Архитектура Аудит Военная наука Иностранные языки Медицина Металлургия Метрология
Образование Политология Производство Психология Стандартизация Технологии


Контроль качества стерилизации.



Контроль позволяет улучшить качество стерилизации в ЛПУ. Он предусматривает определение эффективности и параметров стерилизации.

Надежность воздушной стерилизации зависит от конструкции стерилизатора, его исправности, схемы и объема загрузки, используемой защитной упаковки, применяе­мых методов оперативного и периодического контроля, подготовки персонала, обсу­живающего стерилизатор.

Проблема надежности особенно актуальна при эксплуатации аппаратов устаревших типов, при отсутствии доступных методов контроля стерилизации.

Контроль эффективности стерилизации в воздушном стерилизаторе осуществляется бактериологическим методом и химическими термовременными индикаторами.

Бактериологический метод контроля проводят с помощью биотеста — объекта из определенного материала, обсемененного тест-микроорганизмами. В качестве носителей используют небольшой флакон, содержащий споры B.Licheniformis. Контроль проводят в соответствии с утвержденной методикой. Существуют и готовые сертифицированные тесты со спорами B.Licheniformis с цветными питательными средами, позволяющими провести бактериологический контроль непосредственно в ЦСО при наличии в нем термостата.

Контроль воздушной стерилизации химическими термовременными индикаторами. Для оперативного контроля ранее рекомендовали многочисленные химические вещества, точка плавления которых соответствует температуре стерилизации. Но на сегодняшний день всем ясно, что они не могут считаться надежными индикаторами, поскольку не дают представления о времени воздействия горячего воздуха на изделие. Такой контроль носит ориентировочный характер и не гарантирует достижения стерильности в процессе стерилизации.

Надежность оперативного контроля существенно повышается при использовании индикаторов интегрированного действия, в частности, НП фирмы «Винар» ИС-160 и ИС-180, изменяющая окраску до цвета эталона только при воздействии на них температуры стерилизации в течение всей стерилизационной выдержки. Полоски индикатора закладываются в контрольные точки стерилизатора при каждом цикле стерилизации. Если окраска индикатора после стерилизации в какой-либо точке светлее эталона, все изделия считаются нестерильными.

Пакеты из пергаментной бумаги, используемые для упаковки, при стерилизации в современной стерилизующей аппаратуре имеют подобный индикатор, нанесенный в фабричных условиях.

Надежность паровой стерилизации зависит от нескольких факторов:

• соблюдения условий эксплуатации;

• точности контрольно-измерительных приборов, установленных на стерилизаторе;

• полноты удаления воздуха из стерилизуемых изделий;

• герметичности камеры стерилизатора.

Методы периодического контроля паровых стерилизаторов изложены в системе «чистый инструмент». Они включают:

• проверку точности манометра;

• проверку точности регистрации самописцами температуры и давления;

• контроль герметичности камеры стерилизатора;

• контроль качества автоматического вакуум-теста;

• контроль эффективности сушки текстильных материалов;

• проверку полноты удаления воздуха из стерилизуемых изделий.

Определение эффективности бактериологическим методом в паровом стерилизаторе осуществляется тестами, содержащими споры B.Stearothermophilus в соответствии с методикой, утвержденной МЗ РФ.

Оперативный контроль паровой стерилизации проводят химическими индикаторами интегрированного действия (термо-временными).

Индикаторы плавления (тиомочевина, бензойная кислота и др.), которые все еще используются в некоторыхЛПУ, не являются индикаторами стерильности, поскольку регистрируют только температуру, но не учитывают стерилизационную выдержку (время стерилизации). Индикаторы фирмы «Винар» ИС-120 и ИС-132, также, как и в воздушном стерилизаторе, изменяют окраску до учета эталона только при воздействии на них температуры стерилизации в течение всей стерилизационной выдержки.

При каждом цикле полоски индикатора закладываются в контрольные точки стерилизатора. Если окраска индикатора в какой-нибудь точке светлее эталона, все изделия считаются нестерильными.

 

Контроль за распространением инфекции

Взятие для бактериологического исследования мочи, мокроты, содержимого зева, носа, носоглотки, и взятие кала — для паразитологического исследования.

Бактериологическое и паразитологическое исследования проводятся для диагностики и осуществления контроля над распространением инфекции.

Емкости для проб получают накануне в бактериологической (паразитологической) лаборатории.

Подготовка к взятию пробы биологического материала для бактериологического и паразитологического исследования

• Материал для исследований нужно брать до начала антибактериальной терапии или через 8-10 ч после введения последней дозы антибактериального препарата.

• Чтобы избежать загрязнения пробы микрофлорой окружающей среды, необходимо соблюдать строжайшую асептику.

• Использовать:

а) ватные тампоны для взятия биологического материала из раны, со слизистых оболочек (глаз, зева, носа);

б) проволочную петлю для взятия биологического материала из влагалища, анального отверстия;

в) стерильную посуду для непосредственного сбора мочи, мокроты, кала.

• Количество материала должно быть достаточным для исследования и при необходимости — для его повторения.

• Соблюдать требования транспортировки:

а) транспортировку полученного биологического материала в лабораторию производят в максимально короткие сроки;

б) если материал нельзя немедленно транспортировать в лабораторию, его следует хранить в холодильнике, или в специальных транспортных средах, когда транспортировка длится более 24 ч, а также когда микроорганизмы погибают почти сразу после взятия;

в) биологический материал для культивирования строгих анаэробов транспортировать в специальных флаконах, заполненных газом;

г) материал для бактериологического исследования транспортировать в специальных жестких емкостях (бикс и т.п.)

• К клиническому образцу необходимо приложить сопроводительный документ, содержащий следующие сведения:

характер (вид) материала;

ФИО пациента;

возраст пациента;

название лечебного учреждения или его отделения;

номер медицинской карты стационарного больного;

предполагаемый диагноз;

результаты предыдущих микробиологических исследований;

предшествующая антибактериальная терапия;

дата и время взятия материала;

цель исследования;

ФИО врача, направляющего материал для исследования.

Обучение пациента (пациентки) технике сбора мочи для бактериологического исследования.

Оснащение: стерильная емкость, бумажное полотенце, салфетки.

I. Подготовка к процедуре.

1. Уточнить у пациента понимание цели предстоящего исследования и получить его согласие (информированное согласие на процедуру получает врач). В случае неинформированности пациента — уточнить у врача дальнейшую тактику.

2. Объяснить пациенту цель предстоящей подготовки к исследованию и ее последовательность.

3. А. Подготовка женщины (рис. 1.10)

Рис. 1.10. Подготовка и взятие мочи для микробиологического исследования у женщин.

• Утром накануне процедуры приготовить теплую кипяченную воду и мыло для подмывания.

• Зайти в туалетную комнату и раздеться ниже пояса.

• Вымыть руки.

• Расстелить бумажное полотенце, положить на него бумажные салфетки и поставить закрытый сосуд для сбора мочи.

• Сесть как можно ближе к спинке унитаза и развести ноги. Пальцами раздвинуть половые губы и держать их раздвинутыми до окончания процедуры.

• Подмыться тщательно кипяченой водой с мылом, проводя рукой в направлении спереди назад.

• Осушить (по очереди) правую и левую половые губы и наружное отверстие мочеиспускательного канала, используя три салфетки.

• Выбросить салфетки в унитаз.

3. Б. Подготовка мужчины (рис. 1.11).

Рис. 1.11. Подготовка и взятие мочи для микробиологического

исследования у мужчин.

 

• Приготовить теплую кипяченую воду и мыло для подмывания.

• Расстелить в туалетной комнате бумажное полотенце, положить на него бумажные салфетки и поставить закрытый сосуд для сбора мочи.

• Вымыть руки.

• Взять половой член, как при мочеиспускании, освободить головку, отодвинуть крайнюю плоть и вымыть ее водой с мылом.

• Высушить головку полового члена, используя три салфетки; выбрасывать салфетки в унитаз сразу же после однократного промокания.

II. Выполнение процедуры.

4. Взять емкость для сбора мочи, открыть крышку, не прикасаясь к внутренней поверхности емкости и крышки; положить крышку на бумажное полотенце внутренней поверхностью вверх.

5. Выпустить немного мочи в унитаз и задержать мочеиспускание.

6. Подставить сосуд для мочи, не касаясь им гениталий и ануса (головки полового члена).

7. Собрать в сосуд 3-5 мл мочи и задержать мочеиспускание.

Закрыть емкость с мочой крышкой, не касаясь ее внутренней поверхности, и закончить мочеиспускание в унитаз.

8. Вымыть руки. Одеться.

III. Завершение процедуры.

9. Отнести в контейнере сосуд с мочой и направление в лабораторию (в амбулаторных условиях. В условиях стационара — отдать медсестре).

Примечание: Если невозможно доставить емкость с мочой в лабораторию немедленно, следует поместить ее в специальный (в условиях ЛПУ) холодильник, где хранить при температуре 4° С не более 24 ч.

Взятие кала для бактериологического исследования (рис. 1.12)

а б в г

Рис. 1.12. Взятие кала для бактериологического исследования.

 

Оснащение: стерильная пробирка с консервантом и ректальной петлей, шпатель, перчатки, стеклограф.

I. Подготовка к процедуре

1. Уточнить у пациента понимание цели и хода предстоящей процедуры и его согласие (информированное согласие на процедуру получает врач).

II. Выполнение процедуры

2. Надеть перчатки.

З.А. В амбулаторных условиях:

• Помочь пациенту лечь на правый бок спиной к вам, попросить его прижать колени к животу.

• Извлечь ректальную петлю из пробирки, удерживая ее только за пробку (пробирка остается в штативе).

• Другой рукой раздвинуть ягодицы и бережно ввести петлю в анальное отверстие.

• Взять материал со стенок прямой кишки легкими круговыми движениями.

• Извлечь петлю из анального отверстия и, не касаясь наружной поверхности пробирки, опустить петлю в пробирку.

З.Б. Способ, допустимый в условиях стационара.

• Обеспечить пациента продезинфицированным и промытым после дезинфицирующего раствора судном.

• После дефекации извлечь ректальную петлю из пробирки, удерживая ее только за пробку,

• Петлей взять из судна 3-5 г фекалий и, не касаясь наружной поверхности пробирки, опустить петлю в пробирку

Или

• деревянным шпателем взять 3-5 г фекалий и поместить их в стерильную стеклянную емкость.

III. Завершение процедуры.

4. Снять перчатки, вымыть руки.

5.Заполнить бланк для направления пробы в лабораторию. Написать на пробирке номер, соответствующий номеру, указанному в направлении.

6. Доставить пробу и направление в лабораторию (пробирка с петлей в штативе, штатив — в контейнере).

Обучение пациента подготовке и взятию мокроты для бактериологического исследования (рис. 1.13)


Рис. 1.13. Взятие мокроты для бактериологического исследования.

Оснащение: стерильная емкость для пробы.

I. Подготовка к взятию пробы.

1. Уточнить у пациента понимание цели предстоящего исследования и его согласие на процедуру.

II. Выполнение процедуры.

2. Обучить пациента подготовке и взятию пробы.

• Почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой. Взять пробу на исследование: При позыве на кашель:

а) снять крышку со стерильной емкости (полученной от медсестры), не касаясь ее внутренней поверхности;

б) поднести ко рту открытую емкость (не прикасаясь к ней губами) и откашлять в нее мокроту;

в) закрыть емкость крышкой и передать ее медсестре.

III. Завершение процедуры.

3. Убедиться в эффективности обучения: попросить пациента повторить информацию.

4. Доставить емкость с мокротой в контейнере в лабораторию с сопроводительными документами, соблюдая общие меры предосторожности.

Примечание: при невозможности немедленной доставки мокроты в лабораторию, ее можно хранить в специальном холодильнике не более 1-2 ч при температуре 4°С.

Взятие содержимого зева для бактериологического исследования (рис. 1.14)

Оснащение: стерильная пробирка с влажным ватным тампоном, штатив, шпатель, емкость для использованного материала, стеклограф.

 

 

Рис. 1.14.

 

I. Подготовка к процедуре

1. Уточнить у пациента понимание цели и хода предстоящего исследования и его согласие на процедуру.

2. Вымыть руки. Надеть маску и перчатки.

II. Выполнение процедуры

3. Сесть напротив пациента.

4. Извлечь тампон из пробирки, придерживая его за пробку (пробирка остается в штативе).

5. Взять шпатель в другую руку; попросить пациента слегка запрокинуть голову и открыть рот; надавить шпателем на корень языка.

6. Не касаясь тампоном слизистой оболочки полости рта и языка, провести тампоном по дужкам и небным миндалинам (при подозрении на дифтерию — на границе
измененной и неизмененной ткани миндалин).

Примечание: рекомендуется сначала провести тампоном по правой миндалине, затем — небной дужке, язычку, левой небной дужке, левой миндалине, задней стенке глотки.

При ясно локализованных очагах материал берется двумя тампонами (в две пробирки): из очага и всех участков.

III. Завершение процедуры.

7. Извлечь тампон из полости рта, выбросить шпатель в специальную емкость, ввести тампон в пробирку, не касаясь ее наружной поверхности.

8. Снять перчатки, маску, вымыть руки.

9. Заполнить бланк для направления пробы в лабораторию. Написать на пробирке номер, соответствующий номеру, указанному в направлении. Доставить пробу в лабораторию в контейнере.

Взятие содержимого носа для бактериологического исследования (рис. 1.15)

Рис. 1.15.

 

Оснащение: стерильная пробирка с сухим ватным тампоном, штатив, перчатки, стеклограф.

I. Подготовка к процедуре.

1.Уточнить у пациента понимание цели и хода предстоящего исследования и его согласие на процедуру.

2. Вымыть руки. Надеть маску и перчатки.

II. Выполнение процедуры.

3.Сесть напротив пациента.

4.Извлечь тампон из пробирки, придерживая его за пробку (пробирка остается в штативе).

5. Свободной рукой приподнять кончик носа пациента, другой рукой ввести тампон вглубь левой, затем правой полости носа.

III. Завершение процедуры.

6. Извлечь тампон из носа и ввести его в пробирку, не касаясь ее наружной поверхности.

7. Снять перчатки, маску, вымыть и высушить руки.

8. Заполнить бланк для направления пробы в лабораторию. Написать на пробирке номер, соответствующий номеру, указанному в направлении. Доставить пробу в лабораторию в контейнере.

Взятие содержимого носоглотки для бактериологического исследования (рис. 1.16)

 

Рис. 1.16.

 

Оснащение: стерильная пробирка с сухим тампоном, шпатель, штатив, перчатки, стеклограф.

I. Подготовка к процедуре

1. Уточнить у пациента понимание цели и хода предстоящего исследования и его согласие на процедуру.

2. Вымыть руки. Надеть маску и перчатки.

II. Выполнение процедуры.

3. Сесть напротив пациента.

4. Извлечь тампон из пробирки, придерживая его за пробку (если тампон не изогнут, извлекая, изогните о внутреннюю стенку пробирки). Пробирка остается в штативе.

5. Взять шпатель в свободную руку. Попросить пациента слегка запрокинуть голову и открыть рот. Надавить шпателем на корень языка.

6. Осторожно, не касаясь тампоном слизистой оболочки полости рта и языка, ввести тампон в носоглотку и провести им по слизистой оболочке.

III. Завершение процедуры.

7. Извлечь тампон из носоглотки, выбросить шпатель в специальную емкость, ввести тампон в пробирку, не касаясь ее наружной поверхности.

8. Снять перчатки, маску, вымыть руки.

9. Заполнить бланк для направления пробы в лабораторию. Написать на пробирке номер, соответствующий номеру, указанному в направлении. Доставить пробу в лабораторию в контейнере.

Учтите! За время транспортировки в лабораторию, расположенную даже в том же здании, эта капля успевает остыть, а иногда и высохнуть. Поэтому исследование должно быть проведено в том же помещении, что и эндоскопия.

Сбор кала для обнаружения в нем простейших связан с определенными трудностями.

Следует помнить, что большинство этих одноклеточных организмов встречается в двух формах: вегетативной — активной, подвижной, жизнедеятельной, легко поддающейся вредным воздействиям (в т. ч. охлаждению) и потому быстро погибающей после выделения из кишечника и в виде устойчивых к внешним воздействиям цист. При неблагоприятных условиях для их жизнедеятельности (например, уплотнение ка­ловых масс) они превращаются в цисты. В оформленном кале простейшие, как правило, встречаются лишь в форме цист.

Кал для отыскания в нем вегетативных форм должен исследоваться сразу же после его выделения, еще в теплом состоянии. Во-первых, в остывшем кале вегетативные формы простейших быстро гибнут и мертвыми поддаются действию протеолитических ферментов, в результате чего вначале теряют свою структуру, а затем и совсем растворяются.

Во-вторых, при остывании уменьшается, а затем исчезает подвижность простейших— важный вспомогательный фактор при их дифференцировании в лаборатории.

Сохранять кал в термостате не допускается, так как в условиях искусственного подогревания простейшие разрушаются и в последующем не распознаются.

При взятии пробы кала даже при условии своевременного (быстрого, до остывания) исследования нужно учитывать, что в оформленном кале можно обнаружить только цисты, а для обнаружения вегетативных форм следует брать комки слизи, находящейся на поверхности оформленного кала.

Для получения достоверных результатов исследования при обнаружении простейших следует учесть, что:

• жидкие каловые массы исследуют не более чем через 30 мин после дефекации, а оформленные — не более чем через 2 ч после дефекации;

• в фекалиях не должно быть посторонних примесей — воды, мочи и т. д.;

• для сбора кусочков кала пригодны только деревянные палочки (шпатели), так как со стеклянных кусочки слизи, в которых часто находятся паразиты, соскальзывают;

• деревянные палочки сжигают после одноразового использования;

• емкость для пробы должна быть стерильной;

• взятие, хранение и транспортировку пробы проводят с учетом всех необходимых мер инфекционной безопасности.

Пациент должен быть информирован, что выделение простейших с калом происходит непостоянно, поэтому, возможно, однократного исследования недостаточно и его нужно повторять 4-5 раз с интервалом 2-3 дня.

Иногда для обнаружения простейших, особенно амеб, используют материал, полученный при ректороманоскопии. В этих случаях нужно помнить о необходимости правильного обращения с полученным незначительным количеством материала.

Смазывание ректоскопа вазелиновым маслом или глицерином делают последующее исследование затруднительным.

На территории Российской Федерации выделено большое количество видов червей, паразитирующих в кишечнике человека. Заболевания, вызываемые этими червями, называются гельминтозы. Исследование кала позволяет определить вид гельминтоза.

Чаще всего сестринский персонал обучает пациента методике сбора фекалий в домашних условиях.

Пациент должен знать о том, что:

• для сбора фекалий следует приготовить чистую сухую стеклянную емкость с крышкой и деревянный шпатель;

• фекалии для исследования собирают из утренней порции свежевыпущенного кала;

• в кале не должно быть примесей воды и мочи. Шпателем в банку кладут 30-50 г кала, взятого из разных мест непосредственно после дефекации, и плотно закрывают ее крышкой. Шпатель следует сжечь.

Запомните! В лабораторию нельзя доставлять кал после клизмы, введения свечей, приема внутрь красящих веществ, касторового и вазелинового масла, белладонны, железа, висмута, бария.

Существует несколько методов получения материала для исследования такого гельминтоза как энтеробиоз (его вызывают острицы) (см. Приложение № 2 к Приказу МЗ СССР от 13.04.86 г. № 1089):


Поделиться:



Последнее изменение этой страницы: 2017-03-14; Просмотров: 756; Нарушение авторского права страницы


lektsia.com 2007 - 2024 год. Все материалы представленные на сайте исключительно с целью ознакомления читателями и не преследуют коммерческих целей или нарушение авторских прав! (0.085 с.)
Главная | Случайная страница | Обратная связь