Внутренняя среда организма. Кровь. Физиология дыхания.

Стр 1 из 7Следующая ⇒

Внутренняя среда организма. Кровь. Физиология дыхания.

Методические указания

к лабораторным занятиям по нормальной физиологии

для студентов II курса

Тирасполь, 2010

УДК

ББК

Л 47

Аннотация:

Данные методические указания направлены на формирование у студентов навыка постановки и осуществления физиологического анализа по темам «Кровь» и «Дыхание», а также на формирование и закрепление теоретических и практических навыков. Предлагаемая структура и объем методических указаний позволяет полностью реализовать поставленные курсом нормальной физиологии цели и задачи, в том числе, усвоение теоретического материала, овладение приемами физиологических экспериментальных исследований и применения их на практике.

Составители:

А.И. Леорда, доцент, к.б.н., зав. кафедрой физиологии и фармакологии медицинского факультета ПГУ им. Т.Г. Шевченко

С.Г. Казаков, преподаватель кафедры физиологии и фармакологии медицинского факультета ПГУ им. Т.Г. Шевченко

Рецензенты:

Павалюк П.П., заведующий лабораторией Института физиологии и санокреатологии АНМ, к.б.н., старший научный сотрудник.

Гарбуз Л.И., доцент, зав. кафедрой биологии и функциональной гистоморфологии медицинского факультета ПГУ им. Т.Г. Шевченко

Утверждено Научно-методическим Советом

ПГУ им. Т.Г. Шевченко

Протокол № от «____» ___________2010 г.

С.Г. Казаков, 2010

ЧАСТЬ III

ВНУТРЕННЯЯ СРЕДА ОРГАНИЗМА. КРОВЬ,

ОСНОВНЫЕ ФУНКЦИИ, ФИЗИОЛОГИЧЕСКОЕ ЗНАЧЕНИЕ

Тема №1: «Функции крови. Основные физико-химические константы крови. Форменные элементы крови»

НЕОБХОДИМО ЗНАТЬ:

1. Понятие о системе крови. Состав и количество крови в организме. Основные функции крови.

2. Значение крови в поддержании важнейших физико-химических констант внутренней среды: вязкости, осмотического, онкотического давления, рН. Буферные системы крови, понятие щелочного резерва.

3. Эритроциты, морфологические особенности, основные функции. Гемоглобин и его соединения, содержание гемоглобина в организме. Фарб-индекс.

4. Понятие гематокрита. Гемолиз эритроцитов, виды гемолиза. Метод определения осмотической резистентности эритроцитов. СОЭ, значение для клиники.

5. Регуляция эритропоэза. Роль микроэлементов, витаминов и других гуморальных факторов в эритропоэзе.

6. Понятие иммунитета. Стадии иммунного ответа.

7. Лейкоциты. Морфологические и функциональные особенности. Фагоцитоз, основные стадии и механизмы фагоцитоза.

8. Лейкоциты. Основные представители гранулоцитов, их количество в организме, физиологические функции. Лейкоцитарная формула.

9. Лейкоциты. Агранулоциты, основные представители. Понятие иммунного и тканевого гомеостаза. Механизмы кооперации различных представителей агранулоцитов в формировании клеточного и гуморального иммунного ответа.

10. Регуляция лейкопоэза.

Ключевые понятия и определения

Система крови включает в себя: кровь, костный мозг, вилочковую железу, лимфатические узлы, селезенку и печень.

Основные функции крови:

· дыхательная;

· экскреторная;

· регуляторная;

· терморегуляторная;

· питательная;

· гомеостатическая;

· креаторных связей;

· защитная.

Гематокрит

Гематокритом называется часть объема крови, приходящаяся на долю эритроцитов.

У мужчин гематокрит – 0,44 – 0,46

У женщин гематокрит – 0,41 – 0,43

Гематокрит определяется по методу Унитроба, с помощью центрифугирования (центрифуга Шкляра) путем разделения в стандартной пробирке (или капилляре) на плазму и эритроциты.

Значения гематокрита крови, взятой из разных органов, различаются благодаря особым реологическим свойствам эритроцитов.

Гематокрит связан с вязкостью крови.

Вязкость Н₂О = 1,0

Вязкость крови = 4,5 (3,5-5,4)

Вязкость плазмы = (1,9-2,6)

Увеличение гематокрита сопровождается увеличением вязкости крови и как следствие повышению нагрузки на сердце.

Водные пространства организма

Белки плазмы

С помощью электрофореза можно разделить белки.

Электрофорез белков плазмы является важным методом клинической диагностики. Многие заболевания сопровождаются характерными применениями в составе этих белков.

Электрофорезом называется – движение электрически заряженных частиц, находящихся во взвешенном состоянии или растворенных в жидкой среде, по градиенту напряжения.

Электрофорез

+ -

бум. лента

Альбумины альбумины 59,2 %

a₁- глобулины 3,9 %

a₂ – глобулины 7,5 %

глобулины b - глобулины 12,1 %

g - глобулины 17,3 %

a₁ a₂ b g

Значение белков плазмы

- Питание (на 3 литра плазмы приходится 200 г белка) это достаточный запас питательных веществ

- Транспорт – благодаря наличию гидрофильных и гидрофобных участков, белки способны связываться с молекулами и жироподобными веществами и осуществлять их перенос по руслу крови. Кроме белка плазмы (БП) связывают ²/₃ кальция плазмы, переводя его в недиффундируемую форму.

- Создание коллоидно-осмотического давления (онкотическое) между плазмой и межклеточной жидкостью создается градиент концентрации белков.

Онкотическое давление плазмы – 25 мм рт. ст. (3,3 кПа)

Онкотическое давление межклеточной жидкости – 5 мм рт.ст. (0,7 кПа) (Разница 20 мм рт.ст.).

На сдвиги онкотического давления существенно влияет содержание альбумина.

Снижение концентрации альбумина приводит к задержке Н₂О в межклеточном пространстве (интерстициальный отек).

Искусственные кровезаменители должны обладать таким же онкотическим давлением, как и плазма крови.

Буферная функция – поддерживает постоянство рН крови путем связывания Н⁺ или ОН^-.

Предупреждение кровопотери обусловлено наличием в плазме крови фибриногена. Цепь реакций (факторов), в которых участвуют белки плазмы, заканчивается превращением растворенного в плазме фибриногена в сеть из молекул Фибрина, образующую сгусток (тромб).

Свойства и функции отдельных белковых фракций

Альбумин плазмы – этот белок определяет на 80 % коллоидно-осмотическое (онкотическое) давление плазмы. 60 % общего белка плазмы приходится на долю альбумина (35-45 г/л).

Альбумин пикомолекулярное соединение и поэтому хорошо подходит для выполнения функции переносчиков многих транспортируемых кровью веществ.

Альбумин связывает: билирубин, уробилин, жирные кислоты, соли желчных кислот, пенициллин, сульфамедин, ртуть.

При воспалительных процессах и поражении печени и почек количество альбумина снижается.

Глобулины

a₁ – глобулины, иначе их называют – гликопротеинами ²/₃ всего количества глюкозы плазмы присутствует в связанной форме в составе гликопротеинов. К субфракции гликопротеинов относится группа углеводсодержащих белков – протеогликаны (мукопротеины).

a₂ – глобулины – это протеогликан или иначе медьсодержащий белок церулоплазмин, который связывает 90 % всей меди, содержащейся в плазме.

b-глобулин – это белковые переносчики липидов и полисахаридов. Важное значение ликопротеинов состоит в том, что они удерживают в растворе нерастворимые в воде жиры и липоиды и обеспечивают тем самым их перенос кровью.

g - глобулины. Это неоднородная группа белков выполняющих защитные и обезвреживающие функции, иначе называемые иммуноглобулинами. Размеры и состав g - глобулинов существенно варьирует. При всех заболеваниях, особенно воспалительных, содержание g - глобулинов в плазме повышается. К g - глобулинам относятся агглютинины крови: Анти-А и Анти-В.

Фибриноген – растворимый предшественник фибрина, последний превращается в нерастворимую форму. Молекула фибрина имеет удлиненную форму (соотношение длины ширина – 17:1)). Высокая вязкость растворов фибриногена обусловлена свойством его молекул образовывать сгустки в виде «ниток бус».

Эритроциты

Осмотическая стойкость эритроцитов:

минимальная 0,48—0,46 %

максимальная 0,34—0,32 %

Средний объем эритроцита 76—96 мк3

Среднее содержание гемоглобина в 1 эритроците 27—33,3 пг 0,42—0,52 ммоль/эритр

Средняя концентрация гемоглобина в 1 эритроците 30—38 % 4,65—5,89 ммоль/эритр

Диаметр эритроцита 5—6,9 мкм — 12,5 %

7—8 мкм — 75 %

8,1—9 мкм— 12,5%

ФАГОЦИТОЗ – поглощение чужеродных частиц или клеток и дальнейшее их уничтожение клетками крови.

Стадии фагоцитоза:

1. приближение фагоцита к объекту (лиганду);

2. контакт лиганда с мембраной фагоцита;

3. поглощение лиганда;

4. переваривание или уничтожение фагоцитарного объекта.

Действие лейкоцитов проявляется в присутствии особых соединений – хемоаттрактантов (продукты распада тканей, иммуноглобулины, фрагменты активных компонентов комплемента, простагландины, лейкотриены, лимфокины и монокины). Контакт фагоцита опосредуется особыми соединениями – опсонинами, усиливающими фагоцитоз. Наиболее известные опсонины: иммунные комплексы, фрагменты системы комплемента, С-реактивный белок, агрегированные белки, фибронектины и др.

В процессе фагоцитоза лиганд оказывается заключенным в мембрану фагоцита – образуется фагосома. Затем происходит ее слияние с лизосомами клетки и образуется фаголизосома.

Завершенный фагоцитоз – процесс, когда фагоцитируемый объект погибает, разрушается.

Незавершенный фагоцитоз - фагоцитируемый объект может жить и развиваться в фагоците.

Иммунитет – комплекс реакций, направленных на поддержание гомеостаза при встрече с чужеродными агентами экзогенного или эндогенного происхождения.

Антигены способны формировать специфический иммунный ответ благодаря наличию детерминант. К ним, как ключ к замку, подходят активные центры образующих антител или рецепторы клеточных мембран лейкоцитов, что формирует гуморальный и клеточный иммунитет.

Клеточный специфический иммунитет обусловлен Т-лимфоцитами. Гуморальный специфический иммунитет обеспечивается образованием В-лимфоцитами антител к данному антигену.

Иммунный ответ осуществляется иммуннокомплексными клетками:

1. антигенпрезентирующими: моноциты, макрофаги, эндотелиальные клетки, пигментные клетки кожи и др.

2. регуляторными: Т - и В-хелперы, супрессоры, Т-лимфоциты памяти.

3. эффекторы иммунного ответа: Т - и В-киллеры и В-лимфоциты антителопродуценты.

НЕОБХОДИМО УМЕТЬ:

1. Научиться технике взятия крови из пальца человека для лабораторного анализа.

2. Ознакомится с принципом и методикой подсчета эритроцитов. Подсчитать их количество в крови.

3. Ознакомится с принципом и методикой подсчета лейкоцитов. Подсчитать их количество в крови у одного из студентов.

4. Ознакомиться с колориметрической методикой определения количества гемоглобина по методу Сали и определить его количество в крови

5. Ознакомиться со свойствами осмотической устойчивости эритроцитов и произвести количественную оценку их резистентности по отношению к гипотоническим растворам.

РАБОТА№1

Техника взятия крови

Цель работы: научить студентов технике взятия крови из пальца человека для лабораторного анализа.

Необходимо для работы: испытуемый, стерильные копья-скарификаторы однократного пользования и пинцет, спирт, йод, вата, капилляр Сали и маленькая груша, стаканчик стеклянный (или чашка Петри) для собирания использованной ваты и копий, отдельный набор для промывания и просушивания капилляра, вода, эфир, резиновая трубка с маленькой грушей, большая груша для воздуха.

П р о в е д е н и е р а б о т ы:

Прежде чем приступить к забору крови, следует четко представить для каких целей нужна кровь, какой анализ будет проводиться, все ли подготовлено для проведения анализа!

1. Посадить испытуемого, продезинфицировать спиртом мякоть концевой фаланги безымянного пальца левой руки и подождать, пока поверхность кожи просохнет. Приступить к забору крови только после собеседования с преподавателем и под его контролем!

2. Положить предплечье левой руки пациента на стол, ладонью вверх. Достать стерильным пинцетом из стерилизатора продезинфицированное копье-скарификатор, взять его в правую руку, а левой неподвижно держать палец исследуемого, слегка сжимая с боковых поверхностей подготовленную фалангу.

3. Укол нанести одним отрывочным движением на 3-4 мм дистальнее центра подушечки пальца. Необходимо, чтобы кончик копья не просто поцарапал кожу, а вошел в мякоть фаланги до ограничения.

4. Первую выступившую каплю крови стереть сухой ватой (для анализа не использовать), затем приступить к забору крови для работы.

5. Выделение крови можно усилить легким массажем (но не сдавливанием) боковых поверхностей пальца в сторону концевой фаланги, а также периодически сжимая и разжимая опущенную вниз кисть. Если для анализа требуется не одна капля крови, а больше, то после взятия каждой следующей капли необходимо насухо вытирать палец и только после этого брать новую каплю. Нужно следить за тем, чтобы кровь не растекалась по пальцу (чтобы на пальце не начался процесс свертывания крови).

6. Набрать 20 мм³ (0,02 мл) крови в капилляр от гемометра Сали.

Для этого необходимо:

Ø взять в правую руку чистый и сухой капилляр Сали с надетой на конец резиновой трубкой и маленькой грушей. Капилляр удерживать указательным, средним и большим пальцами в чуть наклонном положении. Грушу поместить в ладонь и мизинцем или безымянным пальцем слегка на нее нажать;

Ø погрузив кончик капилляра в каплю крови (но, не прижимая отверстие к пальцу), начать медленно и очень аккуратно уменьшать нажатие на грушу. При этом столбик крови заполнит капилляр. Набрать кровь до метки 20 мм³;

Ø капилляр снаружи вытереть сухой ватой. Если крови набралось немного больше, ее можно снять сухой ватой, которую прикладываю к кончику горизонтально расположенного капилляра (на грушу не нажимать!) Отмеренное количество крови взять для соответствующего анализа.

7. Стереть ватой остатки крови с пальца, смазать место укола йодом или приложить ватку, смоченную спиртом, и прижать кончик пальца к ладони.

8. Использованные вату и скарификаторы не разбрасывать по столу, а сложить в специальный стакан или чашку Петри и в конце работы выбросить. Убрать рабочий стол.

9. Использованный капилляр Сали промыть водой, просушить спиртом, эфиром и воздушной струей.

10. В протоколе кратко описать основные требования и правила, которые нужно соблюдать при взятии крови из пальца.

РАБОТА №2

РАБОТА №3

РАБОТА №4

РАБОТА №5

Группы крови

В эритроцитах, на мембране находятся антитела (агглютиногены) А и В, а в плазме - антитела (агглютинины) α и β. В зависимости от присутствия различных антигенов и антител выделяют 4 группы крови. При сочетании одноименных антител с антигенами происходит агглютинация (склеивание) эритроцитов, что в дальнейшем приводит к развитию гемотрансфузионного шока.

Существует еще один антиген – Д (резус-фактор), который может присутствовать в эритроцитах независимо от групповой принадлежности. Антител к данному антигену не существует, однако они могут образовываться при иммунизации организма кровью, содержащей резус-фактор ( Rh ), и в дальнейшем при переливании резус-положительной крови иммунизированному реципиенту может произойти агглютинация эритроцитов донорской крови.

группа	Антигены	антитела
I (0)	-	α, β
II (A)	A	B
III (B)	B	A
IV (AB)	A,B	-

НЕОБХОДИМО УМЕТЬ:

1.Ознакомиться с принципами и методикой определения СОЭ по Панченкову и определить ее у студентов.

2. Рассчитывать цветной показатель крови.

3. Определять время свертывания крови

4. Определять продолжительности кровотечения.

5. Определять группу крови резус- принадлежности крови человека.

РАБОТА №6

РАБОТА №7

РАБОТА №8

Методика по Сухареву

Необходимо для работы: испытуемый, чистый и сухой капилляр от прибора Панченкова, стерильный скарификатор и пинцет, спирт, йод, вата.

П р о в е д е н и е р а б о т ы:

1. Проколоть палец, снять первую каплю крови сухой ваткой.

2. Погрузить конец капилляра в каплю крови, не прижимая отверстия к пальцу.

3. Слегка опустив наружный конец капилляра, набрать 20-30 мм крови и перевести этот столбик крови на середину.

4. Держа капилляр двумя пальцами, произвести плавное покачивание его в обе стороны с амплитудой 40-45⁰.

Свободное смещение столбика крови говорит о том, что свертывание еще не наступило. Замедленное движение крови при наклоне капилляра характеризует начало свертывания, при этом на внутренней стенке капилляра появляются небольшие сгустки.

Момент полной остановки движения столбика крови в капилляре соответствует наступлению окончательного свертывания крови. По предлагаемой методике скорость свертывания крови в норме: начало свертывания происходи через 30 с – 2 мин., полное свертывание – через 3-5 мин.

РАБОТА №9

Метод Дюка

Цель работы: научиться определять время кровотечения.

Необходимо для работы: испытуемый, стерильные скарификатор и пинцет, спирт, йод, вата, фильтровальная бумага.

П р о в е д е н и е р а б о т ы:

1. Проколоть кожу пальца так, чтобы на ее поверхности выступила капля крови.

2. Каждые 30 с прикладывать фильтрованную бумагу к капле крови (не прикасаясь к ранке).

3. Отметить, через какое время фильтровальная бумага перестанет впитывать кровь.

4. В протокол записать ход работы. Полученные результаты сравнить с физиологической нормой. В норме скорость кровотечения по Дюку составляет 2-4 минуты.

РАБОТА №10

Определение группы крови

Цель работы: ознакомиться с принципом определения группы крови и определить ее у одного из студентов.

Необходимо для работы: испытуемый, специальная керамическая (или эмалированная) пластинка с углублениями, стандартные сыворотки I, II, III группы крови, маркированные пипетки, предметное стекло или стеклянные палочки, стерильный скарификатор и пинцет, спирт, вата, йод.

П р о в е д е н и е р а б о т ы:

1. Нанести на белую керамическую пластинку в углубления при помощи пипетки по большой капле сыворотки (для каждой сыворотки отдельная пипетка) I. II и III групп крови (рис. 4).

Рис. 4. Определение группы крови

2. Сделать прокол пальца и добавить в каждую каплю сыворотки каплю крови, перемешать (соотношение сыворотки и крови 10:1). Капли крови с пальца снять разными углами предметного стекла или разными стеклянными палочками (не путать !).

3. Подождать пять минут, периодически покачивая пластинку, после чего рассмотреть результаты.

4. Определить по образованию комочков склеенных эритроцитов наличие агглютинации в каждой из капель.

5. По наличию или отсутствию агглютинации в сыворотках II и III групп крови сделать заключение о наличии или отсутствии в эритроцитах исследуемой крови агглютиногенов А и В. На основании этого дать заключение о групповой принадлежности крови.

6. По наличию или отсутствию агглютинации эритроцитов исследуемой крови в контрольной стандартной сыворотке I группы проконтролировать правильность определения группы крови.

7. В протоколе кратко описать ход работы, зарисовать пластинку с результатами агглютинации, сделать вывод о групповой принадлежности исследуемой крови.

РАБОТА №11

Тема № 3: «Внешнее дыхание»

НЕОБХОДИМО ЗНАТЬ:

1. Сущность процесса дыхания, его основные этапы. Механизм внешнего дыхания. Биомеханика вдоха и выдоха.

2. Плевральная полость, ее значение для дыхания. Происхождение отрицательного давления в плевральной полости. Модель Дондерса. Пневмоторакс.

3. Легочные объемы и легочные емкости, методы определения (спирометрия, спирография).

4. Легочная вентиляция (МОД), способы определения. Альвеолярная вентиляция. Физиологическое значение анатомического мертвого пространства.

5. Механизмы обмена газов в легких и тканях (схема). Факторы, влияющие на газообмен в легких: аэрогематический барьер, вентиляционно-перфузионный коэффициент, гравитационный фактор (зоны Веста). Понятие альвеолярного мертвого пространства.

6. Типы вентиляции.

Ключевые понятия и определения

Основным источником энергии в организме являются вещества, в структуру которых входят макроэргические связи. Прежде всего, к таким веществам относится АТФ (аденозинтрифосфорная кислота). Израсходованные источники энергии восстанавливаются за счет утилизации питательных веществ, завершающим звеном восстановления является биологическое окисление. Оно и составляет сущность процесса дыхания. В результате окисления питательных субстратов происходит поглощение кислорода и выделение углекислого газа, воды и энергии, которая используется на восстановление макроэргов.

У человека и млекопитающих сформировалась специальная система органов дыхания, обеспечивающая поступление из окружающей среды кислорода и выведения из организма в атмосферу углекислого газа. Различают несколько этапов дыхания:

· Внешнее дыхание – газообмен между легкими и внешней средой;

· Легочное дыхание – газообмен между легкими и кровью;

· Транспорт газов кровью (дыхательная функция крови);

· Газообмен между кровью и тканями, клетками организма;

· Истинное иди тканевое дыхание (о нем было сказано выше).

Внешнее дыхание осуществляется за счет дыхательных движений, формирующих вдох и выдох. Основную роль легочной вентиляции играют дыхательные мышцы, главными из которых являются диафрагма и межрёберные мышцы.

Дыхательная мускулатура относится к скелетной и подчиняется произвольной регуляции.

В воздухоносных путях происходит диффузионный и конвекционный перенос газов. В трахее, бронхах и бронхиолах он осуществляется путем конвекции.

В респираторных бронхиолах и альвеолярных ходах воздух движется медленно и поэтому именно здесь присоединяется диффузионный обмен, обусловленный градиентом парциальных давлений газов. Молекулы кислорода перемещаются в направлении альвеол, где Ро₂ниже, чем во вдыхаемом воздухе, а молекулы углекислого газа – в обратном направлении. Легочная вентиляция – объем воздуха, проходящего через легкие за единицу времени (за 1 мин.) отсюда МОД – минутный объем дыхания.

Мертвое пространство – объем воздуха, приходящегося на вентиляцию просвета воздухоносных путей.

Внутриплевральное давление меньше атмосферного: на вдохе на 4-9 мм рт.ст., на выдохе на 2-4 мм рт.ст.

Дыхательная мускулатура.

Акт вдоха (инспирация) – процесс активный.

Акт выдоха (экспирация) в условиях покоя – процесс пассивный.

Альфа-мотонейроны диафрагмальной мышцы локализованы в шейных сегментах спинного мозга – С₂ - С₅ . В момент возбуждения нейроны посылают к мышечным волокнам ПД с частотой до 50 Гц и вызывают их тетанус.

Мотонейроны межреберных мышц расположены в грудном отделе спинного мозга (Th1 – Th12) и представлены альфа - и гамма-мотонейронами. За счет гамма-мотонейронов происходит оценка степени податливости грудной клетки к растяжению. Когда сила дыхательной мускулатуры недостаточна для акта вдоха, происходит активация проприорецепторов дыхательных мышц, а затем – как следствие – альфа-мотонейронов. (Гамма-мотонейроны регулируют чувствительность этих рецепторов.)

Линейная скорость воздушного потока максимальна в трахее – 98,4 см/с и минимальна в альвеолярных мешках – 0,02 см/с.

Содержание О₂ в альвеолярной смеси – 14 об. %.

Содержание СО₂ в альвеолярной смеси – 5,6 об. %. Оставшаяся часть альвеолярной газовой смеси приходится на долю азота и очень небольшого количества инертных газов.

В атмосферном воздухе содержится 20,9 об. % кислорода, 0,03 об. % углекислого газа и 79,1 об. % азота.

В выдыхаемом воздухе содержится 16 об. % кислорода,4,5 об. % углекислого газа и 79,5 об. % азота.

Парциальное давление газов в альвеолах составляют: 100 мм рт.ст. для О₂ и 40 мм рт.ст. для СО₂.

in vivo 1г Hb связывает 1,34 мл О₂ (так называемое число Хофнера).

Напряжение СО₂ в артериальной крови, поступающей в тканевые капилляры составляет 40 мм рт.ст.

У человека длительность спокойного выдоха на 10-20 % больше длительности вдоха. Отношение длительности вдоха и общей длительности дыхательного цикла называют инспираторным индексом.

Нормовентиляция – парциальное давление углекислого газа в альвеолах поддерживается в пределах 40 мм рт.ст.

Гипервентиляция – усиленная вентиляция, превышающая метаболические потребности организма. Парциальное давление углекислого газа меньше 40 мм рт.ст.

Гиповентиляция - сниженная вентиляция по сравнению с метаболическими потребностями организма. Парциальное давление СО₂ больше 40 мм рт.ст.

Повышенная вентиляция – любое увеличение альвеолярной вентиляции по сравнению с уровнем покоя независимо от парциального давления газов в альвеолах (например: при мышечной работе).

Эупноэ – нормальная вентиляция в покое, сопровождающаяся субъективным чувством комфорта.

Гиперпноэ – увеличение глубины дыхания, независимо от того, повышена или снижена частота дыхания.

Тахипноэ – увеличение частоты дыхания. При этом возможно развитие двух его типов: 1) учащение и углубление – тахигиперпноэ, 2) учащение и уменьшение глубины – тахигипоноэ.

Брадипноэ – снижение частоты дыхания, которое может развиваться в двух вариантах: 1) урежение и углубление – брадигиперпноэ, 2) урежение и уменьшение глубины – брадигипноэ.

Апноэ – остановка дыхания, обусловленная отсутствием стимуляции дыхательного центра (например: при гипокапнии).

Диспноэ – неприятное субъективное ощущение недостаточности дыхания или затрудненного дыхания (одышка).

Ортопноэ – выраженная одышка, связанная с застоем крови в легочных капиллярах в результате сердечной недостаточности. В горизонтальном положении это состояние усугубляется и поэтому лежать таким больным тяжело.

Асфиксия – остановка или угнетение дыхания, связанные главным образом с параличом дыхательного центра. Газообмен при этом резко нарушен: наблюдается гипоксия и гиперкапния.

Дыхательная аритмия (arhythmia respiratoria) – нарушение физиологической ритмичности следования дыхательных циклов. Может быть результатом нормальной жизнедеятельности (труд, спорт, эмоциональное возбуждение, смех, плач, речь, пение и др.) или патологических процессов (инфекционное заболевание интоксикация, травмы, гипертермия, измененная газовая среда).

Парадоксальные дыхательные движения (paradoxos – греч., неожиданный, странный) – синхронное с фазами дыхательного цикла движения части грудной клетки или диафрагмы, но с обратной направленностью. Наблюдаются при периферическом параличе части дыхательных мышц в результате присасывающего действия субатмосферного давления в полости плевры. Парализованные мышцы пассивно втягиваются при вдохе и выбухают во время активного выдоха за счет энергии сокращения нормально функционирующих дыхательных мышц.

НЕОБХОДИМО УМЕТЬ:

1. Определить объемы воздуха, составляющие жизненную емкость легких

2. Рассчитывать показатели МОД и АВ для определения эффективности дыхания.

РАБОТА № 12

Модель Дондерса

Цель работы: убедиться в значении отрицательного давления в плевральной полости в биомеханике вдоха и выдоха.

Необходимо для работы: лягушка или белая крыса, модель Дондерса, водяной манометр, препаровальный набор, тонкая прямая игла, нитки, кусочек резинового шланга.

Модель Дондерса – стеклянный колокол, дно которого затянуто резиновой мембраной, и легкие животного. Резиновая мембрана играет роль диафрагмы (рис. 5) При оттягивании мембраны вниз «объем грудной полости» увеличивается, как при вдохе, при вдавливании ее внутрь колокола уменьшается, как при выходе.

Рис. 5. Модель Дондерса: 1-колокол с легкими лягушки; 2-резиновая мембрана; 3-тройник; 4-зажим; 5-манометр

П р о в е д е н и е р а б о т ы:

1. Лягушку обездвижить и укрепить на дощечке брюшком вверх.

2. Удалить нижнюю челюсть и, захватив пинцетом подъязычную кость, найти голосовую щель, расположенную на гортанном возвышении.

3. Обшить края голосовой щели «кисетным швом».

4. Вынуть пробку из колокола и вставить стеклянную канюлю в голосовую щель. Снять нитку вокруг шейки канюли и завязать двойным узлом.

5. Вскрыть полость теля лягушки и, поддувая воздух в канюлю, раздуть легкие. Канюлю закрыть пальцем или зажать шланг, одетый на канюлю, и очень осторожно отделить легкие вместе с гортанью. Пробку с канюлей и фиксированными легкими плотно вставить в горло колокола.

6. Соединить боковой отросток колокола с манометром. Открыть кран зажима. Вести наблюдение за легкими. Вдавить мембрану в полость колокола и перекрыть кран, мембрану отпустить. Наблюдать за изменением объема легких и показаниями манометра.

7. Медленно оттянуть мембрану вниз («вдох»), а затем отпустить («выдох»). Проследить за показаниями манометра и изменениями объема воздуха. Можно измерить и давление воздуха в легких во время «вдоха» и «выдоха», для этого нужно соединить манометр с канюлей, на которую одеты легкие.

8. Создать в «плевральной полости» исходное отрицательное давление, как в п.б. При вдавлении мембраны необходимо плотно закрыть отводное отверстие на колоколе.

9. Меняя положение мембраны, наблюдать за движениями легких и показаниями манометра.

10. В протоколе кратко записать ход работы. Зарисовать схему модели Дондерса и внести полученные результаты.

РАБОТА № 13

Спирометрия

Цель работы: ознакомиться с принципом работы сухого спирометра и определить объемы воздуха, составляющие жизненную емкость легких (ЖЕЛ).

Необходимо для работы: испытуемый, сухой спирометр, мундштук, зажим для носа, вата, спирт.

П р о в е д е н и е р а б о т ы:

1. Ознакомиться с устройством сухого спирометра.

2. Проверить, чтобы нулевая отметка шкалы находилась напротив стрелки.

3. Протереть мундштук ватой, смоченной спиртом.

4. Взять мундштук в рот, сделать максимальный вдох ртом из атмосферы, а затем, зажав нос, произвести максимальный выдох через мундштук в спирометр. Выдох произвести плавно, без рывков, т.к. при быстром выдохе величина ЖЕЛ будет больше (за счет вращения по инерции).

5. Снять показания прибора по линии отсчета. Измерение повторить три раза. Максимальная величина из этих трех измерений будет ЖЕЛ (фактическая).

Рис. 6. Схема сухого спирометра: 1-мундштук; 2-шкала.

6. Сделать несколько спокойных вдохов и выдохов в атмосферу. Взять мундштук в рот и продолжать спокойно дышать (без усилия), делая вдох через нос, а выдох – через рот в спирометр.

7. После пяти таких выдохов записать показания шкалы по линии отсчета и полученную цифру разделить на 5. Результат деления характеризует среднюю величину дыхательного объема (ДО).

8. При закрытом носе после обычного спокойного выдоха в атмосферу взять в рот мундштук и сделать дополнительно максимально глубокий выдох в спирометр. Снять показания прибора. Это будет резервный объем выдоха (РОВ). Привести прибор в исходное положение.

9. Зная ЖОЛ, ДО и РОВ (выдоха), рассчитать резервный объем вдоха.

10. В протоколе кратко описать ход работы и внести полученные данные.

РАБОТА № 14

РАБОТА№15

РАБОТА №16

РАБОТА №17

Внутренняя среда организма. Кровь. Физиология дыхания.

Методические указания

к лабораторным занятиям по нормальной физиологии

для студентов II курса

Тирасполь, 2010

УДК

ББК

Л 47

Аннотация:

Составители:

С.Г. Казаков, преподаватель кафедры физиологии и фармакологии медицинского факультета ПГУ им. Т.Г. Шевченко

Рецензенты:

Утверждено Научно-методическим Советом

ПГУ им. Т.Г. Шевченко

Протокол № от «____» ___________2010 г.

С.Г. Казаков, 2010

ЧАСТЬ III

ВНУТРЕННЯЯ СРЕДА ОРГАНИЗМА. КРОВЬ,

ОСНОВНЫЕ ФУНКЦИИ, ФИЗИОЛОГИЧЕСКОЕ ЗНАЧЕНИЕ

12 3 4 5 6 7 Следующая ⇒

Последнее изменение этой страницы: 2019-04-10; Просмотров: 224; Нарушение авторского права страницы