Архитектура Аудит Военная наука Иностранные языки Медицина Металлургия Метрология
Образование Политология Производство Психология Стандартизация Технологии


АЛГОРИТМЫ МАНИПУЛЯЦИЙ ПО ДИСЦИПДИНЕ



АЛГОРИТМЫ МАНИПУЛЯЦИЙ ПО ДИСЦИПДИНЕ

«МЕТОДЫ КЛИНИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ»

Определение физических свойств мочи.

1. Определите количество мочи (диурез):

а/ если моча доставлена в градуированной посуде, отметьте количество

ее по шкале и внесите в бланк исследования,

б/ если моча доставлена в обычной посуде, то перелейте мочу в

градуированный цилиндр, отметьте количество ее по шкале и внесите в

бланк исследования.

2. Определите цвет мочи, просмотрев ее на светлом и темном фоне.

3. Определите прозрачность мочи: поместите за емкостью с мочой любой текст. Если он читается свободно, то моча прозрачная. Если читается слабо – мутноватая, если не читается – мутная.

4. Определите запах мочи:

а/ свежевыпущенная моча запаха практически не имеет,

б/ при длительном стоянии появляется запах аммиака,

в/ у больных диабетом моча имеет «яблочный» или «плодовый» запах.

Определение цвета и прозрачности мочи (смотри алгоритм №1).

Алгоритм работы с тест-полоской (рН мочи №3, белок в моче №3, глюкозу в моче№2, кетоновые тела в моче№4):

1. Используйте свежую, хорошо перемешанную и не центрифугированную мочу без консервантов, отобранную в чистую посуду.

2. Возьмите из тары ровно столько полосок, сколько необходимо для непосредственного использования.

3. Тубу плотно закройте фабричной крышкой с осушителем.

4. Не касайтесь руками зон индикации полосок.

5. Полоску опустите на 2-3с в исследуемую мочу, чтобы все тестовые зоны были смочены.

6. Капли мочи с полоски удалите, проведя полоской по краю сосуда с мочой, и оставьте полоску в горизонтальном положении.

7. Приблизительно через 60сек сопоставьте окраску зон индикации с соответствующей цветной шкалой.

Определение рН мочи тест-полоской (смотри алгоритм работы с тест-полоской).

Определение белка в моче тест-полоской (смотри алгоритм работы с тест-полоской).

Определение глюкозы в моче моче тест-полоской (смотри алгоритм работы с тест-полоской).

Определение кетоновых тел в моче тест-полоской (смотри алгоритм работы с тест-полоской).

7. Определение относительной плотности мочи /удельного веса/(урометром):

1. Возьмите цилиндр на 100мл и урометр.

2. Наклоните цилиндр и по его стенке осторожно налейте исследуемую мочу.

3. Опустите урометр в цилиндр с мочой и по нижнему мениску определите относительную плотность.

4. При определении относительной плотности мочи учитывайте температуру окружающей среды – оптимальная температура 15-20 градусов Цельсия. При более высокой температуре относительная плотность понижается /на каждые 3 градуса Цельсия следует прибавить к показателю относительной плотности 0, 001/, при низкой – повышается /на каждые 3градуса Цельсия следует уменьшить показатель на 0, 001/.

 

8. Определение билирубина в моче /проба Розина/:

1. Налейте в пробирку 2-3мл исследуемой мочи.

2. Осторожно по стенке пробирки наслоите 1% спиртовой раствор йода. При наличии билирубина в моче на границе двух жидкостей появляется зеленое кольцо.

9. Приготовление осадка мочи для исследования по Нечипоренко:

1. Тщательно перемешайте мочу, взятую в середине мочеиспускания.

2. В мерную центрифужную пробирку налейте 10мл мочи.

3. Поставьте пробирки в центрифугу и включите ее на 5-7минут при 3000 об/мин.

4. Достаньте пробирки из центрифуги и пипеткой с баллончиком отберите надосадочную жидкость, оставляя 0, 5мл осадка или 1, 0мл, если осадок обильный.

10. Заполнение камеры Фукса-Розенталя для количественного метода исследования осадка мочи по Нечипоренко:

1. Счетная камера должна быть абсолютно чистой и сухой.

2. Притрите покровное стекло к камере Фукс-Розенталя до радужных колец Ньютона.

3. Тщательно перемешайте жидкость в пробирке, чтобы взвесь форменных элементов была равномерной.

4. Заполните камеру при помощи стеклянной палочки или пастеровской пипетки.

5. После заполнения камеры оставьте ее на 1-2мин на предметном столике микроскопа, чтобы элементы осадка осели на дно и движение их прекратилось (при заполнении камеры жидкость не должна попадать в борозды камеры и в ней не должно быть пузырьков воздуха).

Алгоритм морфологической характеристики эритроцитов.

1. Исследуйте окрашенный мазок крови с иммерсионной системой.

2. При просмотре мазка оцените:

а/ величину эритроцитов и отметьте наличие или отсутствие

анизоцитоза,

б/ форму эритроцита и отметьте наличие или отсутствие пойкилоцитоза,

в/ степень насыщения эритроцитов гемоглобином – нормохромию,

гипохромию или гиперхромию,

г/ полихроматофилию или ретикулоцитоз,

д/ отметьте наличие или отсутствие в мазке эритроцитов с остатками

ядра – тельца Жолли и кольца Кебота.

3. Результаты исследования внесите в бланк крови.

21. Вычислите цветовой показатель:

1. Утроенную концентрацию гемоглобина разделите на первые три цифры количества эритроцитов в миллионах. Норма – 0, 85 – 1, 05.

Алгоритм идентификации форменных элементов в мазке крови.

1. Исследуйте окрашенный мазок крови с иммерсионной системой.

2. Найдите и охарактеризуйте сегментоядерный нейтрофил.

3. Найдите и охарактеризуйте лимфоцит.

Алгоритм дезинфекции камеры Горяева.

1. Залейте камеру Горяева 6% перекисью водорода на 1 час.

2. Через 1 час тщательно промойте камеру дистиллированной водой.

3. Протрите сухой ветошью.

4. Чистую и сухую камеру поместите в пенал для хранения.

24. В готовом окрашенном мазке крови подсчитайте количество тромбоцитов в одном поле зрения:

1. Приготовьте ограниченное поле зрения.

2. Вставьте его в окуляр микроскопа.

3. Настройте микроскоп для работы.

4. Подсчитайте тромбоциты в одном поле зрения.

 

 

Алгоритм подсчета количества ретикулоцитов в одном поле зрения.

1. Приготовьте ограниченное поле зрения.

2. Вставьте его в окуляр микроскопа.

3. Настройте микроскоп для работы.

4. Подсчитайте ретикулоциты в одном поле зрения.

Определение степени чистоты влагалища по готовому вагинальному мазку.

1. Окрашенный мазок поместите под микроскоп и рассмотрите инверсионной системой.

2. Определите степень чистоты по наличию или отсутствию влагалищной палочки Дедерлейна – грубая, толстая Грам(+).

3. Различают 4 степени чистоты:

а/ в мазке чистая культура палочки Дедерлейна, единичные эпителии – картина для здорового состояния половых органов – 1 степень чистоты,

б/ наряду с палочкой Дедерлейна в препарате наблюдаются другие сапрофиты, преимущественно Грам(+) изогнутая палочка, а также единичные лейкоциты – микроскопическая картина соответствует норме – 2 степень чистоты,

в/ палочки Дедерлейна нет или единична, полиморфная флора, много кокковой флоры, много эпителия, лейкоциты – патологическое состояние – 3 степень чистоты,

г/ отделяемое – вид гноя, палочка Дедерлейна отсутствует, много кокков, лейкоциты – патология – 4 степень чистоты.

 

Идентификация яиц гельминтов в готовом препарате кала.

1. Рассмотрите готовый препарат под увеличением 10х40.

2. Идентифицируйте яйца гельминтов с учетом их морфологических особенностей.

 

Определение физического свойства ликвора.

1. С помощью тест-полоски определите относительную плотность ликвора (относительная плотность люмбального ликвора составляет 1, 005-1, 009 субокципитального -1, 003-1, 007, вентрикулярного – 1, 002-1, 004.

2. Для обнаружения прозрачности сравните ликвор с дистиллированной водой – нормальный ликвор бесцветен.

3. Рассмотрев ликвор, отметьте наличие примесей. Присутствие крови в ликворе – кровавый или кровянистый ликвор – эритроцитархия. Желтый цвет ликвора – ксантохромия или билирубинархия – наблюдается при поступлении билирубина в субархноидальное пространство.

 

Фиксация мазка крови.

1 Принцип: фиксация, вызывая коагуляцию белка, прикрепляет препарат к стеклу и предохраняет эритроциты и лейкоциты от разрушения при окраске мазков.

2. Фиксирующие жидкости:

- метиловый спирт – время фиксации 3-5 мин,

- этиловый спирт – время фиксации -25-30 мин,

- смесь Никифорова (равные количества этилового спирта и эфира) – 25-3- мин.

3. Методика: высохшие на воздухе мазки опускают в посуду для фиксации, не допуская соприкосновения мазков друг с другом. Зафиксированные препараты извлекают из фиксирующей смеси и просушивают.

 

Снятие показания СОЭ.

Через 1 час отметьте величину образовавшегося столбика плазмы в мм. Пределы нормы у мужчин – 1-10 мм/ч, у женщин – 2-15 мм/ч.

Алгоритмы выполнения манипуляций по дисциплине:

«Основы биохимии с методами клинико-биохимических исследований»

 

Определение активированного частичного (парциального) тромбопластинового времени (АЧТЛ или АПТВ).

I Коагулометрический вариант

1. В кювету коагулометра внести 0, 1 мл. исследуемой плазмы и прогреть её при 37о С в течение 1 минуты

2. В кювету добавить 0, 1 мл АПТВ-реагента, имеющего комнатную температуру

3. Через 3 минуты добавить 0, 1мл раствора хлорида кальция (прогретого до 37о С), и зарегистрировать время свёртывания

II Мануальный вариант

1. В пробирку внести 0, 1 мл исследуемой плазмы, добавить в ту же пробирку 0, 1 АПТВ-реагента.

2. Пробирку встряхнуть, поместить её в термостат с прозрачными стенками

3. Через 3 минуты к смеси добавить 0, 1мл раствора хлорида кальция (прогретого до 37о С) и включить секундомер.

4. Каждые 10 – 15 секунд пробирку необходимо доставать из термостата, наклонять в почти горизонтальное положение и наблюдать образование сгустка. Как только сгусток образуется, надо без промедления, выключить секундомер (этот пункт следует проделывать достаточно быстро; палец одной руки должен находиться на кнопке секундомера, а другой рукой надо доставать пробирку).

Алгоритм построения калибровочного графика и определения протромбина по Квику у больного по предложенным данным.

1. На ось абсцисс (ось времени свёртывания в секундах) готовой сетки для определения протромбина по Квику откладывают время свёртывания в секундах плазмы, с различной степенью разведения (неразведённой, разведённой в 2, 4, 8 раз) и восстанавливают перпендикуляры.

2. На оси ординат (ось протромбина по Квику в процентах) отмечают процент разведения плазмы находят точки пересечения времени свёртывания плазмы с различной степенью разведения с процентом протромбином по Квику

3. Точки пересечения соединяют с целью получения калибровочной кривой (прямой)

4. На оси абсцисс отмечают время свёртывания плазмы больного и восстанавливают перпендикуляр на калибровочную прямую (кривую)

5. По оси ординат находят процент протромбина по Квику

6. Результат исследования вносят в бланк анализа

7. Проводят оценку результата, применяя терминологию

Ход исследования

Реагенты Опытная проба Контрольная проба
Исследуемая плазма 0, 1 мл -
стандартная нормальная плазма - 0, 1 мл
Прогреть пробирку 1 – 2 мин при температуре 37° С
ТКС (или тех-пластин) 0, 2 мл 0, 2 мл
Одновременно с внесением ТКС (или тех-пластина) включить секундомер и отметить время от момента добавления реагента до образования сгустка фибрина* *

Результаты выражают по одному из следующих вариантов:

1. Отмечают протромбиновое время (ПВ) в секундах больного с указанием значений, полученных при исследовании стандартной нормальной плазмы.

АЛГОРИТМЫ МАНИПУЛЯЦИЙ ПО ДИСЦИПДИНЕ

«МЕТОДЫ КЛИНИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ»


Поделиться:



Последнее изменение этой страницы: 2017-05-11; Просмотров: 123; Нарушение авторского права страницы


lektsia.com 2007 - 2024 год. Все материалы представленные на сайте исключительно с целью ознакомления читателями и не преследуют коммерческих целей или нарушение авторских прав! (0.03 с.)
Главная | Случайная страница | Обратная связь