Исходный уровень знаний и навыков. 1 Строение, свойства и функции азотистых оснований и нуклеотидов.

⇐ ПредыдущаяСтр 5 из 8Следующая ⇒

Студент должен знать:

1 Строение, свойства и функции азотистых оснований и нуклеотидов.

2 Правила Э. Чаргаффа.

3 Структуру, классификацию, свойства и функции нуклеиновых кислот.

4 Молекулярные механизмы переваривания и всасывания пищи в желудочно–кишечном тракте (ЖКТ).

5 Энзимопатии (общая характеристика).

Студент должен уметь:

1 Проводить качественные реакции на белки и углеводы.

Структура занятия

Теоретическая часть

1.1 Переваривание и всасывание нуклеопротеидов в ЖКТ. Характеристика и функции “ядерных” белков.

1.2 Мононуклеотиды как структурные компоненты нуклеиновых кислот (НК), их основные функции:

1.2.1 переносчики энергии – АТФ, ГТФ.

1.2.2 коферменты – NAD, NADP, FAD, FMN.

1.2.3 участие в метаболизме углеводов (УДФ-глюкоза и др.) и липидов (ЦДФ-холин и др.).

1.2.4 мессенджеры гормональных и др. сигналов – цАМФ, цГМФ.

1.3 Метаболизм (синтез и распад) пуринов и пиримидинов. Реакции, ферменты, регуляция.

1.4 Биосинтез АМФ и ГМФ. Реакции, ферменты, регуляция.

1.5 Структура и функции НК. Особенности строения и роль различных видов ДНК (ядерная, митохондриальная, сателлитная). Особенности структуры ДНК вирусов и фагов. Полиморфизм вторичной структуры ДНК – А-, В- и Z-формы.

1.6 Особенности строения и роль различных видов РНК – информационной, рибосомальной, транспортной, вирусной. Роль минорных оснований в структуре НК. Коэффициент видовой специфичности.

1.7 Механизмы хранения и передачи наследственной информации – репарация, репликация (строение репликативной вилки), транскрипция, трансляция, характеристика основных ферментов и кофакторов.

1.8 Этапы биосинтеза ДНК – инициация, элонгация, терминация, роль ДНК-полимераз.

1.9 Биосинтез РНК, его регуляция, роль РНК-полимераз. Процессинг РНК, его биологическое значение. Альтернативный сплайсинг.

1.10 Строение иммуноглобулинов (Ig). Характеристика основных классов Ig – IgA, IgD, IgE, IgG, IgM. Рекомбинация генов Ig как причина их разнообразия.

1.11 Патология обмена азотистых оснований и НК. Нарушения процессов репарации ДНК и их последствия. Причины возникновения и основные клинические проявления оротацидурии, ксантинурии, синдрома Леша–Нихана и подагры.

Практическая часть

2.1 Решение задач.

2.2 Лабораторная работа.

Задачи

1. Для биологического кода характерны следующие свойства:

а) каждый кодон соответствует одной АК;

б) каждой АК соответствует только один кодон;

в) кодон мРНК считываются в направлении от 5´ - к 3´ -концу;

г) смысл кодонов одинаков для всех живых организмов на Земле?

2. В ходе посттрансляционной достройки полипептидные цепи могут:

а) фосфорилироваться, б) образовывать олигомеры, в) подвергаться частичному протеолизу, г) гидроксилироваться, д) соединяться с простетическими группами?

3. Активация аминокислот происходит с помощью фермента:

а) лигаза; б) фосфатаза; в) РНК-аза; г) пептидаза; д) синтетаза; е) лиазы?

4. Аминокислоты в белках ковалентно связаны:

а) силами Ван-дер-Ваальса; б) пептидными связями; в) гидрофобными связями; г) фосфоэфирными связями; д) водородными связями; е) координационными связями?

5. Укажите основной фермент, ответственный за реализацию информации генома ретровирусов:

а) ДНК-лигаза; б) ДНК-полимераза; в) обратная транскриптаза (ревертаза); г) РНК-полимеразы; д) АРС-аза?

6. Каждая рибосома в полисоме:

а) движется по мРНК в направлении 3`®5`;

б) движется по мРНК в направлении 5`®3`;

в) синтезирует многие полипептидные цепи;

г) синтезирует только одну полипептиднуюцепь;

д) диссоциирует по окончании синтеза?

7. Точечная мутация мРНК будет наиболее вероятной причиной:

а) распада мРНК; б) инактивации рибосом; в) изменения первичной структуры белка; г) незавершенной транскрипции; д) подавления сплайсинга?

8. Белки синтезируются:

а) от N-конца к С-концу; б) от С-конца к N-концу; в) с матрицы рРНК; г) с матрицы иРНК; д) от 3’-конца к 5’-концу РНК; е) от 5’-конца к 3’-концу РНК?

Лабораторная работа № 1. Определение концентрации мочевой кислоты в биологических жидкостях энзиматическим колориметрическим методом без депротеинизации

Принцип метода. Содержащаяся в пробе мочевая кислота окисляется под действием фермента уриказы с образованием эквимолярного количества перекиси водорода. В присутствии пероксидазы перекись водорода окисляет хромогены с образованием окрашенного продукта. Интенсивность окраски пропорциональна концентрации мочевой кислоты в пробе.

уриказа

мочевая кислота + 2Н₂О + О₂ —→ аллантоин + СО₂ + Н₂О₂

пероксидаза

2Н₂О₂ + ДХФС[1] + ААП[2] ——→ (хинониминовый окрашенный продукт) + 4Н₂О

Ход работы. Осуществляется в соответствии с таблицей 1.

Таблица 1.

РЕАКТИВЫ	Опытная проба, мл	Калибровочная проба, мл
Рабочий реагент	2, 0	2, 0
Калибратор	-	0, 05
Сыворотка крови	0, 05	-

Содержимое опытной пробы перемешивают и инкубируют в термостате при температуре 20-25C не менее 10 минут. Затем опытную пробу фотометрируют при длине волны 490 нм в кювете с толщиной поглощающего слоя 0, 5 см против дистиллированной воды.

Примечание: Окраска стабильна не менее 40 минут после окончания инкубации.

Расчёт производят по формуле:

С = Е_пр / Е_кал • 357 (мкмоль/л) или С = Е_пр / Е_кал • 6 мг/100 мл

где Е_пр– экстинкция опытной пробы,

Е_кал– экстинкция калибровочной пробы,

357 или 6 – концентрация мочевой кислоты в калибраторе в мкмоль/л или мг/100мл

Норма: женщины – 142-339 мкмоль/л (2, 4-5, 7 мг/100 мл),

мужчины – 202-416 мкмоль/л (3, 4-7, 0 мг/100 мл.

Клинико-диагностическое значение.

Увеличение уровня мочевой кислоты в крови (гиперурикемия) отмечается при патологических состояниях, связанных с усилением распада клеток (в особенности содержащих ядра), нарушением выделения мочевой кислоты с мочой, изменением эндокринной регуляции обмена пуриновых оснований (вторичные гиперурикемии), а также при подагре – заболевании, обусловленном первичным (вызванным врожденными ферментативными сдвигами метаболизма) нарушением обмена этого метаболита.

Гипоурикемия (уменьшение концентрации этого метаболита) наблюдается при гепатоцеребральной дистрофии (болезни Вильсона-Коновалова), некоторых злокачественных новообразованиях (лимфогранулематозе, бронхогенном раке), у больных после приема пиперазина, атофана, салицилатов и кортикотропина (АКТГ).

Выводы. Записать полученный результат и дать его клинико-диагностическую оценку.

Лабораторная работа Качественные реакции на продукты гидролиза нуклеопротеидов (белки, углеводы, пуриновые основания, фосфат).

Принцип метода. Основан на проведении специфических реакций на компоненты нуклеопротеидов дрожжей, получаемых путем их гидролиза: полипептиды, пуриновые основания, углеводы и фосфат.

ВНИМАНИЕ! Соблюдать меры безопасности при работе с концентрированной серной кислотой и кипячением на водяной бане.

Ход работы.

а) Биуретовая реакция на полипептиды.

К 5 каплям гидролизата добавляют 10 капель 10 %-го раствора NaOH, затем 2 капли 1 %-го раствора CuSO₄. Образуется комплекс фиолетового цвета.

б) Серебряная проба на пуриновые основания.

К 10 каплям гидролизата приливают 10 капель концентрированного (! ) аммиака, затем добавляют 10 капель 2 %-го аммиачного раствора нитрата серебра. При стоянии через 3–5 мин образуется светло-коричневый осадок серебряных солей пуриновых оснований (см. уравнение).

в) Качественная реакция на пентозу (Молиша).

К 5 каплям гидролизата добавляют 3 капли 1 %-го спиртового раствора тимола, перемешивают и по стенке пробирки осторожно наслаивают 20 капель концентрированной (! ) серной кислоты. При встряхивании на дне пробирки образуется продукт конденсации фурфурола с тимолом красного цвета (см. уравнение).

г) Качественная реакция на углеводы.

К 5 каплям гидролизата дрожжей приливают 3 капли 0, 2 %-го спиртового раствора альфа-нафтола и 20 капель концентрированной (! ) серной кислоты. Наблюдают появление розово-фиолетового окрашивания.

д) Реакция на дезоксирибозу и рибозу.

К 5 каплям гидролизата дрожжей добавляют 20 капель 1%-го раствора дифениламина и кипятят на водяной бане в течение 15 мин, при этом образуется сине-зеленое окрашивание, поскольку дифениламин с дезоксирибозой дает синее окрашивание, а с рибозой – зеленое.

е) Молибденовая проба на фосфорную кислоту.

К 10 каплям гидролизата дрожжей приливают 20 капель молибденового реактива и кипятят несколько минут на открытом огне спиртовки. При этом жидкость окрашивается в желтый цвет. Пробирку сразу охлаждают в струе холодной воды. На дне пробирки появляется кристаллический лимонно-желтый осадок фосфорномолибденовокислого аммония.

Порядок оформления работы. Результаты лабораторной работы записывают в тетрадь в виде таблицы:

Открываемое соединение	Используемые реактивы	Продукты реакции	Чем обусловлена реакция?

Выводы. Записать полученный результат и дать его клинико-диагностическую оценку.

Рекомендуемая литература

Основная

1 Кухта, В.К и др. Биологическая химия: учебник / В.К. Кухта, Т.С. Морозкина, Э.И. Олецкий, А.Д. Таганович; под ред. А.Д. Тагановича. – Минск: Асар, М.: Издательство БИНОМ, 2008. – С. 307-338, 344-386.

2 Биохимия: Учебник для вузов / Под ред. Е.С. Северина. – 4-е изд., испр. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2006. – С. 140-170, 185-226, 521-544.

3 Филиппович, Ю. Б. Основы биохимии. – 4-е изд. – М.: Агар, 1999. – С. 278-303

4 Николаев, А.Я. Биологическая химия. М.: Медицинское информационное агентство, 2004. – С.

5 Марри Р. и др. Биохимия человека: в 2-х т.: Пер. с англ., М.: Мир, 2004. – Т.1: С.

6 Березов, Т. Т. Биологическая химия / Т.Т. Березов, Б.Ф. Коровкин. – М.: Медицина, 1998. – С. 96–113, 469–503.

Дополнительная

7 Албертс Б. и др. Молекулярная биология клетки. М.: Мир, 1994. Т. 2. С. 93–126.

8 Ленинджер А. Основы биохимии. М.: Мир, 1985. Т. 2. С. 665–674

Занятие 23

Белки-5. Биосинтез белка. Регуляция биосинтеза.
Патология белкового обмена

Цель занятия: сформировать представления об этапах биосинтеза белка, механизмах его регуляции и молекулярных аспектах основных нарушений азотистого обмена. Освоить рефрактометрический метод определения концентрации белка в сыворотке крови.

⇐ Предыдущая 1 2 3 456 7 8 Следующая ⇒