Таргетный скрининг и его технология

Таргетный скрининг позволяет в соответствии с выбором гена вести отбор биологически активных веществ, в частности, антимикробных препаратов с запланированным иным механизмом действия в отличие от традиционного метода (поиск, ведущийся методом от клетки к гену).

Первый этап таргетного скрининга начинается с выделения этого гена (соответствующего фрагмента ДНК) из генома. Далее, используя полимеразную цепную реакцию (ПЦР), фрагмент ДНК амплифицируется. Количество копий гена умножается. Конструируются:

1) бесклеточная система, где наработанная матрица служит для получения информационной РНК, специфичной для гена;

2) бесклеточная рибосомная система, где эта информационная РНК служит для наработки белкового продукт, кодируемого данным геном.

Следует отметить, что методика ПЦР, а также методы получения бесклеточных систем транскрипции и трансляции в настоящее время достаточно хорошо отработаны и в значительной мере автоматизированы.

Бесклеточная система, непосредственно используемая для испытания, первичного отбора и оценки активности потенциальных лекарственных веществ - ингибиторов фермента, (продукта изучаемого гена), содержит этот продукт и его субстрат (субстраты).

Когда наработан белок (продукт избранного для изучения гена), тогда возникает вопрос, как узнать функцию этого белка? Например, какую реакцию он катализирует как фермент, для того, чтобы по подавлению этой реакции отбирать ингибиторы. Если имеется близкое сходство белка с белком из " модельного" организма, подобрать бесклеточную систему - субстрат для нового белка, не является трудной задачей.

Если сходство есть, но не очень близкое, прибегают к анализу " мотивов" - коротких участков аминокислотной последовательности, которые распределены по всей длине белковой цепи при выравнивании и могут оказаться сходными у двух белков. Когда такого сходства нет, или сходство обнаружено, но нет ясности в функции самого гомолога, то есть белка, взятого для сравнения, то прибегают еще к одному пути установления функций изучаемого белка.

Устанавливают, с какими белками он контранскрибируется. Если транскрипт - часть полицистронной информационной РНК, необходимой для протекания в последующем определенного метаболического процесса с участием нескольких ферментов, тогда поиск функции изучаемого белка, включенного в группу этих ферментов, сужается.

В целом подходы к установлению функций продуктов изучаемых генов многочисленны и их разнообразие неуклонно растет. Таким образом, можно, в конечном счете, проводить серийные испытания потенциальных ингибиторов функций почти любого из тысяч генов, составляющих геном патогена и обнаруживать все возможные " уязвимые точки" микробной клетки.

Подобный путь достижения цели породил в литературе термин " обратная генетика" - исследование ведется не от клетки и ее фенотипа к гену и геному, а, наоборот, от гена к клетке, и к ее фенотипу. Что касается скрининга лекарственных веществ, осуществляемого таким путем, то он получил название " таргетного скрининга" или «скрининга по мишени».

Таргетный скрининг и его технология, схематически описанная выше, широко обсуждается в настоящее время. Неоспоримое достоинство в том, что любой ген становится доступен для ингибиторов его функций.

Однако, в отношении таргетного скрининга высказываются и критические замечания, которые не носят принципиального характера. Однако, в них отмечается, что обнаружение ингибитора таргета – это только начало пути создания антимикробного агента, пригодного для клиники. Требуется, например, чтобы это вещество проникало через оболочку микробной клетки, не подвергалось ферментативной инактивации и т.п. Тем не менее, таргетный скрининг с некоторыми его модификациями и дополнительными тестами, начинает занимать важное место в создании антимикробных лекарств.

Полное секвенирование генома в сочетании с применением методов генетической инженерии как достижение структурной геномики, вносит свой склад в фармацию еще в одном отношении. У патогенных микроорганизмов открыты гены, «существенные» для протекания инфекционного процесса, но не «существенные» при росте in vitro - на искусственных питательных средах. В последнем случае они ускользают от внимания исследователя, не поддаются идентификации и не могут быть использованы как таргеты при поиске лекарств.

После того, как эти гены были отдифференцированы - такая возможность появилась. То есть, возможность наработки, согласно описанной выше процедуре, ДНК-матрицы, соответствующей информационной РНК, затем наработка генного продукта и, наконец, отбора ингибиторов функций этого генного продукта.

Скрытые или по образному выражению " молчащие" in vitro гены патогенных микроорганизмов получили название ivi генов (генов вирулентности), несмотря на то, что в их число входят не только гены, кодирующие образование токсинов, адгезинов и других факторов вирулентности. К ним относят также гены ферментов и транспортных белков, позволяющих патогенной микробной клетке жить и размножаться в тканях макроорганизма в условиях дефицита некоторых органических веществ и неорганических ионов. Можно привести такой пример: микробная клетка находясь in vivo, испытывает недостаток ионов железа, чего не бывает на обычных питательных средах. В этом случае в клетке синтезируется специальная система транспорта железа в клетку из среды с малой его концентрацией; фактически транспорт идет против градиента концентрации. Для образования такой системы необходима экспрессия определенных генов. Из молчащих («несущественных») они становятся «существенными», то есть подавление их функций отобранными ингибиторами приведет к подавлению роста (размножения) патогена именно в условиях in vivo, т.е. в инфицированном организме. Это, собственно, и есть цель исследователей, создающих новые лекарственные препараты.

К числу генов, становящихся «существенными» для патогена именно in vivo относятся гены, кодирующие оптимальный компонентный состав системы, а также недостаток в пуринах и их предшественниках.

Вышеизложенное, конечно, не означает, что во время инфекции в клетке патогена экспрессируются только ivi гены. Большинство генов экспрессируется и in vivo и in vitro. Их продукты необходимы клетке всегда. Такие гены получили образное название " house keeping gens", что означает, " гены, на которых держится дом". Эти гены экспрессируются в любых условиях, поскольку без них клетка просто не может существовать.

Соотношение между house keeping gens и ivi gens у разных патогенных бактерий варьирует, но более 90% генов принадлежит к первой группе.

Поскольку ингибиторы house keeping gens обнаруживаются при поиске на питательных средах in vitro, практически все применяемые в клинике антибиотики и синтетические антибактериальные препараты являются ингибиторами функций именно этих генов.

Гены, кодирующие эти защитные ферменты не относятся к house keeping gens. При этом, ингибиторы беталактамаз сами почти не обладают антибактериальной активностью и применяются вместе с беталактамными антибиотиками. Последние, в свою очередь, ингибируют активность транспептидазы пептидогликана, гена принадлежащего к house keeping gens.

Таким образом, ivi гены (их продукты) составляют набор таргетов для использования их только в будущем. Также представляют значительный интерес пути выявления и выделения ivi генов с последующим их использованием в бесклеточных системах отбора ингибиторов. Работы в этом направлении ведутся в ряде лабораторий. В качестве примера приведем одну из таких работ. Ее авторы назвали свой метод IVET - данная аббревиатура означает In Vivo Expression Technology.

Геном патогенной бактерии (в данном случае речь идет о штамме Salmonella typhi murium) с помощью большого набора рестриктаз делится на сотни фрагментов. Каждый отдельный фрагмент генно-инженерными методами соединяется с лишенным промотора геном хлорамфеникол-ацетилтрансферазы.

Такой, лишенный промотора ген, не может реплицироваться при его введении в клетку. Однако, он мог реплицироваться, если соединенный с ним ген

∗ В клинике применяются ингибиторы беталактамаз (сульбактам, клавулановая кислота и др.). (подразумевается, что это фрагмент ДНК- салмонеллы) имел бы промотор для своей репликации.

Тогда, этот промотор, вызвал бы репликацию не только своего гена, но и репликацию следующего за ним гена, хотя и не имеющего промотора. Таким образом, репликация гена хлорамфеникол-ацетилтрансферазы могла происходить в клетке, только за счет использования или " захвата" чужого промотора.

На следующем этапе работы к этому сдвоенному фрагменту, (обозначенному x-cat, где x - фрагмент генома салмонеллы, а cat – ген хлорамфеникол-ацетилтрансферазы; далее присоединяется также лишенный промотора лактозный оперон (lac Z). Этот оперон нужен для системы окисления лактозы; в результате, генные инженеры получали фрагмент уже из трех частей: x-cat - lacZ. И этот фрагмент состоящий из трех разнородных частей, включался в плазмиду. Фактически в данном случае надо говорить, не об одном фрагменте, а о многих фрагментах, так как часть х, происходящая из генома салмонеллы, зависит от использованной рестриктазы и поэтому содержит разные участки генома.

Фрагменты x-cat - lacZ различаются именно по х. В результате, получился набор различных плазмид, а после введения их в клетку E.coli - набор различных штаммов E.coli с разными частями генома салмонеллы.

Следующий этап работы заключался во внедрении E.coli в организм лабораторного животного (мыши) и введении животному хлорамфеникола.

Спустя сутки из ткани животного высевалась бактериальная культура, причем высев производился на твердую индикаторную среду с лактозой.

Анализировались (визуально) выросшие колонии. Они оказывались или красного цвета (окисляющие лактозу, меняющие рН) или - белого (бесцветные). Красные доминировали, их было свыше 90%. Однако, отбирались и подвергались дальнейшему изучению именно белые. Ход рассуждений в данном случае был следующим. Если из животного, которому ввели хлорамфеникол высеялась жизнеспособная клетка, давшая колонию на твердой среде, значит в этой клетке экспрессировался ген хлорамфеникол- аетилтрансферазы и образовывался, соответственно, фермент, инактивирующий (ацетилирующий) антибиотик.

Следовательно, в данном фрагменте х - есть ген с промотором. Этот ген экспрессировался в организме животного, а вслед за ним экспрессировался и ген хлорамфеникол-ацетилтрансферазы (лишенный, напомним, собственного промотора). Но, экспрессироваться мог ген, принадлежащий как к ivi генам, так и к house keeping gens. Однако, это еще не позволяет " поймать" ivi ген иутверждать, что в фрагменте х именно один из таких генов. Если, колония на индикаторной среде с лактозой выросла бесцветная, значит на искусственной питательной среде, данный промотор не работал и ген во фрагменте х не экспрессировался. Вероятно, что он нужен только при развитии инфекционного процесса и принадлежит к генам вирулентности. В случае же колоний красного цвета экспрессируется ген, кодирующий образование фермента, расщепляющего лактозу; при этом меняется цвет индикатора и колония окрашивается. Отсюда можно сделать вывод о том, что в данном фрагменте х содержится (вместе с промотором) ген, принадлежащий к house keeping gens, т.е. он экспрессируется всегда: и в организме животного и на искусственной питательной среде. Такой ген в данной случае не представляет интереса. Его можно обнаружить более традиционным путем (для подбора в последующем ингибиторов кодируемого им продукта).

Авторы рассмотренного метода (метода IVET) приводят результатыконкретной серии своих э кспериментов, в соответствии с которой, на 212.000 колоний красного цвета пришлось только около 2600 колоний неокрашенных. Из клеток E.coli, образовавших эти, последнего типа колонии, было затем выделено около ста генов, принадлежащих к " скрытым" генам салмонеллы (ivi генам). Из них около пятидесяти были новыми, т.е. ранее не описанными, и их продукты представляли интерес как потенциальные таргеты для отбора антимикробныхагентов.

Метод IVET не является единственным путем идентификации ivi генов у патогенных микроорганизмов. Разрабатываются и другие подходы, например, с использованием направленного мутагенеза. Интерес к ivi генам обусловлен не только тем, что они (их продукты) практически не использованы как таргеты, но и тем, что здесь следует надеяться на высокую избирательность действия (безопасность) создаваемых лекарственных средств. В месте с тем необходимо отметить, что в настоящее время геномика уже позволяет дифференцировать гены патогенных микроорганизмов по многим показателям и это, в свою очередь, позволяет вести скрининг антимикробных агентов все более целенаправленно. В качестве примера можно привести результаты, полученные при изучении представителей рода Chlamydia ( внутриклеточных паразитов с относительно небольшим геномом - порядка одного миллиона пар нуклеотидов), которые вызывают инфекции бронхолегочного и мочеполового трактов. Прежде всего гены этого прокариота были разделены на house keeping gens и ivi гены. Далее, была выявлена группа генов, влияющих на апоптоз клетки - хозяина. Далее, были идентифицированы гены, дублирующие систему жизнеобеспечения паразита.

При этом было показано, что ряд этих генов близок по степени гомологии генам высших растений и приблизительно 27 % из них уникальны для рода Chlamydia.

Классификации различных генов становятся все более многочисленными и разнообразными, а, следовательно, и таргетный скрининг, начинающийся с генов, в идеале должен вести к все более четким результатам, то есть антимикробным агентам с четко определенными свойствами.

 

 

⇐ Предыдущая45678910111213Следующая ⇒

Поделиться: