Материал для исследования

№ п/п	Виды	Техника отбора материала для исследования
1	Кровь	ü Лучше брать при подъеме температуры ü В период лечения пробы следует брать многократно (не менее 2 - 3 раз). При остром течении – 2 - 3 пробы, при хроническом – 5 - 6 проб 2 раза в сутки. ü Брать надо в среднем 12 мл крови. Из них 10 мл срочно засевают в 100 мл жидкой питательной среды (соотношение 1:10), 2 мл вносят в пробирку с 0,2 мл 5% цитрата натрия и направляют в лабораторию.
2	Мокрота	ü До взятия материала рот больного прополоскать кипяченой водой. ü При сборе мокроты больной не должен напрягаться для ее отхаркивания. ü Усилить отделение мокроты можно после ингаляции в течение 15 мин теплого 10% раствора хлорида натрия. ü Мокроту до начала исследования можно кратковременно (но не более 1 ч) хранить в холодильнике при + 40С. ü Материал со слизистых оболочек полости рта, носоглотки, гортани, брать (до приема пищи) стерильным ватным тампоном. ü Кусочки пленки отбирают пинцетом. Материал из миндалин извлекают из глубины крипт. ü  Слизь из носоглотки следует брать через нос ( в носовое отверстие вводят стерильную трубочку, через нее пропускают тампон на проволоке). ü Из полости носа материал можно брать хирургической ложкой, ушным пинцетом.
3	Спинно-мозговая жидкость	ü Берут по общим правилам, асептически, во время пункции.
4	Моча	ü Следует брать утреннюю мочу в количестве 3-5 мл в середине мочеиспускания. Хранить при комнатной температуре не более 2 ч или в холодильнике – не более 24 часов.
5	Фекалии	ü Брать слизисто-гнойные комочки из разных мест каловых масс. ü Материал из прямой кишки может быть получен с помощью ректального тампона, а у детей – трубочкой Цимана с отверстиями. ü Фекалии хранить при комнатной температуре можно 1 ч, при 00С – 24 часа.
6	Кожа, ногти, волосы	ü Пробы берут до начала, во время и после лечения. В двух последних случаях мазь, краску смывают за 2-3 дня до сбора материала. ü Кожу и ногти предварительно обрабатывают 70% этиловым спиртом. ü При остром процессе кожные чешуйки берут по периферии очага, при хроническом – с поверхности всего очага. ü Кожные чешуйки снимают скальпелем, можно пинцетом (лучше с кожи между пальцами). ü Кожные чешуйки можно собирать с помощью прозрачной липкой ленты. После обработки кожи – ленту приклеить к предметному стеклу и в таком виде отправить в лабораторию. ü Волосы собирают из очагов поражения, облысения с помощью эпиляционного пинцета. ü При хронической трихофитии их отбирают из толщи кожных чешуек в виде коротких (1 - 3 мм) закрученных волосков («черные точки»), извлекая их иглой или скальпелем. ü Перекрученные обломанные короткие волосы типичны для трихофитии. ü Сравнительно длинные (5 - 10 мм), с беловатым чехлом у основания характерны для микроспории (в УФЛ они дают желто-зеленую флюоресценцию). ü Длинные, как бы посыпанные мукой, - типичны для парши (желто-зеленая или белая флюоресценция). ü При отборе материала полезно использовать ультрафиолетовую лампу. В лучах, которой светятся волосы, пораженные одним из указанных грибов. С помощью этого метода удается обнаружить даже единичный пораженный волос. Метод особенно полезен при массовых обследованиях детей. ü При лечении мазями свечение прекращается. Его можно восстановить через 3 - 4 дня после тщательного мытья головы. ü Пораженный край ногтя срезают или скальпелем или ножницами, и затем делают соскоб из глубины ногтевой пластинки.
7	Биопсированная ткань	ü Берут два кусочка тканей: один кусочек помещают в изотонический 0,85 – 0,9 % раствор хлорида натрия и направляют в микологическую лабораторию; другой – фиксируют формалином и направляют на гистологическое исследование.

 

 

Приложение 2

Общая схема лабораторного исследования при микозах

⇐ Предыдущая1234Следующая ⇒

Поделиться: