Тема 2. Асептика при стоматологических вмешательствах на терапевтическом приеме. Профилактика СПИДа и В-гепатнта

Цель занятия

1. Научить студентов методам асептики и антисептики в терапевтической сто­матологии.

2. Овладеть методами практического применения принципов асептики в работе терапевта-стоматолога.

Краткое изложение темы

 

В стоматологии, как и в других областях медицины, необходимо строгое со­блюдение правил асептики и антисептики, так как любое стоматологическое вмеша­тельство производится на инфицированных тканях.

Антисептика – комплекс мероприятий, направленных на уменьшение количества микробов на поврежденных участках человеческого тела (кожа, слизистые).

Асептика – система профилактических мероприятий, направленных на преду­преждение попадания микроорганизмов в рану, органы и ткани больного в процессе любых врачебных манипуляций.

Профилактика контактной инфекции заключается в стерилизации и дезинфек­ции всех приборов и инструментов, с которыми соприкасается пациент.

Под стерилизацией понимают совокупность физических и химических спосо­бов полного освобождения объектов внешней среды от вегетативных и почкующих­ся форм микроорганизмов. В стерилизованных объектах допускается присутствие только небольшого количества термофильных микробов, которые не размножаются при температуре тела человека и поэтом) не представляют для него опасности.

Технологически процесс стерилизации состоит из следующих этапов:

1) дезинфекция;

2) предстернлизационная очистка инструментов от крови, жира, грязи;

3) размещение материалов в стерилизаторе;

4) собственно стерилизация;

5) сушка;

6) контроль за стерилизацией;

7) хранение стерилизованных инструментов и материала.

Дезинфекция

Под дезинфекцией понимают совокупность способов полного, частичного или се­лективного уничтожения потенциально патогенных для человека микроорганизмов на объектах внешней среды с целью разрыва путей передачи возбудителей инфекционных заболеваний от источников инфекции к восприимчивым людям.

Дезинфекции подвергаются: изделия, имеющие контакт с раневой поверхно­стью, кровью, использованные при вмешательствах у инфекционного больного, па­циента, являющегося носителем патогенных микроорганизмов и HBS-антигена, а также изделия, использованные для введения живых вакцин. В этих случаях дезин­фекцию выполняют перед предстерилизационной очисткой.

Предстерилизаиионная очистка проводится с целью удаления белковых, жиро­вых, механических загрязнений, а также лекарственных препаратов.

Предстерилизационная очистка осуществляется в несколько этапов:

1) промывание инструментов под холодной проточной водой (15 сек.);

2) замачивание инструментов в моющем растворе при Т 52 °С на 10 минут; Если цвет раствора не изменился, то его можно использовать до б раз.

3) повторное промывание инструментов под проточной водой, затем дис­тиллированной водой.

Контроль качества, предстерилизационной обработки инструментов Контролю подвергают 1 % (но не менее 3-5 изделий одного наименования) од­новременно обработанного инструментария.

I. На наличие крови

Бензидиновая проба может быть выполнена двумя способами:

1. С сернокислым бензидином (по Грегерсену) – 0, 025 гр. Сернокислого бензи-дина растворяют в 5 мл 50 % раствора уксусной кислоты; перед исследованием добавляют 5 мл 3 % раствора перекиси водорода. 3 капели приготовленного раствора наносят на изделие. Появление сине-зеленого окрашивания на вымытых изделиях при постановке проб указывает на наличие крови. Готовится ежедневно.

2. С солянокислым бензидином: готовят 1 % раствор солянокислого бензидина в дистиллированной воде. На изделие наносят 3 капли раствора бензидина и 3 капли рас­твора перекиси водорода. В темной склянке с притертой пробкой 1 % раствор бензи­дина сохраняет свою чувствительность в течение двух недель.

Амндопириновая проба: смешивают равные количества 5% спиртового раствора амидопирина с 3 % раствором перекиси водорода и добавляют несколько капель 30 % уксусной кислоты. Сине-фиолетовое окрашивание указывает на наличие крови.

Орто-толидиновая проба: к 1 % раствору орто-толидина на дистиллированной воде добавляют равное количество 3 % раствора перекиси водорода. При наличии кровяных загрязнений появляется сине-зеленое окрашивание.

II. На наличие остаточных: количеств щелочных компонентов моющего раствора

Фенолфталеиновая проба: на вымытое изделие наносят 3 капли спиртового рас­твора фенолфталеина. При наличии остаточных количеств моющих средств появля­ется розовое окрашивание.

Инструменты или изделия, давшие положительные пробы на кровь, обрабаты­ваются повторно, а содержащие остаточные количества моющих средств повторно промываются проточной водой.

Собственно стерилизация

Умерщвление микроорганизмов всех видов, находящихся на всех стадиях раз­вития: патогенных и непатогенных, в том числе спорообразующих, обладающих вы­сокой чувствительностью к конкретному стерилизующему средству. Стерилизации подвергают все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирую­щие с кровью или инъекционными препаратами, и отдельные виды медицинских инструментов, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой обо­лочкой и могут вызвать ее повреждение. Методы стерилизации

1. Физические:

а) паровой метод;

б) сухожаровой метод;

в) ультразвуковой метод;

г) метод инфракрасного облучения;

д) радиационный метод.

2. Химические:

а) газовый метод (формальдегид);

б) растворами химических веществ (холодная стерилизация).

В стоматологии, как и в общей хирургии, применяются следующие основные способы стерилизации:

1) кипячение;

2) паром под давлением;

3) сухожаровая;

4) холодная (химическая).

Стерилизация паром

В паровых и электрических автоклавах под давлением стерилизуют перевязоч­ный материал, белье, ватные шарики, турунды. Обычно материал до стерилизации упаковывают в биксы или мешки. Срок хранения материала после стерилизации не более 3-х суток.

Химическая стерилизация

Под методами химической (холодной) стерилизации понимают стерилизацию с помощью окиси этилена, 6 % раствора перекиси водорода, надуксусной кислоты.

Холодной стерилизации подвергают режущие инструменты и стоматологиче­ские зеркала.

Сухожаровая стерилизация

Сухожаровую стерилизацию применяют для обезвреживания цельнометалличе­ских инструментов в течение 40 мин, из которых 25 мин. необходимо для нагревания до заданной температуры и 15 мин – для обезвреживания при t 180°.

Инструменты стерилизуются в лотках (без упаковки) или в пакетах крафт-бумаги.

Кипячение

Кипячение в воде, даже в растворе натрия бикарбоната, не обеспечивает полно­го уничтожения микроорганизмов и поэтом)' не может быть отнесено с современ­ных позиций к способам стерилизации.

Контроль стерилизации

При стерилизации используют средства физического и химического контроля, параметров работы паровых и воздушных стерилизаторов (термометр, максималь­ный термометр, манометр, химические тесты). При достижении заданной темпера­туры химическое соединение в запаянных трубках должно быть полностью рас­плавлено и равномерно окрашено.

Обнаружение после стерилизации нерасплавленного теста и превышение пре­дельных отклонений температуры от номинального значения указывают на несо­блюдение температурного параметра режима стерилизации. В этом случае стерили­зацию следует повторить с закладыванием новых контрольных тестов.

По окончании стерилизации изделия выгружают из стерилизаторов в стериль­ной зоне стерилизационной и перевозят на склад для стерильных изделий. На каж­дой стерилизационной коробке со стерильным материалом должна быть бирка, на которой указана дата стерилизации.

Срок хранения стерильных инструментов 3 суток.

Профилактика вирусного гепатита и СПИДа

Изделия медицинского назначения, используемые при проведении гнойных операций или оперативных вмешательствах у инфекционных больных, а также лиц, перенесших гепатит В и являющихся носителями НВ-антигена, перед предстерилизационной очисткой подвергаются дезинфекции (см. табл.).

 

Дезинфекция изделий при туберкулезе,

вирусном гепатите и гнойных инфекциях

 

 

 

Дезинфицирующий агент	Инфекция
гнойные и кишечно-капельные	вирусный гепатит	туберкулез
%	время (мин)	%	время (мин)	%	время (мин)
Хлорамин
Перекись водорода
Формалин

 

После дезинфекции все изделия промываются в проточной воде до полного ис­чезновения запаха дезинфицирующего раствора. Дезинфицирующий раствор при­меняется однократно. Все манипуляции, при которых может произойти загрязнение рук кровью или сывороткой, следует производить в резиновых перчатках.

ВИЧ-дезинфектанты (ВОЗ, 1986):

Спирт этиловый 70 % – 10 мин, 50 % – 12 мин;

Спирт пропиловый 70 % – 1 мин, этиловый с ацетоном 1: 1-10 мин;

Хлоргексидин 4 % – 5 мин, 3 % – 10 мин;

Глпохлорид натрия 0, 5 % – 1 мин, 0, 1 % – 10 мин;

Перекись водорода 3 % – 1 мин, 0, 3 % – 10 мин;

Формальдегид 0, 2 % – 5 мин, 2 % – 1 мин;

Фенол 5 % – 1 мин;

Лизол 0, 5 % – 10 мин;

Параформальдегид 0, 6 % – 25 мин;

Поливенил пиралидон 10 % – 1 мин;

Хлорамина, 40 % формальдегид 1: 1-10 часов (для зеркал). Во время работы все повреждения на руках должны быть закрыты напальч­никами, лейкопластырем. При угрозе разбрызгивания крови или сыворотки следует работать в масках и защитных очках.

Разборку, мойку и прополаскивание медицинского инструментария, использо­ванных пипеток и лабораторной посуды, приборов и аппаратов, соприкасавшихся с кровью или сывороткой больных, нужно проводить после предварительной дезин­фекции в резиновых перчатках.

Следует строго соблюдать правила личной гигиены. После любой процедуры, в том числе парентерального вмешательства (удаления зуба, инъекции, забора крови и т.п.), проводится тщательное двукратное мытье рук в теплой проточной воде с мы­лом. Руки необходимо вытирать индивидуальным полотенцем, сменяемым еже­дневно, или салфеткой одноразового использования. При обработке рук следует из­бегать частого применения дезинфектантов, которые способны вызвать раздражение кожи и дерматиты, что облегчает проникновение возбудителя.

В случае загрязнения рук кровью следует немедленно обработать их тампоном, смоченным дезинфицирующим раствором (1 % раствор хлорамина), и вымыть их двукратно теплой проточной водой с мылом, насухо вытереть индивидуальным по­лотенцем или салфеткой одноразового использования.

Временно отстраняются от работы стоматологи, операционные и процедурные сестры и т.п., имеющие нарушения целостности кожных покровов рук.

Уборка стоматологического кабинета

При работе в кабинетах терапевтической стоматологии с амальгамой 1 раз в месяц проводят особую уборку, заключающуюся в обработке всего помещения, ме­бели и оборудования подкисленным раствором перманганата калия путем пульвери­зации или протирания ветошью. Через час все протирается насухо, использованный материал удаляется в мусоросборник. Также убираются лотки и плевательницы.

Спуск в канализацию воды, содержащей ртуть, без специальных сифонов запре­щается. Очистка сифонов от ртути должна производиться 1 раз в 3-4 месяца. Уборку стоматологических кабинетов проводят влажным способом не реже 2-х раз в день с использованием ранее упоминавшихся дезинфектантов. После дезинфекции помещение облучают бактерицидными лампами.

 

Стерилизация стоматологического инструментария

 

Наименование изделий	Дезинфекция	Предстерилизационная очистка	Стерилизация
Пульпоэкстракторы, бо­ры, дрильборы, канало-наполнители, иглы кор­невые, бурава, диски сепарационные, камни, скальпели, ножницы, иглы инъекционные, шприцы хирургические, терапевти­ческие, ортопедические на­боры, почкообразные ло­точки, чашки. Петри для хранения мелкого стери­льного инструментария.	Хлорамин 3 % – 60 мин. пе­рекись водорода 4 % – 90 мин или 6 % – 60 мин.	Согласно Осту пли кипячение в 2 % со­довом растворе в дистиллированной воде 15 минут	Правовой метод 12С/-45 мин. 132°-20 мин. Воздушный метод 180°-60 мин. 160°-150 мин.
Наконечники, наконеч­ники турбинные, ключи для фиксации бора, пис­толеты для гидромассажа и промывания полости зубов, стоматологические установки.	2-кратное про­тирание 1 % рас­твором хлорами­на с интервалом 1 5 мни или 0.5 % раствором в 70° спирте с интер­валом 5-10 мин.
Тубусы, электроды, стек­лянные электроды для ап­парата Дарсенваля	3 % р-р хлорами­на-60 мин.		Кипячение в дистиллированной во­де с 2 % раствором соды 1 5 мин.
Резиновые перчатки	3% р-р хлорами­на – 60 мин.	Предстерилизаци-онная очистка	Стерилизация в па­ровом стерилизато­ре при 120°-45 мин.
Стоматологические зеркала	4% р-р перекиси водорода 1, 5 часа + моющий р-р		Стерилизация в па­ровых стерилизато­рах согласно ОСТу при 132°-20 мин. при 120°-45 мин.

Контрольные вопросы

 

1. Методы обработки стоматологических инструментов:

– дезинфекция;

– предстерилизационная очистка;

– стерилизация.

2. Перечень инструментов, проходящих различную стерилизацию (сухо-воз­душную, кипячение, холодную и т.д.).

3. Уборка и дезинфекция помещений терапевтического отделения поликлиники.

4. Методы контроля стерильности инструментов.

5. Особенности обработки инструментов после приема больных, инфицирован­ных ВИЧ-инфекцией и вирусом гепатита.

6. Меры защиты медицинского персонала от инфицирования.

Тестовые задания

1. Режим стерилизации стоматологических инструментов в сухожаровом шкафу проводится:

а) при температуре 140 С 45 мин;

б) при температуре 160 °С 150 мин;

в) при температуре 180 °С 60 мин.

2. Перевязочный материал стерилизуется методом:

а) паром под давлением (автоклавирование);

б) сухожаровым;

в) кипячением.

3. Стерильность материала после стерилизации сохраняется в течение:

а) 4 суток;

б) 1 суток;

в) 3 суток;

г) 2 суток.

4. Дезинфекцию зеркал проводят:

а) 6 % р-р перекиси водорода 60 мин;

б) 1 % р-р хлорамина;

в) 3 % р-р перекиси водорода 15 мин.

5. Наконечники стерилизуют:

а) двукратной обработкой 1 % р-ром хлорамина;

б) кипячением 15 мин в вазелиновом масле;

в) сухожаровым методом;

г) автоклавированием.

6. Обработка инструментов начинается с:

а) мойки щеткой в проточной воде;

б) дезинфекции;

в) стерилизации.

7. При правильном режиме стерилизации в сухожаровом шкафу термоиндика­тор окрашивается:

а) в зеленый цвет;

б) в красный цвет;

в) в коричневый цвет.

8. С помощью бензидиновой пробы проверяют:

а) стерильность инструментов;

б) наличие остатков крови;

в) наличие остатков моющих средств.

9. Холодной стерилизации подвергаются:

а) боры, эндодонтические инструменты, зонд, пинцет, гладилка;

б) зеркала, режущие инструменты.

10. С помощью бензидиновой пробы проверяют:

а) стерильность инструментов;

б) наличие остатков крови;

в) наличие остатков моющих средств.

10. С помощью аминодопириновой пробы проверяют:

а) стерильность инструментов;

б) наличие остатков крови;

в) наличие остатков моющих средств.

 

Ситуационные задачи

Задача I. После предстерилизационной обработки при проведении бензидино­вой пробы на инструментах появилось сине-зеленое окрашивание. О чем это гово­рит? Ваша тактика.

Задача 2. При проведении фенолфталеиновой пробы появилось розовое окра­шивание. На что это указывает? Ваши действия.

Задача 3. После предстерилизационной обработки амидопириновая проба дала сине-фиолетовое окрашивание. Инструменты повторно были промыты водой и под­верглись дальнейшим этапам стерилизации. Какая ошибка допущена? Что необхо­димо было предпринять.

Задача 4, После стерилизации инструмента в сухожаровом шкафу полоска ин­дикатора не соответствовала эталону. На что это указывает?

 

⇐ Предыдущая1234567Следующая ⇒

Поделиться:

Популярное:

1. A.16.15.3. Экран принудительной изоляции для использования в депо
2. A.19. Противопожарная система
3. A.32.4.5.3. Система УСАВП: тест управления рекуперативным торможением
4. Cинтетический учет поступления основных средств, в зависимости от направления приобретения
5. Cмыкание с декоративно-прикладным искусством
6. E) Ценность, приносящая доход, депозит.
7. F) объема производства при отсутствии циклической безработицы
8. F) показывает, во сколько раз увеличивается денежная масса при прохождении через банковскую систему
9. F)по критерию максимизации прироста чистой рентабельности собственного капитала
10. G) осуществляется за счет привлечения дополнительных ресурсов
11. H) Такая фаза круговорота, где устанавливаются количественные соотношения, прежде всего при производстве разных благ в соответствии с видами человеческих потребностей.
12. H)результатов неэффективной финансовой политики по привлечению капитала и заемных средств