Архитектура Аудит Военная наука Иностранные языки Медицина Металлургия Метрология Образование Политология Производство Психология Стандартизация Технологии |
АЛГОРИТМЫ МАНИПУЛЯЦИЙ ПО ДИСЦИПДИНЕСтр 1 из 2Следующая ⇒
АЛГОРИТМЫ МАНИПУЛЯЦИЙ ПО ДИСЦИПДИНЕ «МЕТОДЫ КЛИНИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ» Определение физических свойств мочи. 1. Определите количество мочи (диурез): а/ если моча доставлена в градуированной посуде, отметьте количество ее по шкале и внесите в бланк исследования, б/ если моча доставлена в обычной посуде, то перелейте мочу в градуированный цилиндр, отметьте количество ее по шкале и внесите в бланк исследования. 2. Определите цвет мочи, просмотрев ее на светлом и темном фоне. 3. Определите прозрачность мочи: поместите за емкостью с мочой любой текст. Если он читается свободно, то моча прозрачная. Если читается слабо – мутноватая, если не читается – мутная. 4. Определите запах мочи: а/ свежевыпущенная моча запаха практически не имеет, б/ при длительном стоянии появляется запах аммиака, в/ у больных диабетом моча имеет «яблочный» или «плодовый» запах. Определение цвета и прозрачности мочи (смотри алгоритм №1). Алгоритм работы с тест-полоской (рН мочи №3, белок в моче №3, глюкозу в моче№2, кетоновые тела в моче№4): 1. Используйте свежую, хорошо перемешанную и не центрифугированную мочу без консервантов, отобранную в чистую посуду. 2. Возьмите из тары ровно столько полосок, сколько необходимо для непосредственного использования. 3. Тубу плотно закройте фабричной крышкой с осушителем. 4. Не касайтесь руками зон индикации полосок. 5. Полоску опустите на 2-3с в исследуемую мочу, чтобы все тестовые зоны были смочены. 6. Капли мочи с полоски удалите, проведя полоской по краю сосуда с мочой, и оставьте полоску в горизонтальном положении. 7. Приблизительно через 60сек сопоставьте окраску зон индикации с соответствующей цветной шкалой. Определение рН мочи тест-полоской (смотри алгоритм работы с тест-полоской). Определение белка в моче тест-полоской (смотри алгоритм работы с тест-полоской). Определение глюкозы в моче моче тест-полоской (смотри алгоритм работы с тест-полоской). Определение кетоновых тел в моче тест-полоской (смотри алгоритм работы с тест-полоской). 7. Определение относительной плотности мочи /удельного веса/(урометром): 1. Возьмите цилиндр на 100мл и урометр. 2. Наклоните цилиндр и по его стенке осторожно налейте исследуемую мочу. 3. Опустите урометр в цилиндр с мочой и по нижнему мениску определите относительную плотность. 4. При определении относительной плотности мочи учитывайте температуру окружающей среды – оптимальная температура 15-20 градусов Цельсия. При более высокой температуре относительная плотность понижается /на каждые 3 градуса Цельсия следует прибавить к показателю относительной плотности 0, 001/, при низкой – повышается /на каждые 3градуса Цельсия следует уменьшить показатель на 0, 001/.
8. Определение билирубина в моче /проба Розина/: 1. Налейте в пробирку 2-3мл исследуемой мочи. 2. Осторожно по стенке пробирки наслоите 1% спиртовой раствор йода. При наличии билирубина в моче на границе двух жидкостей появляется зеленое кольцо. 9. Приготовление осадка мочи для исследования по Нечипоренко: 1. Тщательно перемешайте мочу, взятую в середине мочеиспускания. 2. В мерную центрифужную пробирку налейте 10мл мочи. 3. Поставьте пробирки в центрифугу и включите ее на 5-7минут при 3000 об/мин. 4. Достаньте пробирки из центрифуги и пипеткой с баллончиком отберите надосадочную жидкость, оставляя 0, 5мл осадка или 1, 0мл, если осадок обильный. 10. Заполнение камеры Фукса-Розенталя для количественного метода исследования осадка мочи по Нечипоренко: 1. Счетная камера должна быть абсолютно чистой и сухой. 2. Притрите покровное стекло к камере Фукс-Розенталя до радужных колец Ньютона. 3. Тщательно перемешайте жидкость в пробирке, чтобы взвесь форменных элементов была равномерной. 4. Заполните камеру при помощи стеклянной палочки или пастеровской пипетки. 5. После заполнения камеры оставьте ее на 1-2мин на предметном столике микроскопа, чтобы элементы осадка осели на дно и движение их прекратилось (при заполнении камеры жидкость не должна попадать в борозды камеры и в ней не должно быть пузырьков воздуха). Алгоритм морфологической характеристики эритроцитов. 1. Исследуйте окрашенный мазок крови с иммерсионной системой. 2. При просмотре мазка оцените: а/ величину эритроцитов и отметьте наличие или отсутствие анизоцитоза, б/ форму эритроцита и отметьте наличие или отсутствие пойкилоцитоза, в/ степень насыщения эритроцитов гемоглобином – нормохромию, гипохромию или гиперхромию, г/ полихроматофилию или ретикулоцитоз, д/ отметьте наличие или отсутствие в мазке эритроцитов с остатками ядра – тельца Жолли и кольца Кебота. 3. Результаты исследования внесите в бланк крови. 21. Вычислите цветовой показатель: 1. Утроенную концентрацию гемоглобина разделите на первые три цифры количества эритроцитов в миллионах. Норма – 0, 85 – 1, 05. Алгоритм идентификации форменных элементов в мазке крови. 1. Исследуйте окрашенный мазок крови с иммерсионной системой. 2. Найдите и охарактеризуйте сегментоядерный нейтрофил. 3. Найдите и охарактеризуйте лимфоцит. Алгоритм дезинфекции камеры Горяева. 1. Залейте камеру Горяева 6% перекисью водорода на 1 час. 2. Через 1 час тщательно промойте камеру дистиллированной водой. 3. Протрите сухой ветошью. 4. Чистую и сухую камеру поместите в пенал для хранения. 24. В готовом окрашенном мазке крови подсчитайте количество тромбоцитов в одном поле зрения: 1. Приготовьте ограниченное поле зрения. 2. Вставьте его в окуляр микроскопа. 3. Настройте микроскоп для работы. 4. Подсчитайте тромбоциты в одном поле зрения.
Алгоритм подсчета количества ретикулоцитов в одном поле зрения. 1. Приготовьте ограниченное поле зрения. 2. Вставьте его в окуляр микроскопа. 3. Настройте микроскоп для работы. 4. Подсчитайте ретикулоциты в одном поле зрения. Определение степени чистоты влагалища по готовому вагинальному мазку. 1. Окрашенный мазок поместите под микроскоп и рассмотрите инверсионной системой. 2. Определите степень чистоты по наличию или отсутствию влагалищной палочки Дедерлейна – грубая, толстая Грам(+). 3. Различают 4 степени чистоты: а/ в мазке чистая культура палочки Дедерлейна, единичные эпителии – картина для здорового состояния половых органов – 1 степень чистоты, б/ наряду с палочкой Дедерлейна в препарате наблюдаются другие сапрофиты, преимущественно Грам(+) изогнутая палочка, а также единичные лейкоциты – микроскопическая картина соответствует норме – 2 степень чистоты, в/ палочки Дедерлейна нет или единична, полиморфная флора, много кокковой флоры, много эпителия, лейкоциты – патологическое состояние – 3 степень чистоты, г/ отделяемое – вид гноя, палочка Дедерлейна отсутствует, много кокков, лейкоциты – патология – 4 степень чистоты.
Идентификация яиц гельминтов в готовом препарате кала. 1. Рассмотрите готовый препарат под увеличением 10х40. 2. Идентифицируйте яйца гельминтов с учетом их морфологических особенностей.
Определение физического свойства ликвора. 1. С помощью тест-полоски определите относительную плотность ликвора (относительная плотность люмбального ликвора составляет 1, 005-1, 009 субокципитального -1, 003-1, 007, вентрикулярного – 1, 002-1, 004. 2. Для обнаружения прозрачности сравните ликвор с дистиллированной водой – нормальный ликвор бесцветен. 3. Рассмотрев ликвор, отметьте наличие примесей. Присутствие крови в ликворе – кровавый или кровянистый ликвор – эритроцитархия. Желтый цвет ликвора – ксантохромия или билирубинархия – наблюдается при поступлении билирубина в субархноидальное пространство.
Фиксация мазка крови. 1 Принцип: фиксация, вызывая коагуляцию белка, прикрепляет препарат к стеклу и предохраняет эритроциты и лейкоциты от разрушения при окраске мазков. 2. Фиксирующие жидкости: - метиловый спирт – время фиксации 3-5 мин, - этиловый спирт – время фиксации -25-30 мин, - смесь Никифорова (равные количества этилового спирта и эфира) – 25-3- мин. 3. Методика: высохшие на воздухе мазки опускают в посуду для фиксации, не допуская соприкосновения мазков друг с другом. Зафиксированные препараты извлекают из фиксирующей смеси и просушивают.
Снятие показания СОЭ. Через 1 час отметьте величину образовавшегося столбика плазмы в мм. Пределы нормы у мужчин – 1-10 мм/ч, у женщин – 2-15 мм/ч. Алгоритмы выполнения манипуляций по дисциплине: «Основы биохимии с методами клинико-биохимических исследований»
Определение активированного частичного (парциального) тромбопластинового времени (АЧТЛ или АПТВ). I Коагулометрический вариант 1. В кювету коагулометра внести 0, 1 мл. исследуемой плазмы и прогреть её при 37о С в течение 1 минуты 2. В кювету добавить 0, 1 мл АПТВ-реагента, имеющего комнатную температуру 3. Через 3 минуты добавить 0, 1мл раствора хлорида кальция (прогретого до 37о С), и зарегистрировать время свёртывания II Мануальный вариант 1. В пробирку внести 0, 1 мл исследуемой плазмы, добавить в ту же пробирку 0, 1 АПТВ-реагента. 2. Пробирку встряхнуть, поместить её в термостат с прозрачными стенками 3. Через 3 минуты к смеси добавить 0, 1мл раствора хлорида кальция (прогретого до 37о С) и включить секундомер. 4. Каждые 10 – 15 секунд пробирку необходимо доставать из термостата, наклонять в почти горизонтальное положение и наблюдать образование сгустка. Как только сгусток образуется, надо без промедления, выключить секундомер (этот пункт следует проделывать достаточно быстро; палец одной руки должен находиться на кнопке секундомера, а другой рукой надо доставать пробирку). Алгоритм построения калибровочного графика и определения протромбина по Квику у больного по предложенным данным. 1. На ось абсцисс (ось времени свёртывания в секундах) готовой сетки для определения протромбина по Квику откладывают время свёртывания в секундах плазмы, с различной степенью разведения (неразведённой, разведённой в 2, 4, 8 раз) и восстанавливают перпендикуляры. 2. На оси ординат (ось протромбина по Квику в процентах) отмечают процент разведения плазмы находят точки пересечения времени свёртывания плазмы с различной степенью разведения с процентом протромбином по Квику 3. Точки пересечения соединяют с целью получения калибровочной кривой (прямой) 4. На оси абсцисс отмечают время свёртывания плазмы больного и восстанавливают перпендикуляр на калибровочную прямую (кривую) 5. По оси ординат находят процент протромбина по Квику 6. Результат исследования вносят в бланк анализа 7. Проводят оценку результата, применяя терминологию Ход исследования
Результаты выражают по одному из следующих вариантов: 1. Отмечают протромбиновое время (ПВ) в секундах больного с указанием значений, полученных при исследовании стандартной нормальной плазмы. АЛГОРИТМЫ МАНИПУЛЯЦИЙ ПО ДИСЦИПДИНЕ «МЕТОДЫ КЛИНИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ» |
Последнее изменение этой страницы: 2017-05-11; Просмотров: 123; Нарушение авторского права страницы