оттенком. Сероватый или голубоватый оттенок — признак олигоспермии (недостаточное число спермиев). Очень желтый цвет обычно указывает на примесь мочи. Розоватый или красноватый цвет—признак примеси крови как следствие свежей травмы. Буро-красный цвет указывает на глубокую травму половых путей давнего происхождения. Зеленоватый оттенок сперма приобретает от примеси гноя. Хлопья в сперме наблюдаются при воспалении пузырьковидных желез. Запаха нормальная сперма не имеет или она обладает легким за-; ахом жиропота. При хронических, гнойных процессах в семенниках или в придаточных половых железах сперма может иметь гнилостный шах и зеленоватый оттенок. Консистенция спермы быка сливкообразная, барана — сметанооб-ная. жеребца и хряка — наподобие молока. Макроскопическое исследование не дает основа.ний для заключе-пригодности или непригодности спермы. Но результаты его сяу- жат предпосылкой для тщательного микроскопического исследования спермы, которое позволяет установить качество спермы и спермиев, а также причины изменения ее внешнего вида. Микроскоскопическое исследование спермы. Техника исследования спермы енгсана в учебном пособии Г. В. Зверевой и др. «Практикум по акушерству, гинекологии и искусственному осеменению сельскохозяйственных животных». Ниже рассматриваются лишь общие теоретические вопросы. При микроскопическом исследовании спермы выявляются следую-'^.\ z --. элементы и примеси: 1) спермин нормальные и патологические; 2) клетки плоского, переходного эпителия, клетки семенных канальцев (зернистые); 3) форменные элементы крови — эритроциты и лейкоциты; 4] ггалнновые шары, круглые или овальные, иногда слоистые и напоминающие зерна крахмала, амилоидные тельца, сильно блестящие — леци-тнновые зернышки, кристаллы спермина и др. Если примесей в сперме немного, это считается нормой. Если примесей много, необходимо выявить их источник и причину. Основное внимание при микроскопическом исследовании концентрируется на количестве и подвижности спермиев. В практике обычно пользуются глазомерной оценкой густоты спермы и подвижности спермиев. По насыщенности спермиями сперму барана и быка оценивают как густую, обозначаемую буквой Г, если все поле зрения заполнено спермиями и в пространстве между ними не укладывается длина одного спермия. В 1 мл густой спермы быка содержится 1 млрд., у барана — более 2 млрд., у хряка и жеребца 0, 2 млрд. и более спермиев. Средней густоты сперма (С), когда между спермиями хорошо выражены промежутки, в 1 мл ее содержится у быка 0, 5—1 млрд., у барана — 1—2 млрд., у хряка и жеребца 0, 1—0, 2 млрд. спермиев. Редкая сперма (Р), когда пространство между спермиями превышает длину одного спермия; в 1 мл ее содержится* у быка менее 0, 5 млрд., у барана менее 1 млрд. (рис. 21). Руководствуясь этими данными и зная объем эякулята, можно определить количество спермиев в эякуляте в любой дозе спермы. Отсутствие в сперме спермиев обозначают буквой А (аспермия). Подвижность спермиев определяют глазомерно и оценивают по десятибалльной системе. Каждый балл равен 10% спермиев, обладающих поступательным движением. Если спермин имеют манежное движение ' (по кругу) или только колеблются, качество спермы оценивают буквой К (колебательное движение). Сперму с неподвижными спермиями обозначают буквой Н (некроспермия). При оценке спермы на густоту и подвижность спермиев применяется комплексное обозначение, позволяющее удобно отражать ее качество. Например, Г—10 баллов означает, что исследуемая сперма густая и 100% спермиев обладают головным, прямолинейным движением; Г— 9 баллов означает 90%, 8—80%, 7—70% и т. д. подвижных Свежеполученная сперма б ы к а с оценкой Г и С, с подвижностью от 10 до 8 баллов считается пригодной для использования. Сперма, имеющая оценки ГН (густая, некроспермия), СК (средняя с колебательным движением), А (отсутствие спермиев в эякуляте), непригодна для использования. Независимо от оценки по густоте непригодна для использования и сперма, имеющая по подвижности меньше 8 баллов. Свежеполученная сперма барана допускается к использованию только густая с подвижностью 10—8 баллов. Сперму жеребца и хр яка также оценивают по десятибалльной системе. Сперма этих животных считается пригодной для осеменения, если подвижность спермиев у хряка не ниже 7, а у жеребца —5 баллов. Учет живых спермиев по окраске мазка. Глазомерная оценка активности спермиев очень субъективна, поэтому В. А. Морозов предложил пользоваться окрашиванием спермы водным раствором эозиннигрозина. Живые и активные спермин не окрашиваются, а мертвые и с колебательными движениями воспринимают краску. Для определения концентрации спермиев жеребцов Г. В. Паршутин и Е. В. Румянцева сконструировали специальные стандарты. Они представляют собой запаянные пробирки, содержащие жидкость, имеющую цвет, соответствующий той или иной известной концентрации спермы. Для определения концентрации исследуемую сперму наливают в пробирку с диаметром стандартных пробирок, устанавливают рядом с ней пробирки стандарта и подбирают наиболее подходящий по виду стандарт, на котором отмечено количество спермиев в 1 мл спермы. Определение числа спермиев. Для определения количества спермиев в эякуляте их подсчитывают в счетной камере Горяева, Тома или Тюрка. Для удобства подсчета сперму разбавляют дистиллированной водой или 4—5%-ным раствором хлорида натрия, который одновременно убивает спермиев. Сперму разбавляют в смесителях (меланжерах), применяющихся для подсчета красных и белых кровяных клеток. Всего подсчитывают спермин в 80 малых квадратиках (16X5) счетной камеры. Считают два раза. Если итоги первого и второго подсчета расходятся более чем на 10%, счетную камеру заряжают третий раз из того же смесителя и устанавливают среднее количество подсчитанных спермиев. Чтобы узнать количество спермиев в одном маленьком квадратике (кубике) камеры, полученную сумму делят на 80; объем одного маленького квадратика равен 1/4 000 000 мл, площадь маленького квадратика 1/400 мм2, глубина камеры 0, 1 мм. Чтобы узнать количество спермиев в 1 см3, среднее число спермиев, обнаруженных в одном маленьком квадратике, умножают на 4 000 000, а затем на степень разведения спермы. Зная количество спермиев в 1 мл спермы и объем эякулята, легко подсчитать общее количество спермиев в эякуляте. В настоящее время станции искусственного осеменения пользуются электрофотоколориметрическим методом, основанным не на прямом подсчете спермиев, а на учете степени оптической плотности спермы, т.е. мутности. Этот метод позволяет быстро (2—3 мин) определить концентрацию спермиев в сперме, но так как фотоэлектроколориметр создан для анализа истинных растворов, а сперма является взвесью и в ней содержится большее или меньшее количество эпителиальных и других клеток, то результат нередко может быть неточным. Для получения более точных результатов М. П. Рязанский разработал прямой метод подсчета числа спермиев в сперме (за 37—40 с) на скоростном автоматическом счетчике клеток — целлоскопе. С этой целью можно использовать и венгерский прибор «Пикоскель». Патологические формы спермиев. Микроскопическое исследование эякулята показывает, что среди нормальных спермиев всегда находится более или менее значительное количество патологических форм. Чаще аномалии выявляются в хвостовой части спермиев, основанииспермиев. головки и шейки. С возрастом к моменту физиологической зрелости производителя количество аномальных спермиев уменьшается. Могут встречаться самые различные патологические формы спермиев: гигантского размера или карликовые, спермин с двумя-тремя головками, но общим хвостиком, с двумя хвостиками, с укороченным хвостиком, его деформацией или отсутствием, с протоплазматической капелькой, слишком большой или маленькой головкой, и другие формы. Иногда встречаются спермин, лишенные головки, но способные двигаться (рис. 22). Л. А. Черномаз отмечает как признак патологических спермиев слабо выраженный перфораторий или его отсутствие. Нарушение структуры перфоратория и оболочки спермия является признаком начальных изменений спермиев при их хранении. Большое количество патологических спермиев свидетельствует о нарушении спермиогенеза, о вредном влиянии патологически измененных секретов придаточных половых желез и мочевых путей или, наконец, указывает на нарушение правил получения спермы и ее хранения во внешней среде от выделения до исследования. В качестве конкретных причин образования уродливых форм спермиев отмечают: 1) слабо развитые семенники; 2) поражения семенника и придатка (гигантские и карликовые спермин); 3) длительные промежутки между коитусами, обусловливающие старение и распад спермиев в придатке (отдельные головки, изолированные хвостики); 4) половое истощение производителя вследствие большой половой нагрузки или недостаточного кормления (спермин с протоплазматиче-скими капельками в области шейки, тела и хвоста — незрелые спер-мии). Чем ближе к головке расположена капелька, тем моложе спермий. Большое значение в образовании патологических форм спермиев придается нарушению терморегулируюшей функции мошонки. Закручивание хвостов спермиев в сторону происходит при смешивании спермы с гипотоническим раствором (неправильная подготовка разбавителей, попадание воды). Если в сперме жеребца содержится до 150—300 патологических спермиев на 1000, она считается нормальной. Быки, дающие сперму с содержанием более 18%, а бараны более 14% уродливых спермиев, должны рассматриваться как бесплодные. Значительное количество патологических спермиев следует, безусловно, расценивать как признак наступающей импотенции. Более подробными данными о закономерностях связи различных типов патологических спермиев с характером патологического процесса и его локализацией в половом аппарате производителя мы пока еще не располагаем. Резистентность спермиев — их устойчивость к 1%-ному раствору хлористого натрия. Показателем резистентности спермиев служит то количество миллилитров 1%-ного раствора хлористого натрия, которое после смешивания с 0, 02 мл спермы прекращает поступательное движение спермиев (колебательное движение может оставаться). Производственный опыт показал, что резистентность не является объективным показателем ценности, т. е. активности спермы. Оценка спермы по редукции метиленовой синьки (метод Н. П. Шергина). Метод основан на учете интенсивности потребления спермиями кислорода, растворенного в сперме. Об интенсивности дыхания спермиев можно судить по степени обесцвечивания раствора метиленовой синьки, добавленного к сперме. Чем интенсивнее дыхание спермиев, тем быстрее обесцвечивается этот раствор. Если у быка время обесцвечивания спермы превышает 30 мин, а у барана — 12 мин, она считается непригодной для осеменени Выживаемость спермиев — продолжительность их жизни вне организма. Определение выживаемости спермиев может служить косвенным признаком ах оплодотворяющей способности. При определении вы-живаемостз спермиев в разбавленной или неразбавленной сперме не-обходкм: : г:: го придерживаться инструкции. В результате исследования могут быть установлены следующие недостатки: I асперматизм — (Азм) — отсутствие спермы; мнгосперматизм (Озм)—малый объем эякулята; ) зспермия (А) — отсутствие в сперме спермиев; 4) олигоспермия (О)—недостаточное число спермиев в эякуляте; 5) некроспермия (Н) — мертвые спермин; 6) тератоспермия (Т) — патологические спермин и др. Производителя можно использовать для естественного или искусственного осеменения, если его сперма отвечает требованиям действующей инструкции по осеменению животных. Биологическая проба спермы. Решающее значение для оценки спермы имеет определение ее оплодотворяющей способности. Установлено, что оплодотворяющая способность может быть определена только в отношении определенной группы самок, находящихся при конкретных условиях существования и времени осеменения. Оплодотворение зависит от степени родства самки и производителя, от состояния их здоровья, упитанности, качества кормления и др. Поэтому для определения оплодотворяющей способности спермы лучше всего использовать здоровых ремонтных телок. Сперма считается нормальной, если опло-дотворяемость от первого осеменения составляет не менее 70%. Быки с пониженной оплодотворяющей способностью спермы дают маложизненное потомство, и их нельзя использовать ни при искусственном, ни при естественном осеменении. Правильно поставленная биологическая проба спермы на здоровых животных — самый надежный критерий ее оценки. Все другие методы определения оплодотворяющей способности спермы являются только косвенными, т. е. они позволяют лишь условно судить об оплодотворяющей способности спермы. Наблюдения показали, что даже всестороннее лабораторное исследование спермы иногда не отражает ее качеств. От некоторых жеребцов с прекрасными лабораторными показателями спермы оплодо-творяемость кобыл оказывалась низкой, если интервалы " между садками были больше 48 ч. Осеменение кобыл через 24—36 ч этими же производителями давало резкое повышение плодовитости. Этот факт X. И. Животков объясняет неодинаковой выживаемостью спермиев отдельных производителей в половом аппарате матки и предлагает применять у ценных производителей «биологическую пробу», заключающуюся в осеменении кобыл через различные промежутки времени. На основании учета итогов этих осеменений устанавливают индивидуальную половую нагрузку.. Отравление поваренной солью Хлорид натрия является необходимой частью корма. Его применяют для улучшения пищеварения и возбуждения аппетита. Он поддерживает и регулирует осмотические процессы и содержание жидкости в организме, расслабляет спазм гладкой мускулатуры, обладает кровоостанавливающим действием, повышает кровяное давление. Эта соль особенно необходима травоядным животным, так как растительный корм богат солями калия, которые при выведении из организма повышают выделение и без того дефицитных солей натрия. В ветеринарной практике хлорид натрия применяют при воспалениях желудочно-кишечного тракта, метеоризме, завалах преджелудков и желудка, для профилактики ацидоза, родильного пареза, задержания последа, при лечении ран и др. Вместе с тем при избыточном поступлении животным поваренной соли у них возникают различного рода расстройства в функционировании организма. К избытку хлорида натрия чувствительны все животные, но особенно свиньи, плотоядные, птицы и собаки, а из пушных зверей — норки. Этиология. Основной причиной отравления является избыточное поступление животным соли с кормами, особенно если она рассыпная. Источниками поступлений могут быть также соленые корма, пищевые отходы. Предрасполагающим к отравлению фактором является общая минеральная недостаточность в организме. Установлено, что летальной дозой хлорида натрия для крупного рогатого скота является 3-6 г/кг массы, лошадей — 2-3 г/кг, свиней и плотоядных — 1, 5-2 г/кг. На фоне минерального голодания гибель животных может наступить и при меньших ее количествах. Патогенез. Основное отрицательное действие повышенных количеств поваренной соли в организме животных состоит в резком нарушении изотонического состояния крови, заключающегося в изменении соотношения одно- и двухвалентных катионов, в частности, натрия и калия с одной стороны, магния и кальция — с другой. Известно, что первые два одновалентных элемента обусловливают возбуждение рефлекторной деятельности нервной системы, а магний и кальций — угнетение. При обычных состояниях соотношение тех и других элементов таково, что обусловливает нормальное функционирование нервной системы. При потреблении животными соли в количествах, вызывающих отравление, уровень натрия в крови возрастает в 1, 5-2 раза, а в эритроцитах — в 3-5 раз и составляет 150-280 мг%. В повышенных количествах натрий и хлор накапливаются во всех органах и тканях. В этом случае возникают мышечная дрожь, судорожные явления, а затем параличи конечностей. Считается, что перенос кислорода гемоглобином осуществляется в комплексе с калием, который вытесняется натрием при увеличении в крови последнего. В результате перенос кислорода нарушается и в организме возникает кислородная недостаточность (гипоксия). Симптомы. Болезнь проявляется быстро (уже через 3-4 часа) и продолжается с усилением клинических признаков. Особенно остро она протекает у свиней и сопровождается жаждой, повышением общей температуры, учащением дыхания, временами мышечной дрожью, возбуждением, судорогами, сменяющимися угнетением, слюнотечением, рвотой, параличом глотки. Часто бывает понос с примесью крови. Перед гибелью возникает коматозное состояние. У зверей и птиц клинические проявления отравления аналогичные, у других видов животных они менее выражены. Патоморфологические изменения. Вскрытием обнаруживают несвернув-'шуюся, в основном без изменения цвета кровь, увеличенные брыжеечные лимфатические узлы, часто с кровоизлияниями, различной степени гастроэн- терит. Паренхиматозные органы переполнены кровью, мочевой пузырь наполнен, мозг отечен, сосуды инъецированы. Диагноз и дифференциальный диагноз. Наиболее ценные сведения дают анамнез и анализ клинических симптомов. Подтверждением может быть исследование кала на содержание в нем хлоридов. Посмертно регистрируются различного характера воспаления желудка и кишечника. Для окончательной постановки диагноза исключают другие отравления, сопровождающиеся сходными признаками. Прогноз. При быстром развитии клинических симптомов, свидетельствующих об остром отравлении — неблагоприятный. В других случаях болезнь может затянуться до 1-2 суток с неблагоприятным или сомнительным исходом. Лечение. Свободный доступ к воде. Назначают молоко и слизистые отвары, препятствующие всасыванию соли, снижению ее концентрации и способствующие выведению. Внутривенно вводят 10% -й раствор хлорида кальция, а подкожно кальция глюконат в соответствующих дозах разным видам животных. Показано внутривенное введение растворов глюкозы и кофеина. Профилактика. Поваренная соль животным должна скармливаться согласно существующим нормам и с учетом видовой их чувствительности к ней, возраста, продуктивности и наличия беременности.
Билет 21 Катаральное воспаление кишечника - (Enteritis catarrhalis acnla) поспало ние кишечника, сопровождающееся нару|пением его секреторной, мо торной, всасывательной и выделительной функций. Этиология. Первичные острые энтериты в большинстве случаев возникают вследствие кормления испорченными (заплесневелыми, про кисшими или загнившими, промерзшими, загрязненными землей, песком, илом, инородными телами), сухими грубостеблистыми кормами, овсяной и просяной шелухой, а также при нерегулярном кормлении. Функционлль ные и органические нарушения желудка, сопровождаемые повышенной или пониженной кислотностью желудочного сока, также могут вызывать энтериты. Длительное функциональное расстройство кишечника часто переходит в органическое заболевание. Причиной энтерита бывают и кишечпыо камни, чаще у овец фитобезоары, химостаз, копростаз и тромбоэмболия кишечных сосудов. Вторичный острый энтерит возникает при переходе воспалительного процесса со смежных органов, например при гастритах, перитопи тах. Он появляется при засорении книжки, реже при полной непроходимо сти сычуга (И. А. Курманов). Сопутствующие энтериты наблюдаются при инфекционных и инвазионных болезнях. Патогенез. Сильные раздражения воспаленной слизистой оболочки кишок рефлекторно, через соответствующие нервные центры, вызышш сдвиги вегетативной нервной системы, нарушают функциональные отирав ления кишечника и сопряженных органов. Расстройство секреторной, экскреторной, всасывательной и друпг функций зависит от распространенности и места локализации воспалитель ного процесса в кишечнике. Диффузные воспалительные процессы вызымм ют более сильные функциональные нарушения, ограниченные — мош.-шие. Ослабление перистальтики кишечника, уменьшение выделения кишечного сока и понижение его активности, усиление образования сличи) и появление экссудата изменяют физико-химические свойства среды химуса. Создаются благоприятные условия к наиболее интенсивному развитию микрофлоры, усиливающей процессы брожения и гниения. При преобла/иь нии развития процессов брожения углеводы под действием бактерий< расщепляются на масляную, молочную, уксусную, пропионовую кислоты, и газы — метан, углекислый, меркаптан. В процессе гниения под действием' гнилостных микроорганизмов белковые вещества, расщепляясь, образуют! индол, скатол, сероводород, токсальбумины, путресцин, кадаверин и другие ядовитые вещества. Продукты гниения и брожения, раздражая сличи стую оболочку, усиливают перистальтику кишечника, иногда на отдельных участках до спазматических сокращений, сопровождаемых болевыми ощу щениями. Длительные поносы могут вызывать обезвоживание оргапич ма. Ядовитые продукты распада белка, поступая в большом количеств в печень, нарушают ее обезвреживающую, пигментную и другие функции, в результате чего возникают кишечная аутоинтоксикация, желтуха, пару шение обмена веществ, расстройство функции нервной системы, деятельно сти сердца и других органов. При дуоденитах возможна застойная желту ха. В связи с нарушением эпителия слизистой оболочки кишечника со.чд/ ется возможность проникновения в кровеносную систему микробов, 'imj прннодпт к возникновению воспалительных процессов и других органах I шдокардит, очаговая пневмония, гломерулонефрит и др.). Патологоанатомические изменения. Слизистая оболочка кишок диффузно или на отдельных участках воспалена, набухшая, ярко-красного и пета, разрыхлена, покрыта тягучей прозрачной слизью, местами с заметными мелкими геморрагиями. Подслизистый слой серозно инфильтри-рован с вовлечением в воспалительный процесс фолликулярного аппара-|.| В тяжелых случаях на слизистой оболочке заметны эрозии и язвы. Во-1можны изменения печени, почек и других паренхиматозных органов. Симптомы. Клинические признаки энтерита зависят от вида' животно-III, характера, распространенности и места локализации воспалительного процесса. В первые дни заболевания легкие формы энтерита протекают малозаметно. Аппетит обычно сохраняется, усиливается жажда, иногда наблюдаются легкие признаки беспокойства, животное быстро утомляется. Воспаление тонких кишок более выражено; при дуоденитах быстро нарастает желтуха, появляется в крови «прямой» билирубин, усиливается перистальтика тонких кишок, резко ухудшается переваримость корма, м кале содержится большое количество непереваренных зернозлаков; и начале заболевания склонность к запорам. При воспалении толстых кишок характерны поносы, усиленная, урча-IN.ш перистальтика, сильно ослизненный кал, иногда с прослойками крови. При стойких поносах живот подтянут, быстро теряется упитанность, фнпктер ануса расслаблен. Воспаления малой ободочной и прямой кишок проявляются частой дефекацией, тенезмами с выделением слизистых i iустков. В зависимости от характера патологического процесса в кишечнике происходит усиление бродильных или гнилостных процессов, что создает клинические особенности «кислых» или «щелочных» катаров (И. И. Егоров). Кислобродильный катар кишечника развивается при гиперацидном состоянии желудка, а щелочно-гнилостный — при гипацидном. Лошади, больные кислым катаром кишечника, быстро утомляются и работе, у них повышаются потливость и слюноотделение. Перистальтика кишок усилена, сопровождается громкими урчащими шумами. Дефекация учащена. Кал рыхлый или жидкий, с резко кислым запахом, ослизнен-in.iii. Показатель органических кислот выше 12—14 единиц титра. Рефлек-i i.i ушно-сердечный и Шарабрина часто указывают на повышенную но (Пудимость вагуса. Нередко отмечается функциональная аритмия. Появляется склонность к энтералгии, метеоризму кишок. Моча нейтральной пли даже кислой реакции. В крови—лимфоцитоз. Щелочной катар кишечника проявляется некоторым общим угнетени-|'м, понижением тонуса мышц, повышением температуры тела, покраснени-гм конъюнктивы, сухостью слизистой оболочки рта. Повышается возбудимость симпатического отдела вегетативной нервной системы; ушно-сердеч-пый рефлекс часто дает ускорение ритма сердца. Кровяное давление может быть выше нормы, а при тяжелых формах оно снижается и возникает тахикардия. Перистальтика кишок ослаблена, дефекация редкая. Кал сухова-гый, плотный, зловонный, темно-бурого цвета. Содержание в нем аммиака превышает 2—3 единицы титра. При затянувшихся тяжелых случаях запор сменяется поносом. Отмечается нейтрофилия. В моче повышено содержание индикана, нередко уробилина. Симптомы острых энтеритов у жвачных изучены слабо. Однако гпмитомокомплекс кислых и щелочных энтеритов, описанный у лошадей, весьма близок для жвачных. У коров в начале заболевания число жвачек сокращается, а чагем и полностью исче tac i, речко снижается удой. Кор стонут, мычат, обмахиваются хвостом, нередко бьют потами по животу, Носовое зеркальце сухое. Сокращения рубца ослабеваю1! ' и урежаются. Свиньи больше лежат, зарываются в подстилку, теряют аппетит. Перистальтика кишок громкая, урчащая, с металлическим оттенком. Запор сменяется поносом. Кал уплотненный или жидкий, зловонный, с пузырьками газа, слизью, иногда с кровью. При колитах кал водянистый; слизистые оболочки сухие. При интоксикации и лихорадящем состоянии появляется мышечная дрожь. У мелких животных можно выявить болезненность кишечных петель пальпацией через брюшную стенку, а у крупных животных — ректальным исследованием. Течение. Легко протекающие острые энтериты продолжаются 7—15 дней; после устранения причин, вызвавших их, и при лечении они исчезают; тяжело протекающие затягиваются на более продолжительное время, могут приобретать хроническое течение, осложняться гастритом, гепатитом, иногда заканчиваться летальным исходом. Диагноз. Ухудшение аппетита, усиленная или ослабленная перистальтика кишок, нарушение пищеварения; резко пахучий кал с примесью слизи, крови, непереваренных зерен; явления запора или поноса; кислая моча с большим количеством фосфатов, индикана, уробилина и другие клинические признаки дают основание для постановки диагноза. Лечение. Устраняют причины, вызвавшие первичный энтерит. Животным создают лучшие условия содержания и ухода. Больных животных выделяют из общего стада. Поддерживают чистоту в кормушках. Регулярно проводят чистку, обмывание задних конечностей и промежности животных. Обеспечивают их чистой питьевой водой. В оказании лечебной помощи ведущее значение имеет диетическое кормление. Желательно очистить кишечник от. вредно действующего содержимого дачей внутрь слабительных. При кислых энтеритах для этого используют натрия или магния сульфат: крупному рогатому скоту — по 400—800 г, овцам и козам — 40—100 г, лошадям 200—500 г, свиньям — 25—50 г и собакам -10—20 г в большом количестве воды. При щелочных энтеритах в качестве слабительных и дезинфицирующих дают каломель (свиньям — по 0, 1 — 1, 5 г, лошадям — 2, 5 г), а также растительные масла. При энтеритах с преобладанием бродильных процессов назначают корма с большим содержанием белка. Крупному и мелкому рогатому скоту дают хорошее разнотравное сено или смесь степного и бобового с небольшим количеством полыни; на 4—6-й день заболевания — дробленые ячмень, бобы, овес, пшеничные отруби, на 6—8-е сутки — в небольшом количестве жмых подсолнечниковый, льняной, хлопчатниковый. Свиней кормят ячменными кашами, супами из дробленого гороха, бобов с добавлением травяной муки, ацидофильным молоком, добавляют АБК, ПАБК- При энтеритах с преобладанием гнилостных процессов используют корма с большим содержанием углеводов; травоядным животным — хороший кукурузный силос, луговое клеверное сено, пшеничные отруби, дробленый ячмень; свиньям — ячменную кашу, силосную пасту и др. Благоприятно действуют на организм запаренные и осоложенные овес, ячмень в дробленом виде и другие корма. После дачи слабительных назначают в течение 2—4 дней бензонафтол и другие противомикробные вещества со слизистыми отварами; салол крупным жвачным животным по 15—20 г, овцам — 2—10 г, свиньям -2—5 г, собакам — 0, 1 — 1 г. Целесообразно применять внутрь, особенно молодняку, фталазол, этазол, сульфадиметоксин, биомицин, синтомицин и др. Из вяжущих средств используют танальбин крупным животным 10 20 т, овцам и козам 3 5 г, свиньям 2- 3 г, собакам — 0, 3 2 г; отвар, приготовленный из 40— 50 г дубовой коры, для крупных животных. Хорошее действие оказывают теплая повязка на живот, грелки, облучение лампой соллюкс, диатермия кишечника. При воспалении прямой и малой ободочной кишок показаны клизмы из теплого отвара ромашки (5 столо-вых ложек на 1 л воды) или из калия перманганата (1: 1000) с добавлением на; '1 л раствора 1 мл 10 %-ной настойки йода. Хронический катаральный энтерит (Enteritis catarrhalis chronica) характеризуется длительным расстройством секреторной, моторной, всасывательной и других функций кишечника, вызванным его воспалением. Этиология. Первичный хронический катаральный энтерит развивается из длительного функционального расстройства кишечника или острого энтерита, когда причины, вызывающие их, действуют слабо и продолжительное время. Вторичные катаральные энтериты появляются при хронических болезнях сердечно-сосудистой системы, нарушениях обмена веществ, хронических болезнях преджелудков, желудка (чаще с кислотной недостаточностью), хроническом гепатите, нефрите, панкреатите. Гельминты, постоянно раздражая слизистую оболочку, могут вызвать вяло протекающие катаральные энтериты. Воспаление кишечника занимает ведущее место при паратуберкулезе, кокцидиозе, паратифозных и ряде других инфекционных болезней. Патогенез. Длительное нарушение функций кишечника, а также начинающаяся атрофия слизистой оболочки с пролиферацией соединительной ткани приводят к тяжелым нарушениям пищеварения и питания организма. Усиленные бродильные или гнилостные процессы в кишечнике — постоянные источники аутоинтоксикации, вызывают функциональные расстройства нервной и сердечно-сосудистой систем, почек. Они нарушают барьерную, пигментную и другие функции печени, поджелудочной железы. Длительные колиты, сопровождаемые упорными поносами, приводят к обезвоживанию организма. Вследствие ухудшения усвоения белка, углеводов, жиров и других необходимых для организма веществ нарушаются обмен веществ и трофика тканей, усиливается исхудание и резко понижается продуктивность животных. Пато логоанатомические изменения. Слизистая оболочка кишечника покрыта стекловидной или мутноватой вязкой слизью, смешанной с перерожденными, отторгнувшимися клетками эпителия, лейкоцитов и гистиоцитов. Она бледная или окрашена в серо-бурый цвет, местами разрыхленная или уплотненная, сглаженная или неравномерно утолщенная вследствие разрастания соединительной ткани. Отдельные железы кистевидно растянуты. При длительной кишечной токсемии возможны морфологические нарушения печени, характерные для хронической и токсической дистрофии, чаще — цирроза, а также нарушения в почках и в других органах. Симптомы. Животные вялые, малоподвижные, больше лежат. Аппетит изменчивый, извращенный. Продуктивность и упитанность сильно понижаются. Волосы тусклые, взъерошенные. У свиней щетина закручивается витками. Линька на долгое время задерживается. Слизистые оболочки бледные, часто с желтушным оттенком. При длительных поносах глаза ввалившиеся. У собак и свиней появляются отрыжка, рвота. У крупного рогатого скота жвачка нерегулярная; жвачные периоды укорочены; рубец сокращается реже и слабо; живот подтянут, временами появляется метеоризм рубца. Желудочное содержимое с повышенной или чаще пониженной кислотностью. Перистальтика кишечника неравномерная. Воспаление тонких кишок сопровождается усилением их перистальтики и ослаблением ее в толстых кишках. Стойкие запоры сменяются кратковременными послаблениями. Фекалии уплотненные, суховатые, с резким кислым или гнилостным запахом, имеют много непереваренных частиц корма. При хроническом воспалении толстых кишок перистальтика слепой и ободочной кишок усилена; раскатистые звенящие шумы у лошадей улавливаются на расстоянии. Наблюдается частая дефекация с выделением жидкого кала и газов. Кратковременный запор может сменяться продолжительным поносом. Кал жидкий, водянистый, нередко пенистый, с большим количеством слизи, иногда с полосками крови. Запах его резко кислый или гнилостный. Методом титрования кала устанавливают кислую (бродильную) или щелочную (гнилостную) форму хронического энтерита. Область ануса, промежность и хвост испачканы калом. Воспаление прямой кишки проявляется утолщением складок слизистой оболочки, частой, со стонами дефекацией, тенезмами и выделением сгустков слизи. Моча у травоядных животных нейтральной или кислой реакции; при гнилостной форме устанавливают повышение содержания индикана, уробилина, иногда протеинурию. При длительном течении болезни появляется малокровие с понижением содержания гемоглобина, а иногда изменением количества эритроцитов; неитрофильныи лейкоцитоз со сдвигом ядра влево; учащение пульса, усиление сердечного толчка и первого тона сердца. Течение. Хронический энтерит может длиться неделями, месяцами, иногда годами, при этом состояние животного то улучшается, то ухудшается. Раннее устранение причин, вызвавших болезнь, и принятие мер лечения значительно сокращают продолжительность заболевания (особенно у молодых животных). Диагноз ставят на основании данных анамнеза и клинического обследования. При этом обязательно выясняют условия содержания, кормления животных и качество кормов. Продолжительное течение болезни с поносом, сменяемым запором, прогрессивное снижение упитанности и продуктивности свидетельствуют о хроническом энтерите. Лечение. При первичных хронических энтеритах необходимо устранить причины, поддерживающие патологический процесс, улучшить содержание животных, назначить диетическое кормление и медикаментозное лечение. Полезны регулярная чистка, купание животных, прогулка на выгоне, пастбище, уменьшение нагрузки или освобождение их от работы. В рацион животных, больных энтеритами с преобладанием бродильных процессов, назначают корма, богатые белком: лошадям и жвачным — свежескошенную траву, луговое клеверное или люцерновое сено, хороший кукурузный силос с зернобобовыми, дробленые концентраты; свиньям — травяную муку, молотые или дробленые зернобобовые, ячмень в виде каши, пшеничные отруби в виде болтушки, морковь; собакам — мясной бульон с пшеничным хлебом или сухарями. При энтерите с преобладанием гнилостных процессов назначают корма, богатые углеводами; травоядным — также зеленую траву, кукурузный силос, сено, сахарную свеклу, морковь и дробленые концентраты; свиньям — гидропонную зелень, силосную пасту в смеси с размолотыми концентратами, морковь, сахарную свеклу. Рекомендуется кормить животных 4 раза в день, не перегружая кормами органы пищеварения. Концентрированные корма желательно давать запаренными, проращенными или дрожжеванными. Витаминное питание усиливают V-адчей настоя хвои по 150—200 мл 2—3 раза в день и витаминов — ретино- ла, кальциферола и др. Дают соли кальция, фосфора и натрия хлорида. Из лекарственных веществ при длительных поносах используют бензонафтол, фталазол, сульгин, синтомицин, колимицин, мицерин; поросятам и телятам — кормовые антибиотики (биомицин, террамицин) в дозах, установленных на этикетках. При стойких поносах применяют вяжущие (танальбин, отвар дубовой коры) с противомикробными средствами. Целесообразны диатермия кишечника, глубокие клизмы из слизистых отваров с добавлением дезинфицирующих веществ. Для устранения запоров дают слабительные: растительное масло, натрия или магния сульфат. При интоксикации, сердечной слабости используют препараты наперстянки, строфанта, соли кофеина, внутривенные инъекции растворов глюкозы, натрия гидрокарбоната, натрия хлорида. |
Последнее изменение этой страницы: 2019-04-09; Просмотров: 449; Нарушение авторского права страницы