Определение содержания в воде сульфат-ионов

Сущность метода

Содержание сульфат-ионов определяют комплексонометрическим методом с трилоном Б. В исследуемую воду вводят ионы Ba²⁺ (раствор BaCl₂), которые с ионами SO образуют осадок:

Ba²⁺ + SO = BaSO₄ ¯ (41)

При взаимодействии трилона Б с ионами Ba²⁺ образуется комплексное соединение. Содержание сульфатов определяется по разнице расхода трилона Б для связывания ионов бария до и после осаждения ионов SO . Поскольку в исследуемой воде есть ионы кальция и магния, то на эти ионы необходимо делать соответствующие поправки.

Реактивы и оборудование

– исследуемая вода;

– соляная кислота, 0, 1 н раствор;

– метиловый красный;

– раствор BaCl₂, содержащего ионы Мg (10 г BaCl₂ ^. 2 ^. H₂O и 4 г МgCl₂ ^. 6 ^. H₂O в 1л);

– мерная колба или пипетка объемом 50 мл;

– коническая колба объемом 200...250 мл;

– электроплитка.

Проведение анализа

В коническую колбу вместимостью 200 мл отмеривают пипеткой 50 мл исследуемой воды, прибавляют 1–2 капли раствора метилового красного и подкисляют раствор 0, 1 н раствором соляной кислоты. Затем кипятят раствор 3...5 минут для удаления углекислого газа. К кипящему раствору прибавляют 1мл раствора хлорида бария, содержащего ионы магния (10 г BaCl₂ ^. 2H₂O и 4 г МgCl₂ ^. 6H₂O в 1 л ) и кипятить еще 10...15 с. Наличие в растворе ионов магния необходимо для более четкого определения конца титрования трилоном Б.

Затем, трилонометрическим методом определяют концентрацию сульфат- ионов.

4. Санитарно-бактериологический анализ воды

При стандартном санитарно-бактериологическом анализе воды санитарное состояние характеризуют двумя основными показателями:

– общим количеством бактерий в воде;

– количеством бактерий группы кишечной палочки (бактерий Coli).

4.1. Определение общего количества бактерий в воде

Сущность метода

Метод состоит в определении количества бактерий в 1 мл воды, которые способны расти на питательной среде (агаре) определенного состава при температуре 37 °С в течение 24 ч, образуя колонии, видимые при увеличении в 2...5 раз. Проведенным таким образом бактериологическим анализом можно определить количество только тех бактерий, которые развиваются в условиях анализа. Поэтому такое определение дает не абсолютную, а относительную бактериологическую характеристику воды. Бактериологический анализ позволяет сравнивать бактериальную зараженность воды, отобранной из разных мест водоисточника, а также из одного его места в разные времена года.

Общее количество бактерий в 1 мл средней пробы неразбавленной хозяйственно-питьевой воды допускается не более 100.

Оборудование и реактивы

– чашки Петри стерильные;

– три пипетки на 1 мл;

– пипетка на 10 мл;

– стерильные пипетки на 0, 1мл;

– стерильные пробирки;

– навески питательной среды (питательный огар) или пробирки с питательным МПА;

– электроплитка;

– термометр;

– спиртовка;

– спички;

– стеклянная палочка прямая и изогнутая;

– спирт;

– маркер;

– проба воды из водоема.

Проведение анализа

В чашку Петри пипеткой вносят 1 мл исследуемой питьевой воды* а затем заливают пробу 10…12 мл питательного мясо-пептонного агара, имеющего температуру ~45 °С. Содержимое быстро перемешивают, осторожно наклоняя и вращая чашку по поверхности стола. Необходимо избегать образования пузырьков воздуха, не залитых участков дна чашки, попадания питательной среды на ее края и крышку. После этого чашку ставят на горизонтальную поверхность до застывания среды, а затем помещают в термостат и выдерживают при температуре 37, 5 °С в течение 24 ч. За это время в чашках Петри вырастает от 30 до 300 колоний бактерий, которые видны при увеличении в 2…5 раз** По полученным и приведенным в табл. 4.1 данным определяют степень загрязнения воды.

Таблица 4.1

Зависимость степени загрязнения воды от общего количества бактерий

Примечание: а имеет значение от 1 до 9.

4.2. Определение количества бактерий группы кишечной палочки

При бактериологическом исследовании воды прежде всего ставится цель установить, заражена ли вода болезнетворными бактериями, возбудителями тифа, холеры, дизентерии. Поскольку определить наличие этих бактерий очень трудно, то обычно бактериологический анализ воды сводится к выявлению бактерий группы кишечной палочки, которые для человека не опасны, но присутствие их свидетельствует о загрязнении воды фекалиями и вызывает подозрение о наличии в воде болезнетворных микроорганизмов.

Сущность метода

Обнаружение бактерий группы кишечной палочки основано на их способности, в отличие от других бактерий, размножаясь, сбраживать сахар. Если питательная среда одержит молочный сахар, то он сбраживается до молочной кислоты, которая разрушает соединение фуксина сульфитом. В местах роста колоний бактерий Coli образуются окрашенные фуксином красные блестящие бугорки, по числу которых судят о количестве бактерий Coli.

Содержание в воде бактерий группы кишечной палочки характеризуют коли-титром, который численно равен объему воды в миллилитрах, содержащему одну кишечную палочку. Титр кишечной палочки является решающим показателем санитарного состояния воды. Если одна кишечная палочка содержится в 100 мл воды, то такая вода считается чистой, если в 10 мл - достаточно чистой, в 1 мл – сомнительно чистой. При наличии одной кишечной палочки в 0, 1 мл воду считают сильно загрязненной и непригодной для питья.

Для обеззараженной и осветленной воды, используемой для хозяйственно-питьевых целей, коли-титр в отдельном определении должен быть не ниже 300–330 мл. Загрязнение воды кишечными палочками характеризуют также коли-индексом - количеством кишечных палочек в 1 л воды. Согласно ГОСТ 2874-82, коли-индекс питьевой воды не должен превышать 3.

Для определения количества бактерий группы кишечной палочки существует два метода: бродильный и мембранных фильтров. Сущность последнего метода состоит в концентрировании бактерий из определенного объема исследуемой воды на мембранном фильтре и выращивании их при температуре 37 ± 0, 5 °С в среде Эндо. При этой температуре создаются оптимальные условия для выращивания бактерий.

Материалы и оборудование

– мембранные фильтры;

– водоструйный насос;

– проба исследуемой воды объемом не менее 500мл;

– среда Эндо;

– стерильные чашки Петри;

– стерильные пинцеты;

– спиртовка;

– пробирки с дистиллированной водой;

– микробиологическая петля;

– микроскоп;

– красители для окраски по Граму;

– предметное и покровное стекло.

Проведение анализа

В фильтровальный аппарат* помещают стерильный мембранный ультрафильтр, взяв его обожженным пинцетом из сосуда, в котором проводилась стерилизация. Под мембранный ультрафильтр подкладывают простерилизованный кружок фильтровальной бумаги, смоченный стерильной водой.

Для фильтрования берут 300...500 мл воды. Если вода сточная, то ее предварительно разбавляют стерильной водой в 100...1000 раз.

После окончания фильтрования мембранный ультрафильтр снимают обожженным пинцетом с прибора и рас полагают на поверхности фуксинсульфитного агара (среда Эндо), помещенного в чашку Петри. Затем чашку помещают вверх дном в термостат при температуре 37 °С на 24 ч. Через 24 ч подсчитывают колонии бактерий, окрашенные в красный цвет с металлическим блеском.

Затем рассчитывают коли-титр, мл

Коли-титр = , (42)

или коли-индекс:

Коли-индекс = . (43)

Здесь n – количество бактерий группы кишечной палочки (n), выращенных из исследуемого объема воды(V). На основании результатов определения общего микробного числа и коли-индекса делают вывод о бактериологической безопасности воды.

5. Биологический контроль водоема по гидробионтам - индикаторам

5.1. Изучение биоразнообразия микроорганизмов природного водоема по морфологическим признакам прямым микроскопированием и определение индекса сапробности водоема по индикаторным организмам.

Сущность метода

Биоразнообразие микроорганизмов разных экологических групп водного биоценоза является важным условием устойчивости существования экосистемы водоема и интенсивности протекающих в нем процессов самоочищения. На изменения, происходящие в водоеме, в том числе антропогенное загрязнение, биоценоз чутко реагирует изменением интенсивности и характера своего метаболизма, изменением видового состава. Поэтому метод биоиндикации успешно используется для изучения состояния водных экосистем.

Наиболее разработанной системой оценки степени загрязнения вод по индикаторным организмам является система сапробности Кольквитца-Маарссона. В 1908 г. учеными Р.Кольквитцем и М.Маарссоном была разработана шкала оценки загрязненности водоемов по присутствию в них тех или иных организмов.

Под сапробностью понимается комплекс физиологических свойств организма, обусловливающий его способность развиваться в воде с тем или иным содержанием органических и токсических веществ, т.е. той или иной степенью загрязнения.

В классической системе сапробности показательные организмы разделяются на три группы:

– полисапробионты – организмы сильно загрязненных вод;

– мезосапробионты – организмы умеренно загрязненных вод (подразделяются на две подгруппы – a- и b-);

– олигосапробионты – организмы слабозагрязненных вод.

Существует ряд методов представления результатов гидробиологического анализа, позволяющих оценить среднюю сапробность водного биоценоза. Одним из наиболее удобных методов является метод Пантле и Букка.

Данный метод позволяет оценивать сапробность водного объекта по фитопланктону, зоопланктону или бентосному сообществу по отдельности или в их совокупности.

Количественная оценка гидробионтов по методу Пантле и Букка учитывает относительную частоту встречаемости организмов – h и отношение отдельных видов к известным степеням системы сапробности – s. Обе эти величины входят в формулу сапробности зоны или водоема

S = / , (44)

где S_i - индикаторная значимость вида i, или расширенный сапробный индекс вида i (по В.Сладечеку); h_i - относительная численность вида i; N - численность видов-индикаторов.

Величина h находится из шестиступенчатой шкалы значений частоты и определяет относительное количество видов (Приложение 6, табл. 1).

Дополнительной характеристикой зон сапробности являются химико-биологические показатели качества воды водоема, которая дана в Приложении 7.

Индекс сапробности вычисляют с точностью до 0, 01. Для ксеносапробной зоны он находится в пределах 0...0, 50, олигосапробной - 0, 51...1, 5, b-мезосапробной - 1, 51...2, 50, a-мезосапробной - 2, 51...3, 50, полисапробной - 3, 51...4, 00. Пример расчета индекса сапробности по методу Пантле и Букку представлен в приложении 8.

Материалы и оборудование

– микроскоп;

– предметные и покровные стекла;

– пипетка глазная;

– склянка пенициллиновая или бюкс;

– кисточка;

– колба мерная на 250 и на 500;

– фильтры мембранные №5 или 6;

– насос водоструйный;

– воронка;

– фильтр бумажный;

– дистиллированная вода.

Отбор проб

Отбор проб из водоема или водотока для анализа осуществляется непосредственно перед выполнением работы. Для исследования отбирают 0, 5…1, 0 л воды с помощью батометра или простым зачерпыванием пластиковой бутылкой на глубине не более 0, 2…0, 5м от дна. После наполнения, часть воды сливается из бутылки так, чтобы над водой оставалось воздушное пространство и затем бутылка закрывается крышкой. При необходимости придонный слой воды слегка взмучивают (в случае бедных зоо- и фито- планктоном вод).

Ход выполнения работы

Отобранную пробу сгустить с помощью водоструйного насоса или путем фильтрования через бумажный фильтр «черная лента», вставленный в воронку и предварительно смоченный дистиллированной водой. Минимальный объем для сгущения составляет 250 мл. При фильтровании пробу необходимо постоянно взбалтывать. Затем фильтр с осевшим материалом помещают в бюкс или склянку, куда добавляют 5...10 мл фильтрата. Затем фильтр осторожно очищают от осадка мягкой кисточкой. Для микроскопирования отбирают каплю полученной суспензии микроорганизмов глазной пипеткой, предварительно хорошо взбалтывая пробу, и помещают на чистое, сухое, обезжиренное предметное стекло. Сверху осторожно покрывают покровным стеклышком так, чтобы под ним по возможности не осталось пузырьков воздуха. Первые один – два раза микроскопирование проводят с целью ознакомления с микроорганизмами и определения их принадлежности к различным таксонометрическим группам. Хорошо видимый объект зарисовывается и идентифицируется по таблицам, рисункам и определителю. Выясняется принадлежность организма к тому или иному классу, виду.

Для определения индекса сапробности исследуемого водоема следует:

1. Провести микроскопирование сконцентрированной пробы с отбором капли не менее 3...5 раз;

2. Идентифицировать встречаемые виды, определить их принадлежность к зоне сапробности, выписать по определителю Сладечека В. класс, вид и название каждого определенного микроорганизма, а также расширенный индекс сапробности s_i;

3. Фиксировать относительную частоту встречаемости каждого вида в микроскопируемых каплях, результаты подсчета заносить в таблицу 5.1.

Таблица 5.1

4. Зарисовать каждый встречаемый вид.

5. Рассчитать индекс сапробности для исследуемого водоема отдельно по фито- и зоо- планктону по формуле, сравнить с существующими характеристиками, сделать вывод о принадлежности водоема к той или иной зоне сапробности.

6. Оценка трофических свойств водоема

6.1. Определение первичной продукции и деструкции органического вещества

Важной характеристикой биологической продуктивности водоема является первичная продукция и деструкция органического вещества.

Первичная продукция – это продукция органического вещества, образованного растительными клетками в процессе фотосинтеза. Первичная продукция становится органической пищей для животных организмов различных трофических уровней и, таким образом, определяет уровень биологической продуктивности водоема. Различают валовую Р_вал и чистую Р_чист первичную продукцию.

Валовая продукция – это общее количество органического вещества, образовавшееся в процессе фотосинтеза.

Чистая продукция учитывает дыхание гидробионтов, то есть деструкцию органического вещества.

Деструкция органического вещества характеризуется развитием процессов разложения органического вещества. Первичная продукция и деструкция является также важными характеристиками состояния водоема с точки зрения качества воды. Для оценки состояния водоема используют показатель индекса самоочищения. Индекс самоочищения – это отношение валовой первичной продукции к суммарной деструкции органического вещества.

Для определения первичной продукции фитопланктона широко используют метод измерения по изменению концентрации кислорода в воде (скляночный метод) и некоторые другие методы.

Сущность метода

Скляночный метод измерения первичной продукции и деструкции фитопланктона по разнице выделения кислорода в процессе фотосинтеза за определенный период, впервые был предложен Граном и Руудом и детально разработан Винбергом Г.Г. В основе метода лежит валовое уравнение фотосинтеза:

СО₂ + Н₂О – (СН₂О) + О₂ , (45)

в котором количество потребленной углекислоты или количество выделившегося при фотосинтезе кислорода пропорционально количеству образованного органического вещества. При отсутствии света реакция идет в обратном направлении – процесс дыхания (деструкции), разложения органического вещества с потреблением кислорода и выделением углекислоты.

Для определения первичной продукции сначала отбирают пробу воды и определяют в ней содержание растворенного кислорода (и/или углекислого газа). Затем отбирают еще две пробы в светлые склянки, которые экспонируют на глубине отбора пробы в течение 8 часов и снова определяют концентрацию растворенного кислорода (или углекислоты). Экспонировать склянки необходимо до или после полудня.

При определении деструкции вторую пробу воды отбирают не в светлые, а в темные склянки. Затем, как и при определении продукции склянки экспонируют на глубине отбора проб и определяют концентрацию растворенных в воде газов. Концентрацию растворенного кислорода определяют методом Винклера, концентрацию углекислоты нейтрализацией щелочью. Объем склянок составляет 100–500 мл в зависимости от продуктивности водоема: для эвтрофных водоемов используются склянки на 100 мл, для мезотрофных – на 250 мл, для олиготрофных - на 500 мл.

Первичная продукция (деструкция) будет пропорциональна разнице начальной и конечной концентрации кислорода в пробе после экспонирования.

Определение первичной продукции и деструкции обычно проводят для горизонтов различной освещенности. Горизонты измерения первичной продукции должны соответствовать глубинам, куда проникает 100, 75, 50, 10, и 1% поверхностной солнечной радиации. Глубина, на которую проникает 1% солнечной радиации, называется нижней границей фотического слоя и соответствует равновесию процессов производства и разложения биомассы. При этом первичная продукция равна деструкции. Граница фотического слоя соответствует утроенной глубине прозрачности по белому диску. Остальные горизонты фотического слоя определяют пропорционально глубине границы фотического слоя. Если фотический слой не превышает 5 м, то склянки погружают на глубины 0, 0, 5, 1, 2, 3, 4, 5 м.

Оборудование и реактивы

Склянки с притертыми пробками из светлого прозрачного стекла – 3 шт., 1 склянка с притертой пробкой из темного стекла, продукционные плотики или штатив, батометр, реактивы для фиксации растворенного кислорода и определения по методу Винклера (см. с. 31).

Подготовка к отбору проб . Продукционные склянки, батометр и посуда для анализа должны быть тщательно вымыты и высушены. Склянки необходимо расставить в порядке отбора проб с горизонтов. На каждый горизонт необходимо четыре склянки – одну для определения начальной концентрации О₂, две светлые и одна темная для экспонирования проб.

Отбор, экспонирование и фиксация проб . В точке отбора измеряют прозрачность воды и определяют глубину фотического слоя, умножая прозрачность на 3. После отбора проб батометром немедленно начинают заполнять продукционные склянки. Перед заполнением каждая склянка ополаскивается исследуемой водой. Склянки заполняются доверху, переливая часть пробы. Заполнять нужно осторожно, чтобы исключить попадание пузырьков воздуха. Попавшие в склянку пузырьки воздуха удаляют, оставив склянку открытой в течение одной минуты и постукивая по стенкам склянки. Следует избегать попадания прямых солнечных лучей. Пробу для определения начальной концентрации кислорода фиксируют, согласно методике. Остальные склянки закрывают и ставят на экспонирование на соответствующий горизонт, предварительно хорошо закрепив. Следует отметить время начала экспозиции. После экспозиции фиксируют остальные пробы, и проводят необходимые определения и расчет растворенного кислорода.

Расчет первичной продукции и деструкции. Если V_с количество О₂ в светлой склянке после экспонирования, V_т количество О₂ в темной склянке после экспонирования, t – время экспозиции ч, V_{н с} - начальное содержание кислорода в склянке перед экспонированием, то первичную продукцию Р (мг О₂ л/ч) вычисляют по следующим формулам:

валовая продукция

; (46)

чистая продукция

; (47)

деструкция

; (48)

6.2. Оценка трофических свойств водоема с использованием высших водных растений-индикаторов

Высшие водные растения среди групп водных организмов-индикаторов являются наименее изученным звеном, хотя имеют ряд преимуществ. Они представляют собой видимый невооруженным глазом и поэтому весьма удобный для наблюдения объект, а также дают возможность при рекогносцировочном гидробиологическом осмотре водоемов в первом приближении визуально оценить их экологическое состояние. Макрофиты позволяют определить трофические свойства воды, а иногда и специфику ее химизма, что имеет существенное значение при биоиндикации вод.

Сущность метода

В прибрежно-водной растительности выявляется исключительно легко поддающаяся учету доминантная флора. При этом подтипу водной растительности, представленной гидромезофитными, гидрофитными и гигрофитными видами, отводится принципиальная роль в оценке загрязнения водной среды. Подтипу же прибрежной растительности, представленной гигрофитными, мезофитными и ксеномезофитными видами, определяющее значение придается при оценке загрязнения донных отложений малорастворимыми токсическими веществами.

При ботанической индикации водоемов целесообразно учитывать следующие показатели: степень покрытия его макрофитами, флористическое разнообразие растений, отклонения в развитии и росте. При последующих лабораторных исследованиях, при необходимости, определяется ряд количественных характеристик: величины фитомассы и продукции, высота и масса стебля, химический состав растений.

Большую роль при индикации вод играет наличие определенных видов- индикаторов. Но в выявлении таких растений имеется ряд трудностей вследствие того, что многие из них обладают широкими экологическими и географическими ареалами. Более того, в различных физико-географических условиях данные растения индикаторы могут встречаться в водоемах неодинакового трофического статуса и иметь соответственно различное индикаторное значение. Ограниченность сведений об экологии и физиологии большинства видов макрофитов также является лимитирующим фактором при выявлении индикаторных видов.

По общепринятой классификации стоячие водоемы (озера, естественные пруды и т.п.) делятся на, дистрофные, олиготрофные, мезотрофные, и эвтрофные (Приложение 9).

Количественная оценка уровня трофности водоема по присутствию макрофитов индикаторов учитывает относительную частоту их встречаемости и отношение отдельных видов к принятой системе трофности водоемов.

Для каждого уровня трофности водоемов принят номер: дистрофные – 1, олиготрофные – 2, мезотрофные – 3, эвтрофные – 4. Частоту встречаемости учитывают по девятибальной шестиступенчатой шкале со следующими обозначениями: 1 – очень редко, 2 – редко, 3 – нередко, 5 – часто, 7 – очень часто, 9 – масса.

Общий уровень трофности водоема вычисляется по формуле

Т = SТ_i а_i/Sа_i , (49)

где Т_i – уровень трофности соответствующего вида-индикатора;
а – частота встречаемости вида.

Пример расчета трофности водоема по высшим водным растениям дан в приложении 9.

Ход выполнения работы

– используя каталоги-определители, дать название каждому растению;

– оценить частоту встречаемости каждого вида;

– выделить доминантные и субдоминантные виды;

– выделить индикаторные виды присутствующие в водоеме;

– рассчитать общую трофность водоема по растениям-индикаторам;

– зарисовать и привести названия всех выявленных растений, указать индикаторные виды, охарактеризовать трофические свойства водоема.

7. Подсчет клеток микроорганизмов в счетных камерах

Сущность метода

Метод прямого счета микробных клеток в счетных камерах – один из наиболее быстрых и достаточно точных. Данный метод успешно применяется для определения общего количества микроорганизмов, содержащихся во взвесях. Однако счетные камеры Горяева, Нажотта могут быть использованы лишь для подсчета относительно крупных объектов – клеток водорослей, дрожжей грибов, микроскопируемых при увеличении микроскопа (окуляр 10–15´, объектив 8–40´ ).

Устройство и подготовка камеры Горяева

Счетная камера Горяева представляет собой толстое предметное стекло с прямоугольным углублением в центре. Глубина камеры составляет 0, 1+0, 005 мм. На дне углубления нанесена сетка из 400 квадратов. Сторона сетки соответствует 3+0, 005 мм, площадь одного малого квадрата соответствует 1/400 мм², большого – 1/25 мм².

Каплю с микроорганизмами помещают в центр камеры и накрывают специальным покровным стеклом, тщательно притирая его по краям камеры до появления ньютоновских колец. При этом толщина слоя жидкости в камере над сеткой соответствует 0, 1 мм, а объем камеры 0, 9 мм³ (около 1мм³). Каждый малый квадрат ограничивает объем жидкости в 1/4000 мм³, или 1/4000000 мл (1 мл = 1000 мм³).

Подсчет клеток в камере начинают через 3...5 мин. после заполнения ее, когда клетки осели и расположились в одной плоскости. Подсчет клеток ведут обычно в 10 больших либо в 20 малых квадратах, перемещая их по диагонали. Количество клеток в большом квадрате не должно превышать 20, а в малом – 10.

Для получения достоверного результата общее число подсчитанных клеток микроорганизмов должно быть не менее 600, поэтому из исследуемой взвеси микроорганизмов берут 3 – 4 пробы для монтажа камеры.

Материалы и оборудование

– счетная камера Горяева;

– водоструйный насос;

– мембранные фильтры № 5, 6;

– колба на 500мл с пробой природной воды;

– склянка на 20мл из-под пенициллина;

– пипетка глазная;

– микроскоп;

– кисточка колонковая;

– формалин 40%.

Проведение анализа

Пробу природной воды содержащей водоросли, объемом 500 мл, сгущают с помощью водоструйного насоса на мембранном фильтре. В конце фильтрования необходимо следить, чтобы над фильтром остался тонкий слой воды. Затем сгущеный осадок с фильтра осторожно переносят в склянку при помощи кисточки и доводят до объема 5мл дистиллированной водой. Консервируют препарат формалином или раствором Люголя.

После тщательного взбалтывания, каплю взвеси с водорослями из склянки наносят в центр счетной камеры пипеткой. Счетную камеру накрывают покровным стеклом, тщательно притирая его с краев до образования ньютоновских колец (цветных полос).

Подсчет клеток в камере начинают через три – пять минут после ее заполнения, когда клетки осели и расположились водной плоскости. Подсчет клеток ведут обычно в 10 больших либо в 20 малых квадратах, перемещая их по диагонали.

Для статистической достоверности в каждой пробе необходимо определить и просчитать все виды не менее трех раз с последующим вычислением среднего арифметического. Пересчет общей численности производится по формуле

(50)

где N– число клеток в 1 мл воды, n – число клеток в камере объемом 1мм³;
v_{1 –} объем концентрата пробы (5 мл);
v₂ – объем камеры в мл (0, 001);
w – объем профильтрованной воды (500 мл);

Отчет по работе должен содержать:

– расчет общей численности водорослей;

– расчет численности доминирующих видов;

– рисунки часто встречающихся видов.

Библиографический список

1. Константинов А.С. Гидробиология. – М.: Высшая школа, 1979. – 490 с.

2. Макрушин А.В. Биологический анализ качества вод. – Л.: 1974. – 153 с.

3. Таубе П.Р., Баранова А.Г. Химия и микробиология воды. – М.: Высшая школа, 1983. – 280 с.

4. Радкевич В.А. Экология. – Минск: Высшая школа, 1998. – 159 с.

5. Бокрис Дж. Химия окружающей среды. – М.: Мир, 1984. – 480 с.

6. Карюхина Т.А., Чурбанова И.Н. Химия воды и микробиология. – М.: Стройиздат, 1983. – 215 с.

7. Павлович С.А. Медицинская микробиология. – М.: Высшая школя, 1998. – 173 с.

8. Руководство к лабораторным работам по химии и микробиологии воды/Составители: Л.З. Казанцева, О.Г. Дубровина; Под ред. Л.З. Казанцевой. Челябинск: ЧПИ, 1984. – 47 с.

9. Руководство к экологической практике: Учебное пособие / Н.И. Ходоровская, Я.Н. Лепп, А.В. Лагунов и др. – Челябинск: Изд. ЮУрГУ, 1999. – Ч.1. – 67 с.

10. Кульский Л.А. и др. Химия и микробиология воды: Практикум/ Л.А. Кульский, Т.М. Левченко, М.В. Петрова. – Киев: Вища школа, 1976, – 116 с.

11. Лейте В. Определение органических загрязнений питьевых, природных и сточных вод/Пер. с нем.; Под ред. Ю.Ю. Лурье. – М.: Химия, 1975. – 200 с.

12. Руководство по методам гидробиологического анализа поверхностных вод и донных отложений; Под ред. В.А. Абакумова. – Л.: Гидрометеоиздат, 1983. – 240 с.

13. Определитель гидробионтов/ Под ред. В. Сладечека. – М.: СЭВ, 1977. – 227 с.

ПРИЛОЖЕНИЯ