Архитектура Аудит Военная наука Иностранные языки Медицина Металлургия Метрология Образование Политология Производство Психология Стандартизация Технологии |
Видовой состав почвенных микромицетов, ассоциирующийся с корневыми и прикорневыми гнилями плодовых культур, распространенность и вредоносность ⇐ ПредыдущаяСтр 7 из 7
3.3.1. Корневые и прикорневые гнили сеянцев плодовых культур. Потери семечковых и косточковых культур в школках сеянцев иногда достигают 50-80 % от общего числа высеянных семян. Причинами выпадов, в основном, считают либо потерю всхожести семян из-за не правильной их подготовки (например, нарушение режимов стратификации), либо поражение почвенно-патогенными микромицетами. Наши исследования показали, что с выпадами сеянцев было связано более 23 видов почвенных микромицетов, причем в разные годы и в различных условиях выращивания менялись виды основных возбудителей гнилей. В разные годы и в различных условиях «черную ножку» сеянцев могли вызывать такие микромицеты, как Fusarium lateritium, Rhizoctonia solani, Pythium spp., Ph. cactorum и некоторые другие (табл. 7). Виды Fusarium часто ассоциировались с «черной ножкой» сеянцев яблони в условиях теплицы. Выпады от этих патогенов часто были связаны с первоначальной зараженностью ими семян яблони. В полевых условиях гниль корневой шейки была обусловлена заражением сеянцев видами рода Pythium и Ph. cactorum, частота выделений которых составила 62, 5 и 50 % соответственно (табл. 7). Гибель сеянцев плодовых пород также может вызывать гриб R. solani, особенно если они выращиваются в теплице (табл. 7). Так, в апреле 1992 г. мы наблюдали гибель сеянцев сливы в теплице в результате поражения ризоктониозом. В этом же году в июне было отмечено поражение ризоктониозом сеянцев груши в условиях открытого грунта. В то же время, в условиях открытого грунта наличие в почве школки до посадки оомицета P. ultimum обусловило, в дальнейшем, сильное развитие корневой гнили сеянцев яблони. Таблица 7. Частота выделения почвенных микромицетов (%) из сеянцев плодовых культур пораженных корневыми гнилями в условиях открытого (ОГ) и защищенного грунтов (ЗГ) Виды микромицетов |
1991 |
1992 | 1993 |
2007 | ||||||
Яблоня (ЗГ) | Яблоня (ОГ) | Слива (ЗГ) | Яблоня (ОГ) | Яблоня (ЗГ) | Груша (ОГ) | Алыча (ОГ) | ||||
Ph. cactorum | 0 | 50, 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | |||
Pythium sp. | 0 | - | - | - | 0 | 10, 0 | 20, 0 | |||
P. ultimum | 0 | 33, 3 | 0 | 50, 0 | 0 | 0 | 0 | |||
P. intermedium | 0 | 16, 7 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | |||
P. mamillatum | 0 | 0 | 20, 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | |||
P.proliferum | 0 | 16, 7 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | |||
Rhizoctonia solani | 16, 7 | 0 | 80, 0 | 0 | 0 | 0 | 80, 0 | |||
Fusarium spp. | - | 33, 3 | - | 16, 7 | 16, 7 | 0 | 0 | |||
F. lateritium | 83, 3 | 0 | 0 | 0 | 100 | 0 | 0 | |||
F.sambucinum | 0 | 0 | 60, 0 | 0 | 80, 0 | 0 | ||||
F.avenaceum | 0 | 16, 7 | 0 | 16, 7 | 0 | 0 | 0 | |||
F. solani | 0 | 0 | 0 | 16, 7 | 0 | 0 | 40, 0 | |||
F.sporotrochiella | 33, 3 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | |||
C. destructans | 0 | 0 | 40, 0 | 40, 0 | 16, 7 | 90, 0 | 80, 0 | |||
Alternaria spp. | 33, 3 | 0 | 0 | 16, 7 | 0 | 0 | 0 | |||
Phoma sp. | 0 | 0 | 60, 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | |||
Thielaviopsis basicola | 0 | 0 | 20, 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | |||
Verticillium sp. | 0 | 0 | 0 | 33, 3 | 0 | 0 | 0 | |||
Geotrichum candidum | 0 | 0 | 0 | 0 | 83, 3 | 0 | 0 |
Сеянцы плодовых культур могут поражаться почвенными микромицетами после пересадки их в первое поле питомников. Этому способствуют механические повреждения корневой системы, наносимые при выкопке сеянцев. При неблагоприятных условиях выращивания (засуха, переувлажнение) раны на корневой системе сеянцев заселяются почвенными грибами, относящимися к раневым патогенам, которые вызывают гниль корней. Так, в 2007 г., во время жаркого засушливого лета, наблюдались интенсивные выпады сеянцев в первом поле питомника. Эти выпады сопровождались интенсивной корневой гнилью, с которой ассоциировались такие грибы, как Cylindrocarpon destructans, Fusarium sambucinum, F. solani и Rhizoctonia solani.
3.3.2. Корневые гнили подвоев и саженцев плодовых культур в питомнике. В плодовых питомниках ежегодно наблюдаются выпады саженцев, часть из которых нельзя объяснить поражением, например, грибами – возбудителями инфекционного усыхания.
Микологические анализы показали, что симптомы корневой гнили у клоновых подвоев и окулянтов яблони и сливы были связаны с заселением корней и базальной части саженцев почвенно-патогенным грибом Rhizoctonia solani, часто совместно с другими почвенными микромицетами, такими как Fusarium spp., Cylindrocarpon spp., Pythium spp., иногда Phytophthora spp. (табл. 8).
Таблица 8. Частота выделения почвенных микромицетов (%) из укорененных черенков сливы в теплице и после высадки в поле на доращивание
Виды микромицетов |
Пленочные теплицы |
Измайлово (подвои и сорта сливы в поле) | |||
Загорье | Измайлово | ||||
ОД-2-3 | Новинка | Скороплодная | ОД-2-3 | Новинка | |
Rhizoctonia solani | 33, 3 | 100 | 83, 3 | 41, 7 | 75, 0 |
Fusarium spp. | 25, 0 | 66, 7 | 22, 2 | 8, 3 | 33, 3 |
F. sambucinum | 50, 0 | 100 | 11, 1 | 0 | 33, 3 |
F. sublunatum | 0 | 0 | 5.0 | 26, 0 | 16, 6 |
F. aqueductum | 0 | 0 | 0 | 0 | 8, 3 |
F. gibbossum | 0 | 0 | 0 | 0 | 8, 3 |
Pythium spp. | 8, 3 | 0 | 0 | 8.3 | 0 |
P. mamillatum | 41, 7 | 0 | 0 | 0 | 0 |
Cylindrocarpon destructans | 25, 0 | 88, 9 | 0 | 0 | 88, 3 |
Alternaria tenuissima | 25, 0 | 22, 2 | 16, 6 | 25, 0 | 83, 3 |
Gliocladium spp. | 33, 3 | 66, 7 | 5, 0 | 8, 3 | 8, 3 |
Geotrichum candidum | 0 | 0 | 11, 1 | 16, 6 | 8, 3 |
Diplocladiella scalaroides | 0 | 0 | 33, 3 | 8, 3 | 33, 3 |
Subulispora sp. | 41, 7 | 55, 5 | 16, 6 | 8, 3 | 16, 6 |
Phomopsis mali | 0 | 0 | 11, 1 | 33, 3 | 0 |
Pestalotia hartigii | 0 | 0 | 11, 1 | 16, 6 | 0 |
Причиной корневых гнилей в первом поле плодового питомника часто бывает заражение почвенными микромицетами клоновых подвоев ещё на стадии укоренения их в теплице. Из приведенных данных (табл. 8) видно, что уже на стадии укоренения зеленых черенков сливы в условиях теплицы происходит их заражение почвенно-патогенным грибом R. solani, что в дальнейшем сказывается на приживаемости саженцев после высадки в открытый грунт.
Так в 2007 году выпады в 1-ом поле плодового питомника составили 10, 5-58, 9 %. Причем наибольший процент выпадов (до 58, 9 %) приходился на клоновые подвои вишни, которые были получены при укоренении зеленых черенков в теплице.
3.3.3. Гнили зеленых черенков плодовых культур при их укоренении в теплице. Микологические исследования зеленых черенков плодовых и ягодных культур, пораженных микозными гнилями, показали, что наиболее часто встречающимся патогеном был гриб Rhizoctonia solani, который выделялся из некротизированных частей базальных частей с частотой встречаемости 80-100 %. Другой наиболее часто и постоянно встречающейся группой грибов были виды из рода Fusarium, с преобладанием вида F. sambucinum. Встречаемость видов рода Pythium варьировала по годам от 5, 5 до 57, 1 %. Среди видов рода Pythium были идентифицированы три вида: P. mamillatum, P. ultimum и P. irregulare, которые также ассоциировались с корневыми и прикорневыми гнилями саженцев и сеянцев плодовых культур.
В целом, наибольший ущерб при укоренении зеленых черенков в теплицах наносит гриб Rhizoctonia solani, вызывая гниль базальной части зеленых черенков и отмирание зоны корнеобразования.
ГЛАВА 4. Д иагностика почвы и растений на зараженность микромицетами - возбудителями корневых и прикорневых гнилей плодовых и ягодных культур, прогноз их развития
4.1. Метод плавающих биоприманок для диагностики почвы и корней растений на зараженность видов Phytophthora. В связи с тем, что в 1991 году нами была выявлена новая для России болезнь малины – фитофторозная корневая гниль, возбудитель Phytophthora fragariae var. rubi, возникла необходимость разработать доступные методы диагностики этого патогена в почве и в растениях.
В 1994 году был проведен ряд опытов по подбору приманок для диагностики Ph. fragariae var. rubi в почве и корнях растений. Наиболее подходящими для тестирования этого патогена в почве были листья и черешки листьев малины от микроразмноженных растений, адаптированных в теплице.
Для выделения этого патогена из корней малины было предложено в качестве приманок использовать черешки листьев малины, выращиваемой в условиях открытого грунта. Результаты опыта показали, что черешки листьев различных сортов отличались восприимчивостью к Ph. fragariae var. rubi. Максимальную некротизацию черешков листьев наблюдали у сортов Маросейка и Калашник, частота выделения патогена в этом случае достигала 70, 0 и 55, 5 %, соответственно. Наименее чувствительными к заражению этим патогеном были черешки листьев сортов Маллинг эксплайн и Норфолк Джайнт, которые проявляли некротизацию 0, 12 и 0, 15 %, соответственно, при низкой частоте выделения этого патогена. Следует отметить, что эти сорта по сообщениям зарубежных исследователей являются устойчивыми к фитофторозной гнили корней [Barritt et al., 1981; Duncan et al., 1993].
Результаты опытов 1997 г. по подбору наиболее селективной приманки для выделения Phytophthora fragariae var. rubi суммированы в таблице 9. Из представленных данных видно, что лишь листья альпийской лесной земляники оказались совершенно непригодными для выделения Phytophthora fragariae var. rubi из почвы.
Следует отметить, что средний коэффициент селективности у листьев малины красной соответствовал 48, 9 %, а у молодых листьев ежевики сорта Смутсен – 79, 2 % (наивысший коэффициент селективности из 8 испытанных биоприманок).
Таблица 9. Значения коэффициентов селективности (Кс) к Ph. fragariae var. rubi восьми типов биологических приманок
Вид биоприманок |
Последнее изменение этой страницы: 2019-04-09; Просмотров: 214; Нарушение авторского права страницы