Как правило менингит вызывается одним микроорганизмом.

При вторичных менингитах, обусловленных гнойно-воспалительными процессами

Различной локализации(отит, синусит, абсцессы) необходимо провести микробиологическое

Исследование этого очага.

Исследование жидкости из стерильных полостей

Взятие материала:

Исследуют плевральную, перитонеальную(асцитическую), синовиальную и перикардиальную

жидкости.

-Чрескожную пункцию и аспирацию осуществляет врач с соблюдением правил асептики.

-Обрабатывают кожу в области пункции 70% спиртом и затем дезинфицируют 1-2% йодным

раствором, который поле взятия удаляют 70% раствором этилового спирта.

-Жидкость переносят в анаэробную транспортную среду или отправляют ее на исследование в

шприце, предварительно сняв(или загнув) иглу и надев на канюлю шприца защитный стерильный

колпачок.Избыток жидкости или гной транспортируют в стерильных контейнерах с завинчиваю-

щейся крышкой.

-При большом количестве жидкости можно производить посев во флаконы со средой для гемокультур(в объемном соотношении 1: 10)

-Для выделения аэробных бактерий требуется 1-5 мл

-Для выделения анаэробных бактерий 1-5 мл и используют анаэробную транспортную систему.

Проведение исследования

Центрифугирование объемов жидкости > 5 мл в стерильных пробирках15-30 мин. при 2500-3500

оборотах/мин.

С соблюдением правил асептики собирают пастеровской пипеткой отдельно надосадочную жид-

кость и осадок.

Из осадка готовят тонкий мазок и окрашивают его по Граму.

Посевы осуществляют на кровяной и шоколадный агар(инкубация 18-24 часа в атмосфере 5-7%

СО₂), а также неселективный анаэробный агар (Агар Цейсслера)-инкубация в анаэробных усло-

виях при 35⁰ С 48 часов), а также тиогликолевую среду с добавлением 10% кроличьей сыворотки

или сывороткой крупного рогатого скота.

Результаты посевов исследуют ежедневно.

При отсутствии роста на плотных средах и наличии роста на ТИО, делают высевы на плотные

питательные среды.

 

 

Исследование мочи

Показания к исследованию:

Инфекции МВП(циститы, пиелонефриты)

Бессимптомная бактериурия

Моча здорового человека в норме стерильна.

Этиология

70-95% осложненных и неосложненных ИМВП- Е.соli, реже-другие энтеробактерии(Proteus

Spp., Klebsiella spp.)

При внутрибольничных инфекциях спектр патогенов расширяется-Pseudomonas aeruginosa.

Enterococcus spp., Citrobacter spp., Staphylococcus aureus.

Сомнительные возбудители-представители микрофлоры кожи-КНС, Грам(+) палочки, зеленя

Щие стрептококки.(Контаминация при сборе мочи)

Для диагностики ИМП важно определить количество бактерий, обнаруженных в мочевыводящих

путях.

Ранее принятая концепция фиксированной величины «Значимой» бактериурии ≥ 10⁵ КОЕ/мл не

может быть применима ко всем ИМП(инфекции мочевыводящих путей)

 

Взятие материала

 

Взятие образца должно быть выполнено:

До начала антибиотикотерапии или в интервалах между курсами лечения.

Наиболее часто-образцом для исследования является средняя порция свободно выпущенной пер-

вой утренней мочи в объеме 3-5 мл после соответствующей гигиенической подготовки, позво- ляющей минимизировать контаминацию образца.

Первая порция мочи всегда контаминирована микрофлорой уретры.

Применение сред накопления не допускается.***

Наиболее достоверные результаты могут быть получены при сборе утренней мочи.Образец должен быть получен после ночного отдыха до завтрака.Во время ночного отдыха происхо- дит концентрация мочи в мочевом пузыре и делается возможным размножение бактерий в моче.

Другие способы забора мочи:

-Через катетер ( у тяжелыхбольных)

-Посредством надлобковой пункции мочевого пузыря

-Через постоперационную уростому

-Либо с использованием специальных сборников мочи

 

Образцы должны быть доставлены в течение 2 часов, при невозможности доставки в эти сроки допускается хранение образца в холодильнике при температуре +4⁰ С. не более 12 часов.

Проведение исследования.

Исследование направлено на выделение возбудителя и определение степени бактериурии.

Основные питательные среды:

Питательный агар*** (приказ №535)

5% кровяной агар –на нем определяется степень бактериурии.

Посев методом секторных посевов.

Платиновой петлей диаметром 2 мм и емкостью 0, 005 мл производят посев мочи(30-40 штрихов

на сектор А, после этого петлю прожигают и производят посев из сектора А в сектор I, и аналогич-

ным образом из сектора I во II и из II в III.Инкубация 37⁰ С 18-24 часа.

Учет по количеству колоний выросших на секторах, согласно таблице высчитывают обсеменен-

ность на 1 мл мочи.

Данный метод не толькопозволяет определить степнеь бактериурии, но и выделить возбудитель в

чистой культуре.

При латентном течении уроинфекции, а также после лечения антибактериальными препаратами

рекомендуется производить посев 0, 1 мл цельной мочи на плотные питательные среды и в пробир-

ку с 0, 25% сахарным бульоном.Инкубация 37⁰ С 18-24 часа.

При отсутствии роста на 5% кровяном агаре чашки выдерживают 3 суток в термостате.Из сахарно-

го бульона делают высев на чашки с кровяным агаром.

Качество исследования повышается при использовании для посевадполнительных селективных

сред для выделения энтеробактерий и энтерококков(среда Эндо, Левина, среда Мак-Конки, желчно-

щелочной агар), а также дрожжеподобных и мицелиальных грибов (среда Сабуро).

Использование хромогенных агаров типа «Уроселектагара».

На селективные среды посев штрихом, может быть засеяно 2 образца.

Идентификация выделенных микроорганизмов проводится с использованием традиционных мето-

дов и тест-систем.

Согласно приказу №535:

1) бактериурия< 10³ КОЕ/мл ---отсутствие воспалительного процесса

2) бактериурия=10⁴ КОЕ/мл ---- сомнительный результат, исследование повторить.

3) бактериурия> 10⁵ КОЕ/мл ----указывает на наличие воспалительного процесса.

При наличии катетера:

бактериурия=10⁴ КОЕ/мл- при наличии клинических проявлений имеет значение

бактериурия> 10⁵ КОЕ/мл -даже при отсутствии клинических проявлений имеет значение.

В образцах мочи, полученных путем надлобковой пункции, этиологическое значение имеет

любая степень бактериурии.

В случае выделения двух микроорганизмов клиническое значение каждого оценивается, исходя

из количества, степени патогенности и частоты выделения.

Учитывается также выделение монокультуры в сочетании с высокой степенью бактериурии-острый процесс.

При хронических процессах-микробные ассоциации и низкая степень бактериурии.

Возможно использование ускоренных методов диагностики-системы Uricult/-DUO

 

Микробиологические методы исследования отделяемого дыхательных путей.

Возбудители:

Streptococcus pneumoniaе

Streptococcus pyogenes

Staphylococcus aureus

Haemophilus influanzae

Pseudomonas aeruginosa

Neisseria meningitidis

Corynebacterium diphtheriae

Klebsiella spp.

Citrobacter spp.

Proteus spp.

Candida spp.

Особенностью микробиологического исследования при инфекциях дыхательных путей является наличие нескольких микроорганизмов.

В отделяемом зева, трахеи, бронхов в норме обнаруживаются следующие микроорганизмы:

-Staphylococcus epidermidis (Эпидермальный стафилококк)

-Streptococcus «viridians» (зеленящий стрептококк)

-Neisseria spp. (непатогенные виды)

-Corynebacterium spp. (коринеформные бактерии-дифтероиды)

-Lactobacillus spp.

-Candida spp.

При носительстве могут быть обнаружены S.aureus, S.pneumoniae, S.pyogenes.

Взятие мокроты:

- Сбор материала после полоскания рта и туалета ротовой полости с целью механического удале-

Ния остатков пищи, слущенного эпителия и микрофлоры ротовой полости.

- Утреннюю мокроту, выделяющуюся во время приступа кашля собирают в стерильную банку.

Промывные воды бронхов.

- при отсутствии или скудном количестве мокроты производят смыв из бронхов физиологическим раствором, однако, при этом микробиологическая ценность снижается из-за значительного разведения. Концентрация бактерий в бронхиальном смыве в 10-1000 раз ниже, чем в мокроте.

При бронхоскопии рекомендуется вводить не более 5 мл физиологического раствора с последующей его аспирацией в стерильную пробирку.

⇐ Предыдущая1234Следующая ⇒

Поделиться: