Глотка ,ротовая полость ,нос.

Материал из ротовой полости берут натощак или через 2 часа после еды стерильным ватным тампо-

ном со слизистой оболочки или ее пораженных участков. При наличии пленки последнюю снимают пинцетом.

Материал из носа берут сухим стерильным тампоном, который вводят вглубь полости носа.

Материал из носоглотки берут стерильным заднеглоточным ватным тампоном. Тампон осторожно

вводят через носовое отверстие в носоглотку. Если при этом начинается кашель, тампон не удаляют

до его окончания.

Ход исследования.

· Микроскопия исследуемого материала.

Одновременно с посевом приготавливают мазки, окрашенные по методу Грама.

Микроскопическое исследование является важным ориентиром. По результатам микроскопии

могут быть внесены изменения в ход микробиологического исследования.

При просмотре мазков мокроты оценивают общую картину микрофлоры: наличие скоплений

грамположительных кокков, цепочек грамположительных кокков, мелких ланцетовидных

кокков, окруженных зоной неокрашенной капсулы, грамотрицательных кокков, грамотрица-

тельных палочек, псевдомицелия гриба.

При исследовании мокроты обращают внимание на наличие гранулоцитов, которые всегда

можно обнаружить при воспалительных процессах.

 

 

· Посев:

- 5% кровяной агар – основная питательная среда для посева.

- Желточно-солевой агар (среда Чистовича)

-Агар с гретой кровью (Шоколадный агар)

-Среда Эндо

- Среда Сабуро

Посев мокроты:

- Мокроту выливают в чашку Петри, с помощью стерильных игл выбирают 2-3 гнойных комочка.

- 3-хкратно отмывают в стерильном физ.растворе.

- Посев производят стеклянным стерильным шпателем, равномерно растирая материал по

по поверхности среды.

- Количественный посев – 1 мл мокроты + 9 мл питательного бульона или 2% пептонной воды и гомогенизируют в банке со стеклянными бусами 20 мин.

Готовят серийные разведения до 10 ⁷, делают высевы по 0, 1 мл из разведений 10 ⁷ , 10 ⁵, 10 ³

и 10¹ на кровяной 5% агар и агар с гретой кровью, посев на ЖСА, Эндо и Сабуро из 10¹.

Содержимое бронхов принимают за первое разведение.

- Посевы помещают в термостат при 37°С

Диагностически значимая концентрация ≥ 10⁶ для мокроты и ≥ 10⁴ для бронхиальных смывов.

Посев мазков из верхних дыхательных путей:

Посев выполняется тампоном, который втирают на небольшом участке 1х2 см, а затем штрихами

по всей поверхности питательной среды. Посевы помещают в термостат на 37⁰ С.

Просмотры посевов мокроты, отделяемого верхних дыхательных путей просматривают после 18-

24 часовой инкубации при 37⁰ С. Учитывают количество выросших колоний, соотношение отдель-

ных ассоциатов, выделяют чистые культуры и проводят их идентификацию.

Исследование отделяемого открытых инфицированных ран.

Возбудители:

Подавляющее большинство возбудителей относится к условно-патогенным бактериям.

- Грамположительные кокки: cтафилококки, стрептококки, энтерококки.

-Условно-патогенные энтеробактерии рода Klebsiella, Proteus, Citrobacter, Enterobacter, E.coli.

- Неферментирующие бактерии: Acinetobacter spp., Pseudomonas aeruginosa (синегнойная палочка)

- Листерии

- Анаэробные микроорганизмы

Микроорганизмы могут вызывать гнойный процесс как в монокультуре, так и в ассоциации.

Взятие материала.

Проводит врач с соблюдением правил асептики.

Кожу вокруг раны обрабатывают спиртом или другим антисептиком, некротические массы, тка-невой детрит и гной удаляют стерильной салфеткой.

Взятие материала стерильным тампоном производят круговыми движениями от центра к периферии поверхности раны.

Материал берут 2-мя тампонами, один- для микроскопии, другой – для бакпосева.

При наличии дренажей возможно взятие аспиратов из раны в объеме 1-2 мл.

Доставка в течение 1 часа.

Ход исследования.

· Микроскопия исследуемого материала.

Одновременно с посевом приготавливают мазки, окрашенные по методу Грама.

Микроскопическое исследование является важным ориентиром. По результатм микроскопии

Могут быть внесены изменения в ход микробиологического исследования.

· Посев:

- 5% кровяной агар – основная питательная среда

Посев производят по методу «тампон-петля»: тампоном проводится «дорожка» по диаметру

Чашки, а затем другой стороной тампона в обратном направлении. Материал рассевают по чашке при помощи петли, перпендикулярно дорожке.

- Среда для контроля стерильности (Тиогликолевая среда)

Инкубация в течение 5 суток.

Посевы помещают в термостат при 37°С

При отсутствии роста в первые сутки посевы оставляют в термостате, ежедневно просматри-

вают и при визуальном обнаружении роста также производят соответствующие отсевы.

Ответ об отсутствии роста выдают через 5 суток термостатирования.

Микробиологическое исследование отделяемого глаз.

Микробиологическое исследование проводят при заболеваниях конъюнктивы, век, слезных мешков,

роговицы.

В норме и только с конъюнктивы регулярно выделяются эпидермальные стафилококки, коринебактерии, непатогенные нейссерии.

У отдельных лиц временно могут выделяться золотистые стафилококки, зеленящие стрептококки, гемофильные бактерии, микоплазмы.

Причиной конъюнктивитов в преобладающем количестве случаев являются стафилококки: золотис-

тый стафилококк при остром конъюнктивите, эпидермальный – при хроническом.

Другими возбудителями являются:

Neisseria gonorrhoeae (гонококк)

Moraxella lacunata

Moraxella catharrhalis

Streptococcus pyogenes (пиогенный стрептококк)

Haemophilus pneumoniae (гемофильная палочка)

Pseudomonas aeruginosa (синегнойная палочка)

Энтеробактерии

Листерии

 

Материал берут с пораженных мест в разгар воспалительного процесса с соблюдением правил асептики. Не менее, чем за 5-6 часов до исследования отменяют все медикаменты и процедуры. Взятие производит врач-окулист.

В кабинете врача производят посев на тиогликолевую среду.

Исследование.

· Микроскопия исследуемого материала.

Одновременно с посевом приготавливают мазки, окрашенные по методу Грама.

Микроскопическое исследование является важным ориентиром.По результатм микроскопии

могут быть внесены изменения в ход микробиологического исследования.

· Посев:

- 5% кровяной агар – основная питательная среда

- Среда для контроля стерильности-тиогликолевая среда.

Первичные посевы на жидких питательных средах, присланные в лабораторию, помещаютв термостат при 37⁰ С.

Материал, взятый тампоном, с обильным гнойным отделяемом засевают на чашки с 5% кро-

вяным агаром и «среду для контроля стерильности»-тиогликолевую среду.

Термостатирование проводится в эксикаторе со свечой при 37⁰ С.

При наличии роста на жидкой среде делают высев на 5% кровяной агар, среду Эндо, ЖСА и

Сабуро.

Инкубация в течение 5 суток.

Микробиологическое исследование отделяемого ушей.

При воспалительных заболеваниях наружного, среднего или внутреннего уха исследуют гнойное или серозное отделяемое ушей.

В наружном слуховом проходе в норме присутствует собственная микрофлора, представленная эпидермальными стафилококками, непатогенными коринебактериями(дифтероидами).

Внутреннее и среднее ухо в норме стерильно.

Возбудители острого отита:

Staphylococcus aureus (золотистый стафилококк)

Streptococcus pyogenes (пиогенный стрептококк)

Streptococcus pneumonia (пневмококк)

Haemophilus pneumoniae (гемофильная палочка)

Corynebacterium diphtheriae (дифтерийная палочка)

Pseudomonas aeruginosa (синегнойная палочка)

Энтеробактерии

Листерии

Возбудители хронического отита:

- ассоциации грамотрицательных микроорганизмов.

-плесневые грибы Aspergillus, Penicillium, Mucor.

 

Взятие _ обработка кожи 70% спиртом с последующим промыванием физ. Раствором, взятие стерильным тампоном.

При поражении среднего уха исследуют пунктаты.

Исследование.

· Микроскопия исследуемого материала.

Одновременно с посевом приготавливают мазки, окрашенные по методу Грама.

Микроскопическое исследование является важным ориентиром.По результатм микроскопии

Могут быть внесены изменения в ход микробиологического исследования.

· Посев:

- 5% кровяной агар – основная питательная среда

- Среда для контроля стерильности- тиогликолевая среда.

- Среда Сабуро

- Шоколадный агар (при обследовании грудных детей)

Материал тщательно втирают в поверхность плотных питательных сред.

Термостатирование проводят в течение 24 ч при 37⁰ С, кровяной агар инкубируют в эксикаторе со свечой.

Посев на среде Сабуро выдерживают при 22-25⁰ С не менее 5 суток.

Посевы на тигликолевой среде -инкубация в течение 5 суток.

 

 

⇐ Предыдущая1234

Поделиться: