Работа 1. Изучение влияния ростовых веществ на рост

Ауксины играют существенную роль в росте и корреляциях растений. Обычно в высших растениях ауксин обычно образуется в точках роста и в меристемах. Он полярно перемещается и в силу этого оказывает физиологическое влияние на зоны, значительно удаленные от мест его образования (дистанционный характер действия). Увеличение концентрации выше оптимальной приводит к обратному эффекту - резкому торможению роста.

После того, как под действием гормона завершается соответствующая реакция, организм должен так или иначе избавиться от него. ИУК, например, может быть связана путем образования:

1) комплексов с пептидами, сахарами или фенолами;

2) адсорбцией с цитоплазматическими структурами;

3) разрушением ее путем окислительного распада при
участии ИУК-оксидазы.

Образование гормона, его распад или перевод в активную форму путем связывания - рычаги тонкого механизма регуляции роста и развития растения.

ХОД РАБОТЫ

Отбираем колеоптили пшеницы, перешедшие в фазу " чистого" растяжения (длина не более 10 мм). У пшеницы клеток продолжается 48 часов, овса 54 часов, кукурузы 72 часа. Затем рост колеоптиля останавливается и лишь увеличивается его масса. 5-7 колеоптилей зажимают между указательным и большим пальцами левой руки, оставив свободными концы. Отступив 4 мм от кончика с помощью линейки, нарезают отрезки длиной 5 мм. Изнутри тупой палочкой выталкивают первичный лист, а полые цилиндрики колеоптилей нанизывают на стеклянные капилляры по 10 штук и измеряют их общую длину. Капилляры с отрезками хранят в дистиллированной воде.

Затем по 2 капилляра размещают в опытные растворы и растворы фитогормонов нужной концентрации. Растворы готовят на фосфатно-цитратном буфере с рН 5, 0 с 1%-ной сахарозой. Сосуды с растворами фитогормонов с капиллярами (их можно приметить разноцветным пластилином) помещают в термостат при 25-28°С. Через каждый час в течение 3 часов промеряют длину 10 отрезков (прямо на капилляре) предварительно их сдвинув.

Данные заносят в таблицу:

 

Влияние ростактивирущих веществ на рост в фазе растяжения

Вариант	№ сосуда	Длина 10 колептилей, мм	Прирост в длину, мм	Прирост в % от контроля

 

Изображают результат графически по динамике роста (увеличение общей длины) и величине приростков (ритмичность роста).

 

Схема опыта:

1 вариант	2 вариант	3 вариант
1) контроль	1) контроль	1) контроль
2) ИУК 10-2	2)ИУК 10-5	2)НУК 10-3
3) ИУК 10-4	3) кинетин 10-6	3) НУК 10-5
4) ИУК 10-7	4) ИУК 10-5	4) НУК 10-5

 

Концентрации выражены в молях, контроль - фосфатно-цитратный буфер, ИУК – индолилуксусная кислота, НУК - нафтилуксусная кислота.

МАТЕРИАЛЫ И ОБОРУДОВАНИЕ

1) колеоптили пшеницы в стадии активного роста растения; 2) растворы кинетина, ИУК и НУК; 3) чашки Петри; 4) термостат.

 

Работа 2. Определение зон роста в органах растений (корень)

Для изучения зон роста растения удобно пользоваться методом нанесения тушью растертой в 5%-ном растворе декстрина, либо маркировочной жидкостью (сажу или активированный уголь растирают с парафиновым маслом).

Для нанесения меток используют тонко заточенную деревянную палочку или нитку. Проращивание семян ведут либо во влажных камерах, либо в стаканчиках с влажными опилками.

 

ХОД РАБОТЫ

Берут семена гороха или фасоли, конских бобов, кукурузы и проращивают во влажных опилках, в которых стеклянной палочкой делают углубления для свободного и строго вертикального роста корня. Затем на небольших (длиной 1, 5-2 см) совершенно прямых, предварительно осторожно обсушенных фильтровальной бумагой корнях (3-4 корня), наносят метки, начиная от кончика корня. Расстояние между метками делают 1 мм. Метки должны быть тонкими и хорошо заметными. Далее проростки помещают в благоприятные для роста условия: во влажные камеры, в темные комнаты при температуре 20-25°С. Через сутки измеряют расстояние между метками (при увеличении ширины самих меток измеряют с их середины) и вычисляют средний суточный прирост различных участков корня.

Результаты выражают графически, откладывая на оси абсцисс номера отрезков, а на оси ординат - приросты. Делают выводы о характере роста корня. Результаты опыта записывают по схеме:

№ проростка

Зона прироста (мм)

Примечание

МАТЕРИАЛЫ И ОБОРУДОВАНИЕ

1) проростки с длиной корней 1, 5-2, 0 см; 2) тушь или маркировочная жидкость; 3) препаровальные иглы или тонко заточенные деревянные палочки; 4) миллиметровая бумага; 5) влажные камеры; 6) деревянные опилки.

Работа 3. Определение зоны роста стебля

Метод основан на учете приростов различных участков стебля за сутки.

ХОД РАБОТЫ

На четырех проростках подсолнечника высотой 2-3 см наносят тушью, начиная от верхушки проростка, по 10 меток на расстоянии 2 мм друг от друга. Помещают проростки в темноту при температуре 20-25°С, через сутки измеряют расстояния между метками и вычисляют прирост различных участков стебля.

Результаты опыта записывают в тетрадь и выражают графически, откладывая на оси абсцисс порядковый номер метки, а на оси ординат - прирост. Делают заключение о характере роста стебля.

Результаты опыта учитывают по схеме:

 

№ проростка

Зона прироста

Примечание

МАТЕРИАЛЫ И ОБОРУДОВАНИЕ

1) проростки подсолнечника высотой 2-3 см, выращенные в темноте; 2) тушь; 3) препаровальные иглы или деревянные лопаточки; 4) линейка.

Работа 4. Наблюдение роста при помощи горизонтального микроскопа

Метод основан на учете смещения нарастающего кончика корня в делениях окулярмикрометра через определенные промежутки времени.

ХОД РАБОТЫ

На столике микроскопа укрепляют влажную камеру с проросшими семенами так, чтобы в поле зрения микроскопа при малом увеличении был виден прямой кончик корня. Трубу микроскопа переводят в горизонтальное положение. Совмещают кончик корня с каким-либо делением шкалы окулярмикрометра и отмечают смещение нарастающего кончика через каждые 10 минут в течение часа. Полученные данные выражают графически.

Результаты опыта учитывают по схеме:

Время наблюдения, мин
Отсчеты в делениях окулярмикрометра
Приросты в делениях окулярмикрометра

МАТЕРИАЛЫ И ОБОРУДОВАНИЕ

1) влажные камеры с проросшими семенами льна; 2) микроскоп; 3) окулярмикрометр.

 

Работа 5. Задерживающее и стимулирующее действие гетероауксина на рост семян

Метод заключается в проращивании семян на растворах различных концентраций гетероауксина в учете длины корешков.

ХОД РАБОТЫ

Пять чашек Петри выстилают фильтровальной бумагой, увлажняют ее 9 мл воды или раствора гетероауксина 0, 01; 0, 001; 0, 0001 и 0, 00001%-ной концентрации.

Для получения указанных концентраций 1 мл исходного 0, 01% раствора гетероауксина, наливают в мерный цилиндр на 10 мл и доливают водой до черты, тщательно перемешивают; отсюда 9 мл помещают в чашку Петри, а оставшийся 1 мл разбавляют водой до черты.

На увлажненную фильтровальную бумагу раскладывают по 5 зерновок кукурузы или пшеницы и закрывают чашки Петри крышкой. Затем помещают их в темное место при температуре 20-25°С.

На следующем занятии (через неделю) измеряют длину корешков и делают вывод.

Результаты измерений записывают по схеме:

Вариант опыта	Суммарная длина корешков, см	Средняя длина корешков на одно растение, см	Длина корешка в % к контролю
Дистиллированная вода (контроль)
Гетероауксин
0, 01%-ный
0, 001%-ный
0, 0001%-ный
0, 001%-ный

 

МАТЕРИАЛЫ И ОБОРУДОВАНИЕ

1) семена злаков или других растений; 2) чашки Петри; 3) раствор гетероауксина 0, 01%-ный; 4) пипетки на 1 мл; 5) мерные цилиндры на 10 мл; 6) фильтровальная бумага; 7) дистиллированная вода.

⇐ Предыдущая1234Следующая ⇒

Поделиться: