Лабораторная диагностика, профилактика и лечение дифтерии.

Лабораторная диагностика. Так как заболевание связано с действием токсина, то основным

экспресс-методом диагностики является выявление токсина, парал-лельно ведутся традиционные методы исследования.

Проводят выявление токсина в фильтрате исследуемого материа-ла (пленки, ткани трупа) или материала после 4-5-часового подращи-

вания бактерий в сывороточном бульоне. С этой целью можно ста-вить реакцию коагглютинации со стафилококковым антительным

противодифтерийным диагностикумом.С этой же целью можно ставить РПГА, ИФА и ПЦР и ДНК-зонды для обнаружения гена tox в бактериальной хромосоме. Исполь-зуют также заражение куриных эмбрионов, наблюдают их гибель приналичии токсина. При заражении культур клеток Vero дифтерийныйтоксин дает ЦПД (цитопатическое действие). В реакции нейтрализа-ции идентифицируют вид токсина.

Бактериоскопический метод. В мазке из слизи зева и фибриноз-ного налета при окраске по Нейссеру выявляют типичную морфоло-

гию возбудителя и явление метахромазии. Можно окрашивать препа-рат корифосфином и изучать препарат в люминесцентном микроскопе

(оранжево-красное свечение).В остром периоде заболевания за счет антагонистическихсвойств возбудителя коринебактерии видны прямо в мазке при мик-роскопии практически в чистой культуре.

Бактериологический метод – засевают материал на сывороточ-ный агар и другие селективные среды (Клауберга, Тинсдаля и кровя-

ной агар, т.к. некоторые штаммы дифтерийного возбудителя не растутпри наличии теллура). Идентифицируют возбудителя по культураль-

ным, морфологическим, биохимическим свойствам и токсигенности, которую определяют методом иммунопреципитации. Для этого на

чашку с сывороточным агаром накладывают фильтровальную бумагу, смоченную антитоксической противодифтерийной сывороткой, а во-

круг на расстоянии 1, 5 см сеют выделенные и идентифицированныедифтерийные культуры. Если культура выделяет экзотоксин, то ондиффундирует в среду, и на месте встречи с антителами видны линиипреципитации.При идентификации культуры в бактериологическом методенеобходима дифференциация возбудителя дифтерии от других кори-небактерий, которые могут вызывать дифтериеподобные заболеванияили просто находиться в слизи зева.Серологический метод используют при стертых формах для ре-

троспективной диагностики или для выявления неиммунной прослой-ки населения. С этой целью ставят РПГА, ИФА и реакцию нейтрали-

зации токсина в культуре клеток Vero.Профилактика. Неспецифическая: проводят изоляцию и лечениебольных, санацию носителей антибиотиками, дезинфекцию в очаге.Специфическая профилактика – с трех месяцев после рождения

детям вводят вакцину АКДС 3 раза с интервалом в 45 дней. Ревакци-нация через 1, 5-2 года, вводят АКДС, или АДС-М, или АД (адсорби-рованный дифтерийный анатоксин) по схеме. При низком титре анти-тел (менее 1: 40 в РПГА или 0, 03 мE/мл в реакции флоккуляции) поэпидемическим показаниям проводят ревакцинацию. К группам рискадля вакцинации в РБ относят не только детей, но и взрослое населе-ние с низким уровнем (менее 1: 40) антитоксических антител.Лечение. Антитоксическая противодифтерийная сывороткаприменяется в ранние сроки. Ее вводят по методу Безредки (дробно, постепенно увеличивают дозу). Параллельно используют антибиоти-

ки, глюкозу, витамины, антигистаминные препараты.

 

Бордетеллы: таксономия, свойства, факторы патогенности, роль в патологии человека.

Возбудитель относится к семейству Alcaligenaceae, роду Bordetella, виды: В.pertussis – вызывает коклюш; В.parapertusis – па-ракоклюш; В.bronchiseptica – вызывает острые респираторные заболе-вания.

Культуральные свойства. Строгие аэробы, каталазо-положительны, прихотливы к питательным средам. Нуждаются в фак-торах роста. В среды добавляют аминокислоты, кровь, уголь, ионооб-меные смолы, никотиновую кислоту, цистеин, метионин.Лучшими средами являются глицерино-картофельно-кровянойагар (среда Борде-Жангу); КУА (казеиново-угольный агар). Уголь икровь добавляют в среды для адсорбции жирных кислот, которые об-разуются в процессе роста бордетелл. На этих средах возбудитель коклюша образует колонии в виде капелек ртути, паракоклюша – коричневые колонии.Скорость роста – 48-72 часа.Возбудители коклюша диссоциируют на 4 типа: I – вирулентныебордетеллы, S -формы, имеют пили; II и III – RS-формы (переход-ные); IV – авирулентные R -формы, пили отсутствуют.

Биохимические свойства слабо выражены. Белки и углеводы неразлагают. Имеют фермент аденилатциклазу.Бордетеллы чувствительны к температуре, солнечным лучам, кфенолу, лизолу.

Факторы патогенности В.pertussi: имеет специфический трахе-альный цитотоксин, вызывающий гибель и слущивание мерцательно-

го эпителия, имеет небелковую природу – это продукт синтеза итрансформации муреина (активатор вторичных месенджеров); другой

- термолабильный белковый токсин представлен двумя субъединица-ми: А – собственно токсин, В – действует на АДФ-

рибозилтрансферазу. Мишень действия – g-белки обеспечивают кон-такт А-фракции с цитоплазмой клетки.Имеется дермонекротический токсин (вторичный месенджер), оказывает дейтсвие на диамедазу, мишень действия – Rho-g-белки, под воздействием токсина происходит модификация Rho-белков, ко-торая заключается в дезаминировании отстатка глютамина с образо-ванием глютаминовой кислоты, образуется активный Rho-белок, неспособный гидролизовать ГТФ (АДФ); микроворсинки обеспечиваютадгезию к мерцательному эпителию; филаментозный гемагглютининсвязывается с глилипидами мембран клеток мерцательного эпителияи с CR3 гликопротеиновым рецептором поверхности полиморфно-ядерных лейкоцитов и инициирует фагоцитоз; эндотоксин (ЛПС) ак-тивирует комплемент и стимулирует выработку цитокинов; аденилат-циклаза подавляет активность фагоцитов и миграцию моноцитов.

 

Лабораторная диагностика, профилактика и лечение коклюша.

Лабораторная диагностика

Материал для исследования: слизь задней стенки носоглотки, взятая тампоном. При наличии кашля применяют метод «кашлевых

пластинок».Идентификацию возбудителя проводят по морфологическим, культуральным, антигенным (с О-агглютинирующими сыворотками к1, 14, 12 и 7 антигенам или в РИФ с антителами, меченными флюо-ресцеином) и биохимическим свойствам. Параллельно возбудителя

коклюша дифференцируют от других видов бордетелл (см. табл. 12).B. рarapertussis дают рост на МПА в виде коричневых колоний, выделяют уреазу, используют цитрат, оксидазный тест отрицатель-ный, не имеют капсул, агглютинируются антисывороткой к антигену14.B. рertussis растут только на специальных средах, на КУА – в ви-де капелек ртути.Имеют капсулу, гемолиз на кровяном агаре, положительнаявнутрикожная проба. Агглютинируются с сывороткой к антигену 1. B.bronchiseptica – подвижны, агглютинируются сывороткой к антигену12. Остальные свойства как у B. parapertussis.Серологический метод – выявляют антитела в парных сыворотках больного, начиная со II периода заболевания в реакции агглютина-ции, РСК, РПГА или ИФА. Определяют также IgG и IgA против фи-ламентозного гемагглютина и против токсина B. рertussis.Аллергическая кожная проба – учет проводится через 20-24 ча-

са (ПЧЗТ). Профилактика. Неспецифическая включает изоляцию и лечениебольных.

Осуществляют введение иммуноглобулинов направленного дей-ствия контактным, организуют карантин на 14 дней для детей до 7

лет.Для специфической профилактики применяют АКДС (ассоцииро-ванную коклюшно-дифтерийную столбнячную вакцину) с 3-х-месячного возраста 3 раза с интервалом 45 дней. Ревакцинация моно-вакциной из убитых коклюшных бактерий в I фазе. Испытывается

вакцина, состоящая из коклюшного анатоксина, гемагглютинина, пертактина (мембранный протеин) и антигена микроворсинок. Эту

вакцину можно применять и для ревакцинации, и для первичной вак-цинации.Для лечения применяют антибиотики – гентамицин, ампициллин, а также препараты иммуноглобулинов, витамины.

 

⇐ Предыдущая78910111213141516Следующая ⇒

Поделиться: