Методика подсчета лейкоцитов в крови.

Методика подсчета лейкоцитов в крови.

4. Методика определения количества гемоглобина в крови.

5. Определение цветного показателя крови. Абсолютное содержание гемоглобина в эритроцитах.

6. Методика определения скорости оседания эритроцитов (СОЭ).

7. Методика определения групп крови.

Определения свертывания крови по Сухареву.

Необходимо для работы: испытуемый, чистый и сухой капилляр от прибора Панченкова, стерильный скарификатор и пинцет, спирт, йод, вата.

Проведение работы:

1. Проколоть палец, снять первую каплю крови сухой ваткой.

2. Погрузить конец капилляра в каплю крови, не прижимая отверстия к пальцу.

3. Слегка опустив наружный конец капилляра, набрать 20-30 мм крови и перевести этот столбик крови на середину.

4. Держа капилляр двумя пальцами, произвести плавное покачивание его в обе стороны с амплитудой 40-45⁰.

Свободное смещение столбика крови говорит о том, что свертывание еще не наступило. Замедленное движение крови при наклоне капилляра характеризует начало свертывания, при этом на внутренней стенке капилляра появляются небольшие сгустки.

Момент полной остановки движения столбика крови в капилляре соответствует наступлению окончательного свертывания крови. По предлагаемой методике скорость свертывания крови в норме: начало свертывания происходи через 30 с - 2 мин., полное свертывание - через 3-5 мин.

9. Методика определения осмотической резистентности эритроцитов.

Цель работы: ознакомиться со свойствами осмотической устойчивости эритроцитов и произвести количественную оценку их резистентности по отношению к гипотоническим растворам.

Необходимо для работы: восемь чистых и сухих пробирок, штатив, мерный цилиндр на 5-10 мл, 1%-ный раствор хлористого натрия, дистиллированная вода, стерильные скарификаторы и пинцет, спирт, йод, вата, стеклянные палочки, мерные пипетки.

Проведение работы:

1. В каждую из пробирок налить 1%-ный раствор хлористого натрия в убывающем количестве от 0, 6 до 0, 15 мл, затем в каждую пробирку добавить дистиллированной воды до 1 мл. Пробирки пронумеровать.

2. Во все пробирки добавить с помощью капилляра Сали по капле крови. Добавление крови лучше начинать с пробирки, в которую помещен раствор с наименьшей концентрацией, и идти в сторону увеличения. Осторожно перемешать содержимое, чтобы не образовались пузырьки воздуха.

3. Оставить пробирки в штативе на хорошо освещенном месте на 30-40 мин, после чего рассмотреть их содержимое ( не взбалтывать! ). Проанализировать результаты.

4. О границах (уровне) осмотической резистентности эритроцитов судить по степени гемолиза крови в различных гипотонических растворах.

6. Отметить пробирки, в которых:

· отсутствует гемолиз;

· частичный гемолиз;

· полный гемолиз.

7. В выводах дать определение верхней и нижней границ резистентности эритроцитов и сделать заключение о соответствии полученных результатов физиологической норме.

Определение полей зрения.

Определение остроты зрения.

16. Дыхательные объемы и емкости. Методика определения ЖЕЛ. Спирография и спирометрия.

Применение миографии

· В психофизиологии для изучения возрастных закономерностей.

· В медицине для диагностики поражений периферической и центральной нервной системы.

· В физиологии труда и спорта.

· При изучении двигательной функции животных и человека.

· В исследованиях высшей нервной деятельности.

· В инженерной психологии (например, при исследовании утомления, выработки двигательного навыка).

· Для оценки при восстановлении нарушенной двигательной функции в ортопедии и протезировании.

Таблица 36

Затраты на основной обмен здоровых людей в зависимости от возраста и пола

Возраст, годы	Мужчины, ккал/м²× час	Женщины, ккал/м²× час
14–16	46, 0	43, 0
16–18	43, 0	40, 0
18–20	41, 0	38, 0
20–30	39, 5	37, 0
30–40	39, 5	36, 5
40–50	38, 5	36, 0

Разница между показателями должного основного обмена, рассчитанными разными методами, обычно не превышает 10 %.

Термометрия.

Температура тела — важный показатель состояния здоровья человека. Нормальной температурой тела для взрослых в состоянии бодрствования и физиологического покоя (при измерении в подмышечной впадине) считается температура от 36°С до 36, 9°С. Однако следует учитывать, что во время сна с 3 до 5 ч утра температура тела может достигать минимальных значений - 35, 1–36, 0°С. Таким образом, норма температуры тела при измерении в подмышечной впадине составляет 36±0, 9°С (35, 1 - 36, 9°С). Температура 37°С и выше рассматривается как повышенная (гипертермия), а 35°С и ниже – как пониженная (гипотермия). При измерении в глубоких областях тела (прямой кишке, пищеводе) ее нормальные значения на 0, 5°С выше, чем в подмышечной ямке.

Цель работы — определение минимального времени, необходимого для точного измерения аксиллярной температуры ртутными или электронными медицинскими термометрами в подмышечной впадине.

Материалы и оборудование: максимальный ртутный термометр, секундомер, 70 % спирт, вата.

Ход работы. Кожа подмышечной ямки должна быть сухой, так как при влажной коже термометр будет показывать более низкие значения температур из-за испарения влаги с поверхности ртутного резервуара. Обследуемый должен удерживать термометр в течение всего времени измерения, плотно прижав плечо к туловищу. Во время измерения температуры человек должен находиться в состоянии бодрствования и полного покоя.

Осмотрите медицинский термометр, убедитесь в его целости и протрите спиртом. Встряхните термометр до температуры 35°С. Поместите термометр в подмышечную впадину. Запишите показания термометра через 3, 5, 8, 10, 15 мин. Затем проведите термометрию с помощью электронного термометра, записывая показания шкалы прибора через 30 с, 1, 2, 3, 5, 8, 10, 15 мин. При выполнении работы необходимо следить, чтобы головка ртутного и кончик датчика электрического термометров удерживались по среднеаксиллярной линии.

По результатам опытов постройте графики показаний ртутного и электронного термометров в зависимости от времени измерения температуры.

Вывод: у испытуемого температура тела, измеренная в подмышечной впадине _____, длительность ее измерения ртутным должна быть не менее ___ мин.

21. Методика образования условных рефлексов.

Для образования условного рефлекса требуются определенные условия. Условным раздражителем, или сигналом, может быть любое изменение, возникшее во внешней среде или внутри организма. На каждый условный раздражитель (зажигание лампочки, музыкальные звуки, шумы, давление на поверхность кожи, прикосновение, чесание, укол, запах и т.п.) может быть выработан условный рефлекс.

Для образования условного рефлекса на условный (безразличный) раздражитель надо, чтобы этот условный сигнал предшествовал безусловному и в течение некоторого времени действия последнего сопровождал его. Например, звонок (условный сигнал) должен начать звенеть на 5–30 с раньше, чем собака получит корм (безусловный стимул), и некоторое время сопровождать еду. Для того, чтобы выработался условный рефлекс, надо несколько раз повторять такое сочетание.

Если сочетать условный раздражитель с пищевым подкреплением, то вскоре на этот, ранее безразличный раздражитель, образуется условный рефлекс. Один и тот же сигнал может стать раздражителем при выработке разных условных рефлексов. В одном случае звонок может вызвать слюноотделение, а в другом – оборонительный рефлекс и т.д. Это объясняется тем, что характер условного рефлекса определяется подкрепляющим безусловным рефлексом, т.е. условные рефлексы образуются на основе безусловных.

И.П. Павлов разработал методику образования условных рефлексов. Собаку помещают в специальную камеру, полностью изолированную от окружающего мира (никакие раздражители из внешней среды не должны проникать в камеру). Вне камеры находится и сам экспериментатор. При помощи специальной аппаратуры создаются разнообразные раздражители, выдается пищевое подкрепление, регистрируется слюноотделение и т.д. Вначале И.П. Павлов построил полностью изолированную камеру, однако позже выяснилось, что такая абсолютная изоляция не обязательна.

Таким образом, для образования условных рефлексов необходимы следующие специальные условия.

1. Наличие двух раздражителей: индифферентного (безразличного), который хотят сделать условным, и безусловного, вызывающего какую-либо деятельность организма, например отделение слюны, отдергивание лапы и т.п.

2. Индифферентный раздражитель (свет, звук и т.п.) должен предшествовать безусловному и некоторое время сопровождать действие последнего.

3. Безусловный раздражитель должен быть сильнее условного: для сытой собаки с низкой возбудимостью пищевого центра звонок не станет условным пищевым раздражителем.

4. Отсутствие отвлекающих посторонних раздражителей.

5. Активное состояние коры. Это верно и для человека. Если лекция не интересна и развивается полудремотное состояние, то материал не запоминается. Живая эмоциональная лекция с интересными примерами запоминается хорошо.

Электроэнцефалограмма (ЭЭГ) как метод регистрации электрических явлений в коре больших полушарий. Классификация ритмов ЭЭГ.

Электроэнцефалография (ЭЭГ) представляет собой метод регистрации биоэлектрической активности головного мозга, производимой через неповрежденные покровы головы.

Электрокортикография (ЭКоГ) — регистрация ведется с наложением электродов непосредственно на поверхность мозга. Введение электродов в глубокие отделы мозга позволяет провести электросубкортикографию (ЭСКоГ).

Краткая характеристика ЭЭГ здорового человека. В большинстве случаев у здорового бодрствующего человека, находящегося в положении лежа с закрытыми глазами или в темноте, регистрируются относительно регулярные, близкие к синусоидальным колебания биопотенциалов мозга, которые являются результатом множества электрических процессов в различных образованиях его, слагающихся в сложную волнообразную кривую, к которой условно применяют понятие о частоте, амплитуде, фазовых состояниях.

Особенно высокие и устойчивые кривые регистрируются в теменно-затылочной области, одиночные или групповые — в других отделах мозга. Эти кривые Н. Berger (1929) назвал альфа-ритмом; их напряжение при записи через электроды, расположенные на коже, колеблется в пределах 50—100 мкВ (в среднем 40 — 50 мкВ), продолжительность 60—140 мс и частота 8—13 колебаний в секунду. Редко они сохраняют устойчивость, амплитуда волн то убывает, го увеличивается, давая рисунок «веретен», «вздутий», «биений». Альфа-ритм преобладает на ЭЭГ здоровых взрослых людей в 70% случаев, у остальных выражен слабо или отсутствует (до 10% случаев). В передних отделах мозга, а также при подавлении альфа-активности внешними раздражениями выявляются бета-волны. Частота их в среднем равна 25 колебаниям в секунду и изменяется от 15 до 30 колебаний в секунду; волны большей частоты называются гамма-волнами.

Амплитуда бета-волн в 3—4 раза ниже, чем альфа-волн, и в некоторых записях эти колебания почти не различаются. Ткани, покрывающие мозг, оказывают большое электросопротивление (5*103—15*103 Ом) и снижают биопотенциалы в 5—10 раз, причем амплитуда быстрых колебаний уменьшается быстрее по сравнению с медленными волнами.

Основы классификации ритмов электроэнцефалограммы (ЭЭГ):

Традиционная ЭЭГ (диапазон частот 0, 5-100 Гц):

• Гамма-ритм (частота более 40 Гц, амплитуда менее 15 мкВ);

• Бета-ритм (частота 14-40 Гц, амплитуда менее 25 мкВ);

• Альфа-ритм (частота 8-13 Гц, амплитуда 10-150 мкВ);

• Тета-ритм (частота 4-7 Гц, амплитуда 75-150 мкВ);

• Дельта-ритм (частота 0, 5-3 Гц, амплитуда свыше 100 мкВ).

Сверхмедленная биоэлектрическая активность

(диапазон частот менее 0, 5Гц):

• Секундные или дзета-волны (частота 0, 1-0, 5 Гц, период от 2 до 10 секунд, амплитуда менее десятки и сотни мкВ);

• Многосекундные или тау-волны (частота 0, 0167-0, 1 Гц, период от 10 до 60 секунд, амплитуда сотни мкВ)

• Минутные и многоминутные или эпсилон-волны (частота менее 0, 0167 Гц, период от 1 минуты и более, амплитуда сотни мкВ, единицы и десятки мВ)

• Относительно постоянный потенциал милливольтового диапазона или омега-потенциал (устойчив в течение часов, амплитуда ± 110 мВ)

Рецепторы, их классификация: по локализации (мембранные, ядерные), механизму развития процессов (ионо- и метаьотропные), по скорости приема сигнала (быстрые, медленные), по роду вопринимающих веществ.

Рецепторы представляют собой конечные специализированные образования, предназначенные для трансформации энергии различных видов раздражителей в специфическую активность нервной системы.

Классификация:

по локализации

· мембранные

· ядерные

по механизму развития процессов

· ионотропные (представляют собой мембранные каналы, открываемые или закрываемые при связывании с лигандом. Возникающие при этом ионные токи вызывают изменения трансмембранной разности потенциалов и, вследствие этого, возбудимости клетки, а также меняют внутриклеточные концентрации ионов, что может вторично приводитъ к активации систем внутриклеточных посредников. Одним из наиболее полно изученных ионотропных рецепторов является н-холинорецептор.)

· метаботропные (связаны с системами внутриклеточных посредников. Изменения их конформации при связывании с лигандом приводит к запуску каскада биохимических реакций, и, в конечном счете, изменению функционального состояния клетки.)

по скорости приема сигнала

· быстрые

· медленные

по роду вопринимающих веществ

· Хеморецепторы — воспринимают воздействие растворенных или летучих химических веществ.

· Осморецепторы — воспринимают изменения осмотической концентрации жидкости (как правило, внутренней среды).

· Механорецепторы — воспринимают механические стимулы (прикосновение, давление, растяжение, колебания воды или воздуха и т. п.)

· Фоторецепторы — воспринимают видимый и ультрафиолетовый свет

· Терморецепторы — воспринимают понижение (холодовые) или повышение (тепловые) температуры

· Барорецепторы – воспринимают изменение давления

3. Ионотропные рецепторы, метаботпропные рецепторы и их разновидности. Системы вторичных посредников действия метаботропных рецепторов (цАМФ, цГМФ, инозитол-3-фосфат, диацилглицерол, ионы Са++).

На постсинаптической мембране выделяют два типа рецепторов — ионотропные и метаботропные.

Ионотропнный
В случае ионотропного рецептора чувствительная молекула содержит не только активный центр для связывания медиатора, но также ионный канал. Воздействие «первичного посредника» (медиатора) на рецептор приводит к быстрому открыванию канала и развитию постсинаптического потенциала.
Метаботропный
При присоединении медиатора, и возбуждении метаботропного рецептора изменяется внутриклеточный метаболизм, т.е. течение биохимических реакций

С внутренней стороны мембраны к такому рецептору присоединен целый ряд других белков, выполняющих ферментативные и частью передающие («посреднические») функции (рис.). Белки-посредники относятся к G-белкам. Под влиянием возбужденного рецептора G-белок воздействует на белок-фермент, обычно переводя его в «рабочее» состояние. В результате запускается химическая реакция: молекула-предшественник превращается в сигнальную молекулу — вторичный посредник.

Рис. Схема строения и функционирования метаботропного рецептора: 1 — медиатор; 2 — рецептор; 3 — ионный канал; 4— вторичный посредник; 5 — фермент; 6 — G-белок; → — направление передачи сигнала

Вторичные посредники — это мелкие, способные к быстрому перемещению молекулы или ионы, передающие сигнал внутри клетки. Этим они отличаются от «первичных посредников» — медиаторов и гормонов, передающих информацию от клетки к клетке.

Наиболее известным вторичным посредником является цАМФ (циклическая аденозинмонофосфорная кислота), образуемая из АТФ с помощью фермента аденилатциклазы. Похожа на него цГМФ (гуанозинмонофосфорная кислота). Другими важнейшими вторичными посредниками являются инозитолтрифосфат и диацилглицерол, образуемые из компонентов клеточной мембраны под действием фермента фосфолипазы С. Чрезвычайно велика роль Ca²⁺, входящего в клетку снаружи через ионные каналы или высвобождающегося из особых мест хранения внутри клетки («депо» кальция). В последнее время много внимания уделяется вторичному посреднику NO (оксиду азота), который способен передавать сигнал не только внутри клетки, но и между клетками, легко преодолевая мембрану, в том числе от постсинаптического нейрона к пресинаптическому.

Заключительный шаг в проведении химического сигнала — воздействие вторичного посредника на хемочувствительный ионный канал. Это воздействие протекает либо непосредственно, либо через дополнительные промежуточные звенья (ферменты). В любом случае происходит открытие ионного канала и развитие ВПСП либо ТПСП. Продолжительность и амплитуда их первой фазы будет определяться количеством вторичного посредника, которое зависит от количества выделившегося медиатора и длительности его взаимодействия с рецептором.

Таким образом, механизм передачи нервного стимула, используемый метаботропными рецепторами, включает в себя несколько последовательных этапов. На каждом из них возможна регуляция (ослабление либо усиление) сигнала, что делает реакцию постсинаптической клетки более гибкой и адаптированной к текущим условиям. Вместе с тем это же приводит к замедлению процесса передачи информации

Система цАМФ

Фосфолипаза С

Методика подсчета лейкоцитов в крови.

4. Методика определения количества гемоглобина в крови.

5. Определение цветного показателя крови. Абсолютное содержание гемоглобина в эритроцитах.

6. Методика определения скорости оседания эритроцитов (СОЭ).

7. Методика определения групп крови.

Определения свертывания крови по Сухареву.

Проведение работы:

1. Проколоть палец, снять первую каплю крови сухой ваткой.

2. Погрузить конец капилляра в каплю крови, не прижимая отверстия к пальцу.

3. Слегка опустив наружный конец капилляра, набрать 20-30 мм крови и перевести этот столбик крови на середину.

4. Держа капилляр двумя пальцами, произвести плавное покачивание его в обе стороны с амплитудой 40-45⁰.

9. Методика определения осмотической резистентности эритроцитов.

Проведение работы:

6. Отметить пробирки, в которых:

· отсутствует гемолиз;

· частичный гемолиз;

· полный гемолиз.

12 3 4 5 6 7 8 9 Следующая ⇒