Микробиологическое исследование на коклюш

Техника взятия материала на коклюш и первичный посев на среду. Техника взятия. Название среды.

Цель исследования: выявление возбудителя и дифференциация возбудителей коклюша и паракоклюша.

1. Метод кашлевых пластинок (Борде)

Оборудование: чашка Петри с питательной средой (КУА)

Ход работы:

· Усаживаем пациента на стул

· В момент появления кашля подносим открытую чашку Петри с питательно средой ко рту пациента на расстоянии 8-10см, удерживаем несколько секунд.

· Закрываем чашку и ставим в термостат.

2. Заднеглоточный способ взятия материала и первичный посев на чашку с питательной средой (КУА)

Оборудование: 2 стерильных тампона, растопленная на водяной бане среда КУА, стерильный шпатель.

Ход работы:

1. Усаживаем пациента

2. Вынимаем первый тампон из пробирки и сгибаем под углом 120*.

3. Просим обследуемого открыть рот.

4. Вводим в рот шпатель и прижимаем им корень языка.

5. Вводим в рот первый (сухой) тампон до тех пор, пока конец его не прикоснется к задней стенке глотки.

6. После появления у обследуемого кашлевого рефлекса и выделения слизи вынимаем тампон из полости рта.

7. Делаем первичный посев на среду КУА в чашку Петри.

8. Сначала делаем несколько штрихов в одном месте, затем растираем материал по всей поверхности среды, со всех сторон тампона.

9. Засеянные чашки ставим в термостат.

10. Берем второй тампон и смачиваем его в расплавленной на водяной бане среде КУА.

11. Вводим в рот шпатель и прижимаем им корень языка.

12. Вводим тампон до тех пор, пока конец его не прикоснется к задней стенке глотки.

13. После появления у обследуемого кашлевого рефлекса и выделения слизи вынимаем тампон из полости рта.

14. Вынимаем тампон и производим посев материала.

3. Носоглоточный способ взятия материала и первичный посев на чашку с питательной средой (КУА)

Оборудование: 2 стерильных тампона, растопленная на водяной бане среда КУА.

Ход работы:

1. Усаживаем пациента

2. Вынимаем первый тампон из пробирки и сгибаем под углом 120*.

3. Вводим в нос первый (сухой) тампон до тех пор, пока конец его не прикоснется к задней стенке глотки.

4. После появления у обследуемого кашлевого рефлекса и выделения слизи вынимаем тампон из полости рта.

5. Делаем первичный посев на среду КУА в чашку Петри.

6. Сначала делаем несколько штрихов в одном месте, затем растираем материал по всей поверхности среды, со всех сторон тампона.

7. Засеянные чашки ставим в термостат.

8. Берем второй тампон и смачиваем его в расплавленной на водяной бане среде КУА.

9. Вводим в рот шпатель и прижимаем им корень языка.

10. Вводим тампон до тех пор, пока конец его не прикоснется к задней стенке глотки.

11. После появления у обследуемого кашлевого рефлекса и выделения слизи вынимаем тампон из полости рта.

12. Вынимаем тампон и производим посев материала.

Микробиологическое исследование на менингит

на расстоянии 3-4 см от конца.
Предложить пациенту широко открыть рот.
Надавить шпателем, который находится в левой руке, на корень языка.
Ввести тампон концом вверх под мягкое небо в носоглотку и осторожным движением собрать слизь.
Извлечь тампон, не касаясь слизистой оболочки рта и зубов.
Провести первичный посев в пробирке на сывороточный агар штрихообразными движениями сверху вниз.
Поместить пробирку с посевом в термостат.

Цифровой отчет:

Микробиологическое исследование стафилококко-6

Микробиологическое исследование на дифтерию-8

Микробиологическое исследование на коклюш-3

Микробиологическое исследование на менингит-4

Выписка направлений – 21

Заполнение журналов – 4

Выдача результатов - 21

Десятый день практики.

Методы культивирования
и выделения чистой культуры бактерий.

Для успешного культивирования, помимо правильно подобранных сред и правильно произведенного посева, необходимы оптимальные условия: температура, влажность, аэрация (снабжение воздухом). Культивирование анаэробов сложнее, чем аэробов, для удаления воздуха из питательной среды используют различные способы.
Выделение отдельных видов бактерий ( чистой культуры ) из исследуемого материала, содержащего, как правило, смесь различных микроорганизмов, является одним из этапов любого бактериологического исследования. Чистой культурой микробовполучают из изолированной микробной колонии.
При выделении чистой культуры из крови ( гемокультуры) ее предварительно «подращивают» в жидкой среде: 10-15 мл стерильно взятой крови засевают в 100-150 мл жидкой среды. Соотношение засеваемой крови и питательной среды 1: 10 не случайно - так достигается разведение крови (неразведенная кровь губительно действует на микроорганизмы).

Этапы выделения чистой культуры бактерий
I этап (нативный материал)
Микроскопия (ориентировочное представление о микрофлоре).
Посев на плотные питательные среды (получение колоний).
II этап (изолированные колонии)
Изучение колоний (культуральные свойства бактерий).
Микроскопическое изучение микробов в окрашенном мазке
(морфологические свойства бактерий).
Посев на скошенный питательный агар для выделения чистой культуры.
III этап (чистая культура)
Определение культуральных, морфологических, биохимических
и других свойств для идентификации культуры бактерий

Особенность микроскопирования микробов — применение исключительно иммерсионной системы, состоящей из исследуемого объекта, иммерсионных масла и объектива. Преимущество этой системы заключается в том, что между объектом на предметном стекле и фронтальной линзой объектива находится среда с одинаковым показателем преломления (кедровое, вазелиновое масло и др.). Благодаря этому достигается наилучшее освещение объекта, так как лучи не преломляются и попадают в объектив. При обычной световой микроскопии наблюдаемый объект (в том числе и микробы) рассматриваются в проходящем свете. Поскольку микробы, как и другие биологические объекты, малоконтрастны, то для лучшей видимости их окрашивают. С целью расширения границы видимости применяют другие виды световой микроскопии.

Цифровой отчет:

Выделения чистой культуры бактерий-5

Микроскопия-2

Выписка результатов-2

Одиннадцатый день практики. Подготовка сыворотки крови для серогического исследования.(инактивирование, осаждение эритроцитами барана, разведение сыворотки 1: 5, 1: 10)Постановка иммунологических реакций: агглютинации на стекле и объемным методом, РПГА, реакций Хедельсона и Райта. Учет иммунологических реакций. Выдача результатов. Выписка протоколов. Ведение дневников

⇐ Предыдущая 1 2 3 456 7 Следующая ⇒