Опыт 1. Слюноотделение у собак на кормовые и отвергаемые вещества.

⇐ ПредыдущаяСтр 2 из 5Следующая ⇒

ДЛЯ РАБОТЫ НЕОБХОДИМО: Собака с выведенными протоками слюнных желез, пробирка или соска для сбора слюны, слюнная воронка, градуированный цилиндрик, штатив с пробирками, секундомер, электроплитка, ножницы, Менделеевская замазка, вата. Хлеб, хлеб влажный, сухари, мясо, 0, 2% HCL.

Опыт проводится на собаке с выведенным протоком слюнной железы, после 15-18 часового голодания животного.

ХОД РАБОТЫ: Животное фиксируют в станке и прикрепляют воронку к щеке в месте выведенного протока. Вначале проводят поддразнивание кормом в течение 2 минут (обеспечивают животному возможность видеть и обонять корм) и наблюдают за выделением слюны.

Затем животному скармливают различные корма и дают отвергаемое вещество (табл.).

№ п/п	Вид кормового раздражителя	Вес, г	Количество выделившейся слюны, мл
	Сухари
	Хлеб обыкновенный
	Хлеб влажный
	Мясо		4-5
	Отвергаемое вещество0, 2% р-р HCl	по 5 мл с интервалами 30 сек

При этом учитывают количество выделяемой слюны на каждый раздражитель. Слюна собирается в течение 2 минут. Очередной раздражитель дается после того, как прекратится слюноотделение на предыдущий.

Выводы: сделать заключение о механизме и особенностях выделения слюны на различные раздражители.

Зарисовать рефлекторную дугу слюновыделительного процесса.

Тема

Ферментативная активсность слюны

Опыт 1. Ферменты слюны и условия ферментативного расщепления.

ЦЕЛЬ РАБОТЫ: Обнаружение ферментов слюны, исследование глубины расщепления перевариваемого субстрата под влиянием ферментов и выяснение условий, необходимых для оптимального действия ферментов.

ДЛЯ РАБОТЫ НЕОБХОДИМО: слюна человека, слюна собаки, 1% крахмальный клейстер, р-р Люголя, 0, 5% р-р НСl, спиртовка, штатив с пробирками, дистилированная вода, стаканы со льдом, водяная баня, карандаш по стеклу, термометр, пипетки на 5 и 10 мл, глазные пипетки, спички, резинки.

ХОД РАБОТЫ. Приготовить и пронумеровать 5 пробирок. Затем налить в 1-ю пробирку – 3 мл слюны человека + 3 мл 0, 5% р-ра НС1 + 5 мл крахмального клейстера. Во 2-ю – 3 мл прокипяченной слюны человека + 5 мл крахмального клейстера. В 5-ю – 3 мл слюны собаки + 5 мл крахмального клейстера. После этого 1, 2 и 5-ю пробирки поставить в водяную баню при температуре 37-40° С.

В 4-ю пробирку налить 3 мл слюны человека и в отдельную пробирку 5 мл крахмального клейстера, поставить на лед, а после охлаждения смешать. В 3-ю пробирку добавить 5 мл крахмального клейстера, содержимое перемешать, а затем через каждую минуту отливать немного содержимого в отдельные пробирки и добавлять по 1-3 капли р-ра Люголя. При наличии крахмала жидкость окрашивается в синий цвет. Пробы разных порций будут давать лиловое, красное и, наконец, слегка желтоватое окрашивание – конец реакции. Затем к содержимому 1-й, 2-й, 4-й и 5-й пробирки добавить по 2-3 капли р-ра Люголя. Синий цвет указывает на наличие амилодекстрина, красный – эритродекстрина. Отсутствие красного цвета указывает на наличие ахродекстрина, мальтозы и глюкозы.

Выводы:

В 1-й пробирке – расщепления не было, так как добавляли соляную кислоту.

Во 2-й пробирке – расщепления не было, так как была проведена термическая обработка.

В 4-й пробирке – расщепления не было, так как содержимое (слюна и крахмальный клейстер) охладили.

В 5-й пробирке – расщепления не было, так как в слюне собаки нет амилазы, расщепляющей углеводы (крахмал).

Тема

Ферменты и соляная кислота желудочного сока

Опыт 1. Определение кислотности желудочного сока.

ЦЕЛЬ РАБОТЫ. Ознакомить с формами выражения кислотности желудочного сока и овладеть методикой определения кислотности.

ДЛЯ РАБОТЫ НЕОБХОДИМО: Желудочный сок, 0, 5%-ный спиртовой раствор диметиламидоазобензола, 1% фенолфталеина, 0, 1 н раствор едкого натра, химические стаканчики, бюретки для титрования, пипетки на 5 мл и глазные пипетки.

ХОД РАБОТЫ. В колбу отмеряют 5 мл желудочного сока добавить 2-3 капли диметиламидоазобензола и 1-2 капли фенолфталеина. Жидкость приобретает красный цвет. Затем проводят титрование 0, 1 н раствором едкого натра. Цвет жидкости изменяется, сначала он становится желто-розовый, далее желтый и наконец, приобретает стойкий розовый оттенок.

Количество 0, 1 н р-р NaOH, пошедшего на титрование до желто-розового цвета соответствует свободной HCl.

Количество 0, 1 н р-р NaOH, пошедшего на титрование от желто-розового цвета до стойкого розового цвета соответствует связанной HCl и кислореагирующими продуктами.

Количество 0, 1 н р-р NaOH, пошедшего от начала титрование до стойкого розового цвета будет соответствовать общей кислотности желудочного сока.

Известно, что 1 мл 0, 1 н р-ра щелочи нейтрализует 1 мл 0, 1 н р-ра соляной кислоты. Он содержит 0, 00365 г соляной кислоты.

Следовательно, процент свободной соляной кислоты узнают умножением числа мл 0, 1 н в 100 мл NaOH, пошедший на нейтрализацию соляной кислоты в 100 мл желудочного сока на показатель 0, 00365.

Примерный расчет

Кол-во	Индикатор	До цвета	Нейтрализация кислот	Расход 0, 1 н р-р NaOH мл	Свободн. HCl в жел.соке в %
На5 мл жел.сока	На 100 мл жел.сока
5 мл	Диаметиламидоазобензол	Желто-розового	Свободная HCl	5, 2	104, 0	0, 3796
	Фенолфталеин	Стойко-розового	Связанная HCl и кислореагирующие продукты	0, 3	6, 0
			Общая кислотность	5, 5	110, 0

Опыт 2. Определение протеолитической активности желудочного сока.

ЦЕЛЬ ОПЫТА.Освоить методику определения протеолитической активности желудочного сока и выяснить условия оптимального действия ферментов.

ПРИБОРЫ И МАТЕРИАЛЫ: штативы с пробирками, пипетки, водяная баня с термометром, спиртовка, вата.

РЕАКТИВЫ: желудочный сок, 0, 25%-й раствор НCl, 2%-й раствор соды, куриный белок, 10%-й раствор NaOH, 1%-й раствор сернокислой меди.

Для работы желудочный сок берут либо натуральный, либо готовят искусственный. Для этого 2 г пепсина растворяют в 100 мл 0, 25%-го раствора НCl.

ХОД РАБОТЫ: берут 4 пробирки и подготавливают их следующим образом.

В пробирку №1 наливают 2 мл желудочного сока и добавляют 0, 5 мл куриного белка.

В пробирку №2 наливают 2 мл желудочного сока, кипятят его, охлаждают и добавляют 0, 5 мл куриного белка.

В пробирку №3 наливают 2 мл желудочного сока, нейтрализуют его содой (2 мл 2%-го раствора соды) и добавляют 0, 5 мл куриного белка.

В пробирку №4 наливают 2 мл 0, 25%-го раствора НCl и добавляют 0, 5 мл куриного белка.

Все пробирки помещают в водяную баню 38-40⁰С на 30-40 минут. По истечении этого времени пробирки вынимают, охлаждают под струей воды и проводят реакцию с содержимым на наличие в них продуктов гидролиза белка, поставив биуретовую реакцию.

Для этого в каждую опытную пробирку добавляют по 1 мл 10%-го раствора NaOH и 4-5 капель 1%-го раствора сернокислой меди, взбалтывают. При наличии белка появляется сине-фиолетовое окрашивание, при наличии смеси пептидов – розово-фиолетовое или розовое (разных оттенков), в зависимости от степени гидролиза белка.

В пробирке №1 жидкость окрасится в фиолетово-розовый или розовый цвет. В пробирках №2, №3 и №4 жидкость приобретает фиолетово-синюю окраску, что свидетельствует о нерасщеплении белка.

Сделать выводы о наличии протеолитических ферментов в желудочном соке и условиях ферментативного расщепления

Тема

Пищеварение у жвачных

Опыт 1. Запись движения рубца у овцы (руменограмма)

ЦЕЛЬ ОПЫТА: изучить моторную деятельность рубца жвачных животных до и после приема корма баллонографическим методом.

ДЛЯ РАБОТЫ НЕОБХОДИМО: овца с фистулой рубца, резиновый баллончик, кимограф, капсула Марея, станок для фиксации, 100гр хлеба или картофеля.

ХОД РАБОТЫ. Животное ставят в станок и фиксируют. В рубец через фистулу вводят резиновый баллончик, соединенный резиновой трубкой с капсулой Марея. Всю систему (баллончик, резиновые трубки и капсулу Марея) заполняют воздухом. Перо капсулы Марея присоединяют к закопченной ленте кимографа и в течение 5-10 мин записывают руменограмму в состоянии покоя животного, во время жвачки и при даче 100 г хлеба или сочного корма. Угнетение моторики наблюдается при нанесении болевого раздражения. Записать руменограмму и выводы.

⇐ Предыдущая 123 4 5 Следующая ⇒