Этапы проведения предстерилизационной очистки

3. Бактериологический – при помощи биологических индикаторов (БИК) В его основе лежит гибель определенного числа тестовых микроорганизмов, устойчивых к воздействию стерилизующего агента. Учет результатов производиться по изменению цвета питательной среды.

Ответ на 26вопрос.

Помещения ЦСО разделено на три зоны – грязная, чистая и стерильная. К грязной зоне относятся помещения приема и очистки изделий медицинского назначения, к чистой зоне относятся помещения упаковки, комплектации и загрузки в стерилизаторы. К стерильной зоне относятся: стерильная половина стерилизационной - автоклавной, склад стерильных материалов и экспедиция.

Персонал ЦСО осуществляет:

· прием изделий;

· разборку;

· бракераж;

· учет и замену сломанных изделий;

· мелкий ремонт и заточку;

· предстерилизационную очистку;

· комплектование;

· упаковку;

· стерилизацию;

· контроль качества предстерилизационной очистки и работы стерилизаторов;

· выдачу стерильных изделий.

Функции:

1. Предстерилизационная очистка многоразовых инструментов.
2. Стерилизация с контролем качества.
3. Приготовление дистиллированной воды.

Ответ на 28вопрос.

Контроль качества предстерилизационной очистки проводят ежедневно. Контролю подлежат: в стерилизационной - 1% от каждого наименования изделий, обработанных за смену; при децентрализованной обработке - 1% одновременно обработанных изделий каждого наименования, но не менее трех единиц.Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают путем постановки азопирамовой или амидопириновой пробы на наличие остаточных количеств крови, а также путем постановки фенолфталеиновой пробы на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств.

Азопирамовая проба.

Приготовление исходного раствора.

Для приготовления 1 л (куб. дм) исходного раствора азопирама отвешивают 100 г амидопирина и 1, 0-1, 5 г солянокислого анилина, смешивают их в сухой мерной посуде и доводят до объема 1 л (куб. дм) 95% этиловым спиртом. Смесь тщательно перемешивают до полного растворения ингредиентов. Исходный раствор азопирама следует хранить в плотно закрытом флаконе в темноте. Допустимый срок хранения исходного раствора азопирама составляет 2 месяца при температуре 4 град. С (в холодильнике); при комнатной температуре (20+/-2 град. С) - не более 1 месяца. Умеренное пожелтение исходного раствора в процессе хранения без выпадения осадка не снижает рабочих свойств раствора.

Методика постановки пробы:

1. Контролируемое изделие протирают марлевой салфеткой, смоченной реактивом, или наносят 2-3 капли реактива на изделие с помощью пипетки.

2. В шприцы вносят 3-4 капли рабочего раствора реактива и несколько раз продвигают поршнем для того, чтобы смочить реактивом внутреннюю поверхность шприца, особенно места соединения стекла с металлом, где чаще всего остается кровь; реактив оставляют в шприце на 1 мин, а затем вытесняют на марлевую салфетку. При проверке качества очистки игл реактив набирают в чистый, не имеющий следов коррозии шприц. Последовательно меняя иглы, через них пропускают реактив, вытесняя 3-4 капли на марлевую салфетку.

3. Качество очистки катетеров и других полых изделий оценивают путем введения реактива внутрь изделия с помощью чистого шприца или пипетки. Реактив оставляют внутри изделий на 1 мин, после чего сливают на марлевую салфетку. Количество реактива, вносимого внутрь изделия, зависит от величины изделия.

При положительной азопирамовой пробе в присутствии следов крови немедленно или не позднее, чем через 1 мин, появляется вначале фиолетовое, затем быстро в течение нескольких секунд переходящее в розово - сиреневое или буроватое окрашивание реактива.

Азопирам, кроме гемоглобина, выявляет наличие на изделиях остаточных количеств пероксидаз растительного происхождения (растительных остатков), окислителей (хлорамина, хлорной извести, стирального порошка с отбеливателем, хромовой смеси для обработки посуды и др.), а также ржавчины (окислов и солей железа) и кислот. При наличии на исследуемых изделиях ржавчины и указанных окислителей наблюдается бурое окрашивание реактива, в остальных случаях происходит окрашивание в розово - сиреневый цвет.

При постановке азопирамовой пробы окрашивание реактивов, наступившее позже чем через 1 мин после постановки пробы, не учитывается.

В случае положительной пробы на кровь или на остаточные количества щелочных компонентов моющих средств, всю группу контролируемых изделий, от которой отбирали контроль, подвергают повторной очистке до получения отрицательных результатов.

Результаты контроля отражают в журнале по форме N 366/у

Ответ на 31вопрос.

Заключительная очаговая дезинфекция проводится после выписки, смерти или перевода больного в другое отделение или стационар с целью обеззараживания объектов внутрибольничной среды, с которыми он контактировал в процессе пребывания в стационаре.
В ходе заключительной очаговой дезинфекции:

• обеззараживаются поверхности помещений, в которых находился больной и места общего пользования; поверхности оборудования и приборов; изделия медицинского назначения; предметы ухода за больным, медицинские отходы;
• обеззараживаются в дезинфекционных камерах постельные принадлежности, нательное белье и вещи больного, выдаваемые ему перед выпиской;
• обеззараживается санитарный транспорт, перевозивший больного;
• проводится полная или частичная санитарная обработка кожных покровов больных перед выпиской;
• проводится дезинсекция и дератизация.

Кварцевание помещений. Ультрафиолетовое бактерицидное облучение воздушной среды помещений осуществляют с помощью ультрафиолетовых бактерицидных установок. Оно является санитарно-противоэпидемическим (профилактическим) мероприятием, направленным на снижение количества микроорганизмов и профилактику инфекционных заболеваний и способствующим соблюдению санитарных норм и правил по устройству и содержанию помещений. Ценен метод использования ультрафиолетовых лучей тем, что с его помощью можно обезвреживать воздушную среду и предметы больничной обстановки. Длительность эффективного облучения воздуха в помещении во время работы бактерицидной установки, при которой достигается заданный уровень бактерицидной эффективности, определяется согласно паспорта бактерицидной установки. Эксплуатация бактерицидных облучателей должна осуществляться в строгом соответствии с требованиями, указанными в паспорте и инструкции по эксплуатации. К эксплуатации бактерицидных установок не должен допускаться персонал, не прошедший необходимый инструктаж в установленном порядке, проведение которого следует задокументировать. На помещения с бактерицидными установками должен быть заведен журнал регистрации и контроля, который находится у старшей медицинской сестры. В журнале должна быть таблица регистрации очередных проверок бакгерицидной эффективности установок, концентрации озона, а также данные учета продолжительности работы бактерицидных ламп. Кварцевание палат, коридора, подсобных помещений осуществляется палатными медицинскими сестрами три раза в день.

Ответ на 32 вопрос.

Меры профилактики передачи вирусов парентеральных гепатитов и ВИЧ- инфекции в ЛПУ

1. Работать только в резиновых перчатках.

2. Для предупреждения трав иглами и другим острым инструментом: никогда не сгибать, не ломать и не надевать на них колпачки;

3. Для предупреждения контакта открытых ран и слизистых оболочек: закрывать поврежденные участки кожи и открытые ранынепромокаемыми повязками;

4. Надевать защитные очки, если возможен контакт с кровью или жидкими средами организма, а также при работе с образцами крови;

5. Передача через заражённые инструменты: все повторно используемые инструменты после каждого использования должны быть очищены, дезинфицированы и стерилизованы;

6. Запрещается прямое переливание крови;

7. При подготовке к проведению медицинских манипуляций необходимо убедиться в укомплектованности аптечки;

8. При осуществлении манипуляций надевать халат, шапочку, сменную обувь, выходить в которых за пределы лабораторий, отделений запрещается; 9. Резиновые перчатки, единожды снятые в процессе проведения манипуляции пациенту, повторно не использовать;

10. Разборку, мойку, ополаскивание медицинского инструментария, пипеток, лабораторной посуды, приборов или аппаратов – необходимо проводить только после предварительной дезинфекции и в резиновых перчатках;

11. Соблюдать меры предосторожности при выполнении манипуляций с режущими и колющими инструментами (иглы, скальпели, ножницы),

12. Запрещается: принимать пищу, курить и пользоватьсякосметикой на рабочих местах.

Ответ на 35вопрос.

Основные правила перемещения пациентов

· убедиться каково состояние и масса тела пациента, сможет ли оно помочь, имеются ли у пациента дренажи или капельницы, нужен ли помощник;

· создать безопасную обстановку – убрать лишние предметы, поставить кровать или каталку на тормоз, поднять или опустить кровать;

· выбрать самый лучший способ удерживания пациента;

· выбрать вспомогательные средства поднятия;

· подойти к пациенту как можно ближе;

· держать спину прямо;

· убедиться, что бригада и пациент выполняют движения в одном ритме.

Одежда и обувь медицинской сестры должны быть удобными и не ограничивать движения.

Ответ на 37 вопрос.

Предстерилизационная очистка проводятся в централизованных стерилизационных отделениях, а при их отсутствии в отделениях ЛПО систематически во всех случаях при подготовке изделий к предстоящим медицинским манипуляциям, при которых эти изделия будут соприкасаться с кровью, раневой поверхностью, инъекционными препаратами или при которых имеется риск повреждения слизистых оболочек.

Предстерилизационная очистка осуществляется в качестве самостоятельного процесса после дезинфекции изделий или при совмещении с ней. Её цель – удаление с изделий медицинского назначения любых неорганических и органических загрязнений (включая белковые, жировые, механические и другие), в том числе остатков лекарственных препаратов, сопровождающееся снижением общей микробной контаминации для облегчения последующей стерилизации этих изделий.

Для предстерилизационной очистки используются химические, физические средства, оборудование, аппаратура и материалы, разрешенные к применению в ЛПО в установленном в Российской Федерации порядке, не оказывающие неблагоприятного воздействия на человека.
Медицинские изделия многократного применения подлежат последовательно: дезинфекции, предстерилизационной очистке, стерилизации, последующему хранению в условиях, исключающих вторичную контаминацию микроорганизмами.

Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают путем постановки азопирамовой или амидопириновой проб на наличие остаточных количеств крови, а также путем постановки фенолфталеиновой пробы на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств в соответствии с действующими методическими документами и инструкциями по применению конкретных средств.

Контроль качества предстерилизационной очистки проводят ежедневно. Контролю подлежат: в стерилизационной - 1% от каждого наименования изделий, обработанных за смену; при децентрализованной обработке - 1% одновременно обработанных изделий каждого наименования, но не менее трех единиц. Результаты контроля регистрируют в журнале.

Этапы

1.Надеть защитную одежду.
2.Подготовить емкости с моющим раствором.
3.Ополоснуть каждое изделие под проточной водой от дез.р-ра.
4. Замачивание в  моющем растворе при полном погружении изделия в  разобранном виде с  заполнением всех каналов и  полостей на 15–60 минут в  зависимости от применяемого средства.

5.Промыть каждое изделие в моющем растворе при помощи ерша или ватно-марлевого тампона в течение 30 сек.
6.Ополоснуть каждое изделие под проточной водой в  течение времени, предусмотренного инструкцией к  применяемому средству.
7.Ополаскивание дистиллированной водой с  последующей сушкой горячим воздухом.
8.Провести контроль качества предстерилизационной очистки.

Ответ на 39 вопрос.

Состав аптечки для экстренной профилактики
парентеральных вирусных гепатитов и ВИЧ-инфекции
(Аптечка «Анти-СПИД»)

1. Спирт этиловый 70%, 100 мл*
2. Раствор йода 5%, 1 флакон
3. Раствор борной кислоты 1%
4. Раствор протаргола 1%
5. Раствор марганцевокислого калия 0, 05% (навески сухого марганцевокислого калия по 50 мг)*
6. Дистиллированная вода в емкостях по 100 мл
7. Пипетки стеклянные - 5 шт.
8. Ватные и марлевые тампоны - по 5 шт.
9. Лейкопластырь антисептический - 1 уп.
10. Ножницы металлические
11. Напальчники - 5 шт.
12. Туалетное мыло
13. Раствор хлорамина Б 3% или другой любой дезинфицирующий раствор
14. Промаркированный металлический ящик

Антиретровирусные препараты:

Азидотимидин (ретровир, зидовудин)
Ламивудин (эливир)
Лопинавир/ритонавир (калетра)
Ламивудин+Зидовудин (комбивир)

- в случае порезов и уколов немедленно снять перчатки, вымыть руки с мылом под проточной водой, обработать руки 70%-м спиртом, смазать ранку 5%-м спиртовым раствором йода;
- при попадании крови или других биологических жидкостей на кожные покровы это место обрабатывают 70%-м спиртом, обмывают водой с мылом и повторно обрабатывают 70%-м спиртом;
- при попадании крови и других биологических жидкостей пациента на слизистую глаз, носа и рта: ротовую полость промыть большим количеством воды и прополоскать 70% раствором этилового спирта, слизистую оболочку носа и глаза обильно промывают водой (не тереть);
- при попадании крови и других биологических жидкостей пациента на халат, одежду: снять рабочую одежду и погрузить в дезинфицирующий раствор или в бикс (бак) для автоклавирования;
- как можно быстрее начать прием антиретровирусных препаратов в целях постконтактной профилактики заражения ВИЧ.

- сотрудники ЛПО должны незамедлительно сообщать о каждом аварийном случае руководителю подразделения, его заместителю или вышестоящему руководителю;
- травмы, полученные медработниками, должны учитываться в каждом ЛПО и актироваться как несчастный случай на производстве с составлением Акта о несчастном случае на производстве;
- следует заполнить Журнал регистрации несчастных случаев на производстве;
- необходимо провести эпид.расследование причины травмы и установить связь причины травмы с исполнением медработником служебных обязанностей.

Ответ на 40 вопрос.

Методы стерилизации:

4. Термические – воздушный, паровой, глассперленовый.

5. Химические – химическими препаратами, газовый.

6. Промышленная стерилизация – газовая и радиационная.

6. Бактериологический – при помощи биологических индикаторов (БИК) В его основе лежит гибель определенного числа тестовых микроорганизмов, устойчивых к воздействию стерилизующего агента. Учет результатов производиться по изменению цвета питательной среды.

Ответ на 56 вопрос.